Методы диагностики при лихорадке ку

Возбудитель Ку-лихорадки (Coxiella burnetii -риккетсии Бернета) вызывает острое (реже подострое или хроническое) инфекционное заболевание с полиморфной клинической картиной. Для лабораторной диагностики этого риккетсиоза применяют серологический метод (РА, РСК), в некоторых случаях — непрямую РИФ, биологическую и кожно-аллергическую пробы.

Серологический метод является основным в лабораторной диагностике Ку-лихорадки. Серологические реакции (РА и РСК) для определения антител к Coxiella burnetii в парных пробах сыворотки крови больных Ку-лихорадкой ставят с антигенами I фазы (иммуногенный ЛПС) и II фазы (малоиммуногенный антиген) возбудителя. Диагностический титр 1:4.

Аллергодиагностика.Кожную аллергическую пробу проводят по обычной методике (0,1 мл аллергена внутрикожно), используя в качестве аллергена растворимый антиген из риккетсий Бернета I фазы, автоклавированную культуру коксиелл или ЛПС I фазы. Результаты пробы учитывают через 24-48 ч по наличию и размерам инфильтрата, гиперемии, отека. Проба специфична, но пригодна только для ретроспективной диагностики. У переболевших она остается положительной в течение 10 лет.

Биопроба —внутрибрюшинное или интратестикулярное (в толщу яичек) заражение исследуемым материалом морских свинок самцов, куриных эмбрионов в желточный мешок. Обнаружение риккетсий осуществляется в мазках-отпечатках внутренних органов, окрашенных по Романовскому-Гимзе или Здродовскому. В настоящее биопроба в реальной практике не используется в связи с внедрением культур тканей для культивирования и выделения риккетсий.

Микробиологическая диагностика лихорадки цуцугамуши.

Лихорадка цуцугамуши вызывается Orientia tsutsugamushiи характеризуется лихорадкой, поражением нервной системы и органов кровообращения в результате развития множественных васкулитов.

Материалом для исследования служат кровь, взятая в период лихорадки, для выделения возбудителя, а также сыворотка крови для серологической диагностики.

Культуральный метод. Возбудитель лихорадки цуцугамуши в материале от больного можно выделить путем заражения перевиваемой культуры клеток L и на клетках первично-трипсинизированных фибробластов куриного эмбриона.

Серологический метод.Проводится со второй недели болезни. Для определения специфических антител в крови больных используют ИФА, РА (с антигеном из культуры Proteus mirabilis OXk), непрямую РИФ, РСК.

Биопроба.Кровью больного внутрибрюшинно заражают белых мышей, которые через 6-14 дней погибают. Риккетсии выявляют в мазках-отпечатках внутренних органов животного, окрашенных по Романовскому— Гимзе, Здродовскому или люминесцирующими сыворотками против Orientia tsutsugamushi.

.Микробиологическаядиагностика риккетсиозов группы пятнистой лихорадки Скалистых гор.

К этой группе риккетсиозов относятся марсельская (Астраханская) лихорадка (возбудитель Rickettsia conorii), осповидный (везикулярный) риккетсиоз (возбудитель Rickettsia akari) пятнистая лихорадка Скалистых гор (возбудитель Rickeftsia rickettsii), клещевой сыпной тиф Сибири и Северной Азии (возбудитель Rickettsia sibirica).

Биопроба – внутрибрюшинное заражение материалом от больного морских свинок самцов или белых мышей. Риккетсии этой группы вызывают у морских свинок через 6-14 дней после заражения скротальный феномен с некрозом мошонки, а у белых мышей (возбудитель везикулезного риккетсиоза) — перитонит.

Серологический метод.Для обнаружения антител в сыворотках крови больных со 2 недели заболевания в динамике (исследование парных сывороток) используют непрямую РИФ, ИФА, РСК, РНГА. Нарастание титра антител в 4 и более раз в динамике болезни подтверждает диагноз риккетсиоза.

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском:

Лучшие изречения: Для студента самое главное не сдать экзамен, а вовремя вспомнить про него. 9766 — | 7381 — или читать все.

195.133.146.119 © studopedia.ru Не является автором материалов, которые размещены. Но предоставляет возможность бесплатного использования. Есть нарушение авторского права? Напишите нам | Обратная связь.

Отключите adBlock!
и обновите страницу (F5)
очень нужно

источник

Ку-лихорадка (Q-febris) — природно-очаговая риккетсиозная болезнь многих видов животных и человека. У сельскохозяйственных животных заболевание протекает относительно доброкачественно, но они могут служить источником возбудителя для человека, у которого Ку-лихорадка проявляется как острая системная инфекция, обычно сочетающаяся с интерстициальной пневмонией. У животных (крупный и мелкий рогатый скот, мулы, лошади, свиньи, собаки, куры) болезнь характеризуется кратковременной лихорадкой, может сопровождаться конъюнктивитом, ринитом, бронхопневмонией, артритами, маститами, абортами, орхитами.

Передача возбудителя от животного к животному может осуществляться инфицированными клещами (свыше 50 видов) или алиментарно.

Возбудителем болезни является Coxiella burneti, род Coxiella, триба Rickettsiae. Лабораторная диагностика основана на результатах бактериологического и серологического исследований.

Прижизненно берут кровь. Для заражения куриных эмбрионов готовят пробы гепаринизированной крови, выделения из матки и влагалища, плаценту в случае аборта, пробы молока, клещей с животного; посмертно — измененные участки легких, фрагменты селезенки, паренхимы вымени, головного мозга, регионарные пораженным органам лимфатические узлы.

Микроскопическое исследование исходного материала,экспресс-методы диагностики. Из исследуемого материала готовят мазки, окрашивают по Романовскому, Гименечу и др. (см. «Хламидиозы»). В положительных случаях внутри клеток при окраске по Романовскому находят пурпурно-красные кокковидные клетки размером 0,2-0,4 мкм или короткие палочки, похожие на C.psittaci.

Используют сэндвич — вариант твердофазного ИФА для обнаружения антигена возбудителя в исследуемом материале. Данные ИФА в 100% случаев совпадают с результатами биопробы на белых мышах. Близкой чувствительностью при обнаружении возбудителя обладает метод флуоресцирующих антител (прямой вариант). Детекцию ДНК возбудителя в материале эффективно проводят при помощи ПЦР.

Выделение и идентификация С.burneti

Культивирование в куриных эмбрионах. Для заражения куриных эмбрионов подходит нитрированная кровь. В случае возможной контаминации материала посторонней микрофлорой тканевый гомогенат на физиологическом растворе (1:10) обрабатывают пенициллином (1000 ЕД/мл) и стрептомицином (500ЕД/мл) в течение 60 минут, делают контрольные высевы на МПА, МПБ. Суспензию в объеме 0,2-0,25 мл или нитрированную кровь вводят в желточный мешок (см. «Хламидиозы»). Используют 5-7-дневные куриные эмбрионы, начиная с 4-5 суток яйца ежедневно овоскопируют. Павшие эмбрионы вскрывают по мере гибели, после 8 суток допускается вскрытие живых эмбрионов. При отрицательных результатах проводят до 4-6 «слепых» пассажей. Риккетсии обнаруживают в оболочках желточного мешка в окрашенных препаратах или при помощи метода люминесцирующих антител. После адаптации штамма к куриным эмбрионам из ткани эмбриона можно экстрагировать антиген и идентифицировать его в серологических реакциях с иммунными сыворотками против фаз I и II C.burneti.

Выращивание в культуре клеток. Культивирование C. burneti может быть проведено в культуре фибробла-стов куриного эмбриона, эпителия желточного мешка, почечного эпителия и т.д. Риккетсии хорошо размножаются в клетках ФСЦ, Нер-2, КП, ПК, ТК, СК, трипсинизированных клетках куриных эмбрионов. С пятого дня зараженные культуры клеток исследуют путем микроскопии окрашенных мазков, в РИФ и ПЦР.

Заражение лабораторных животных. Суспензию из исходного материала (1:5) обрабатывают антибиотиками и вводят интраперитонеально морским свинкам массой 250-300 г в дозе 3-5 мл или молодым кроликам. Морских свинок ежедневно термометрируют, проводят до 3-5 «слепых» пассажей. У погибших или убитых в период лихорадки животных берут соскобы с брюшины, готовят мазки, микроскопируют, исследуют в РИФ. О результатах заражения судят по наличию риккетсией в препаратах. Длительное наблюдение за животными (35-40 дней) позволяет поставить диагноз на основании исследования сывороток крови в РСК.

источник

Методические рекомендации «Лабораторная диагностика лихорадки КУ» (утв. Минздравом РСФСР 20 марта 1980 г.)

Методические рекомендации
«Лабораторная диагностика лихорадки КУ»
(утв. Минздравом РСФСР 20 марта 1980 г.)

Прямым подтверждением Ку-риккетсиоза у больного человека (или животных) является обнаружение в соответствующих материалах коксиелл Бернета с помощью иммунолюминесцентного исследования по прямому методу Кунса. Материалом для исследования служит кровь больного. При необходимости обследования позвоночных или беспозвоночных животных (определение источника инфекции) целесообразно готовить мазки на околоплодной жидкости, плаценты абортировавших животных, органов абортированных плодов, гемолимфы и кишечника кровососущих клещей. Исследование вышеперечисленных материалов на инфицированность коксиеллами Бернета иммунолюминесцентным методом проводят следующим образом.

На тщательно вымытом и обезжиренном предметном стекле делают тонкий мазок или отпечаток исследуемого материала. После высыхания мазок фиксируют этиловым спиртом или ацетоном в течение 30 мин. По мазку синим восковым карандашом делают две окружности диаметром 0,5 см, чтобы создать барьер, препятствующий растеканию люминесцирующей сыворотки.

На одно окруженное поле фиксированного и высушенного мазка наносят каплю разведенной флуоресцирующей сыворотки против коксиелл Бернета (рабочее разведение указано на ампуле) в смеси с равным объемом бычьего альбумина, меченного родамином* (в смеси оба конъюгата должны быть в рабочем разведении). На другое поле наносят гетерологичный или «нормальный» конъюгат, также в смеси с бычьим альбумином. Обработку мазков проводят 30 мин при температуре 37°С во влажной камере (чашка Петри с увлажненным дном), что предупреждает высыхание конъюгата. Отмывание мазков от избытка флуоресцирующей сыворотки производят в фосфатном буферном растворе (рН 7,2-7,4) в течение 10 мин. После ополаскивания дистиллированной водой препараты высушивают на воздухе и исследуют в люминесцентном микроскопе.

В мазках крови больного Ку-риккетсиозом человека, биопробных морских свинок и белых мышей коксиеллы Бернета специфически флуоресцируют в виде ярко светящихся мельчайших кокко-бациллярных корпускул зеленого цвета. Характерным является расположение возбудителей на поверхности эритроцитов. В контрольных мазках, обработанных нормальной или гетерологичной флуоресцирующими сыворотками, риккетсии не обнаруживаются. Идентифицировать в мазках крови возбудителя можно при условии, когда в большинстве полей зрения видно не менее 2-3 флуоресцирующих риккетсий, что соответствует примерно 2-5 млн риккетсиальных клеток в 1 мл крови. Риккетсии обнаруживаются в мазках крови больного на высоте лихорадки.

В ходе эпидемиологического обследования, особенно при работе в природных очагах инфекции, а также при проведении эпидемиологической разведки, возникает необходимость лабораторного исследования, в том числе микроскопическими методами, кровососущих клещей и грызунов.

Исследование клещей. После определения вида клещей, их последовательно промывают в стерильном физиологическом растворе, 70° спирте, затем снова в двух порциях физиологического раствора. После этого у клеща отсекают лапки, а выделяющиеся капли гемолимфы распределяют по предметному стеклу. Далее клеща вскрывают, отделяя хитин, и извлекают кишечник, который отмывают в физиологическом растворе, и затем, равномерно растирая, распределяют мазок на предметном стекле. Мазки фиксируют, обрабатывают и исследуют так же, как и мазки крови.

Исследование грызунов. Как правило, при исследовании грызунов на носительство коксиелл используют селезенку, в ретикулярных клетках которой коксиеллы сохраняются в течение длительного срока.

Мазки-отпечатки готовят так же, как при исследовании грызунов на туляремию или псевдотуберкулез. При необходимости более длительного сохранения материала или его перевозки можно использовать 50% стерильный глицерин, в который погружают селезенку. Перед приготовлением мазков её промывают в 2-3 порциях физиологического раствора. Затем из селезенки готовят эмульсию в 5-8 мл физиологического раствора, тщательно растирая её с кварцевым стерильным песком. Через 15-20 мин (после осаждения кусочков ткани) из надосадочной жидкости готовят мазки на предметном стекле; в дальнейшем исследование проводят так же, как при исследовании крови и клещей.

Препараты от клещей и грызунов обрабатывают Ку-риккетсиальной флуоресцирующей сывороткой. В качестве контроля часть мазка (см. выше) целесообразно параллельно обрабатывать антитуляремийной сывороткой (гетерологичный препарат). Это с одной стороны обеспечивает перекрестный контроль на специфичность, с другой — дает прямые результаты на инфицированность грызунов и клещей возбудителями двух инфекционных форм.

Для постановки биопроб при Ку-риккетсиозе используют, как правило, тот же материал, что и для микроскопического исследования. Микроскопическое исследование и постановку биопроб проводят обычно параллельно. Для биопроб используют морских свинок (250-300 г), белых мышей (12-14 г) и куриные эмбрионы (7-дневные).

Исследуемый материал растирают, добавляют стерильный физиологический раствор, тщательно эмульгируют и после отстаивания взвеси (или центрифугирования при малых оборотах) вводят внутрибрюшинно или подкожно подопытным морским свинкам (2-3 мл) или белым мышам (0,5-1 мл). При исследовании крови сыворотку отделяют стерильно от сгустка и используют её для серологического исследования. Сгусток растирают с песком, эмульгируют в физиологическом растворе и вводят внутрибрюшинно подопытным животным.

У морских свинок в результате заражения примерно через неделю развивается лихорадка (до 40-41°), продолжающаяся 5-7 дней. Коксиеллы в большом количестве накапливаются в селезенке, печени и других органах. У белых мышей инфекция протекает, как правило, в скрытой форме, с накоплением большого количества коксиелл в селезенке на 7-9-й день после заражения.

Положительный результат экспериментов доказывается обнаружением возбудителей в мазках-отпечатках из органов животных микроскопией, а также выявлением в их сыворотке крови специфических антител.

Серологическое исследование подопытных животных проводят первый раз через 25-30 дней, второй — через 2 месяца. Если при первом исследовании в сыворотке выявлены антитела, то животных убивают, а эмульсией селезенок заражают куриные эмбрионы и параллельно проводят пассаж на свежих морских свинках.

Исходным материалом (особенно сгустком крови) можно заразить и непосредственно куриные эмбрионы. Для этого в желточный мешок 6-7-дневных развивающихся эмбрионов вводят 0,4-0,5 мл взвеси испытуемого материала. Эмбрионы инкубируют в термостате при 35-37° и ежедневно овоскопируют. Эмбрионы, погибшие до 4-го дня включительно, уничтожают (гибель от посторонних причин), а погибшие в более поздние сроки или оставшиеся живыми до предельного срока инкубации (11-12 дней после заражения) помещают в холодильник до вскрытия.

Эмбрионы вскрывают стерильно, берут желточный мешок, каплю содержимого желточного мешка вносят в сахарный бульон с целью контроля на загрязнение посторонней бактериальной флорой. Из кусочка оболочки желточного мешка делают параллельные мазки. Один из них обрабатывают специфической флуоресцирующей сывороткой, а парный окрашивают по Романовскому или по Гименец для световой микроскопии.

Для выделения и пассивирования коксиелл кроме куриных эмбрионов и морских свинок можно использовать белых мышей массой 12-14 г, которых заражают внутрибрюшинно испытуемым материалом. Изолированные культуры коксиелл могут быть лиофильно высушены. В сухом виде культуры коксиелл в холодильнике (+4°С) могут сохраняться в течение десятков лет.

Культивирование коксиелл может осуществляться и в культуре тканей.

Микробиологические исследования с коксиеллами требуют специальных условий, соблюдения особого режима и разрешения на работу с коксиеллами Бернета (II группа)**. Это ограничивает круг практических лабораторий СЭС, работающих по выделению и изучению возбудителей Ку-риккетсиоза. Иммунологические исследования (см. ниже) не требуют особых условий и должны осуществляться повсеместно.

Иммунологические методы диагностики лихорадки Ку включают в себя серологические тесты, из которых наиболее часто применяют реакцию связывания комплемента. Эту реакцию или реакцию агглютинации следует считать обязательной для лабораторного диагноза лихорадки Ку. Кроме того, в настоящее время разработаны дополнительные иммунологические пробы: реакция микроагглютинации (РМА) с диагностикумом из коксиелл Бернета, меченных изотиоционатом флуоресцеина, реакция непрямой иммунофлуоресценции по методу Уиллера-Кунса, реакция кольцепреципитации с растворимым антигеном из коксиелл Бернета 1-й фазы.

Иммунологические реакции применяют для лабораторного подтверждения Ку-риккетсиоза у больных людей и выявления переболевших, обнаружения инфекции у сельскохозяйственных и домашних животных, равно как среда диких грызунов, для оценки эффективности вакцинации и других важных эпидемиологических вопросов. Наконец, серологические реакции — необходимый этап комплекса исследований по изоляции и идентификации возбудителя.

Реакция связывания комплемента (РСК). Сущность реакции заключается в связывании комплемента комплексом антиген + антитело, что обнаруживается в присутствии индикатора (бараньих эритроцитов, сенсибилизированных гемолитической сывороткой). При образовании специфического комплекса антиген + антитело последний связывает комплемент, вследствие чего после добавления гемолитической системы не возникает гемолиза. Если же комплекс ангиген + антитело не образуется, свободный комплемент вызывает гемолиз сенсибилизированных эритроцитов. Таким образом, положительный результат РОК характеризуется отсутствием или задержкой гемолиза, а отрицательный — феноменом гемолиза.

Реакцию связывания комплемента можно ставить при 37°С и путем длительного связывания на холоде (при +4°С). Последний способ чувствительнее, но требует большого срока для завершения исследования (около суток); поэтому для диагностических целей обычно применяют метод постановки РСК в термостате, что позволяет закончить исследование в течение одного дня.

Для постановки РСК необходимы 5 ингредиентов: 1) испытуемая сыворотка, 2) антиген, 3) комплемент, 4) гемолитическая сыворотка, 5) эритроциты барана.

Реакцию ставят в общем объеме 0,5 мл, т.е. берут по 0,1 мл каждого ингредиента. Обязательным условием постановки РСК является использование точно оттитрованных компонентов.

Для обеспечения точности получаемых результатов необходимо пользоваться отдельной посудой (пробирки, пипетки, колбы), хорошо вымытой и высушенной в сухожаровом шкафу.

Для каждого ингредиента реакции используют отдельную пипетку. Все разведения делают в свежеприготовленном стерильном физиологическом растворе (0,85% раствор химически чистого хлорида натрия в дистиллированной воде).

Исследуемую сыворотку прогревают перед опытом в течение 30 мин при 56-58°С (для разрушения содержащихся в ней комплемента и ингибиторов).

Антиген, вырабатываемый в СССР для серодиагностики Ку-риккетсиоза с помощью реакции связывания комплемента, представляет собой очищенную взвесь убитых коксиелл Бернета, выращенных в желточных мешках развивающихся куриных эмбрионов и находящихся во 2-й фазе. Этот препарат выпускается промышленностью в сухом виде, перед постановкой опыта его разводят физиологическим раствором.

Риккетсиальный антиген титруют те институты, которые его готовят. В соответствии с данными титрования на этикетке сухого антигена указывают объем жидкости, в котором он должен быть растворен. Антиген из коксиелл Бернета 2-й фазы снабжен наставлением по его применению. Учитывая, что у реконвалесцентов и переболевших могут быть антитела и к 1-й фазе возбудителей, серологические исследования желательно проводить в РСК с двумя антигенами из коксиелл Бернета 1-го и 2-го фазовых состояний.

Антигены из коксиелл в 1-й фазе представляют очищенную взвесь убитых коксиелл, прошедших после выделения лишь несколько пассажей на куриных эмбрионах. Антиген 1-й фазы может быть получен и из селезенок белых мышей, инфицированных коксиеллами Бернета в 1-й фазе. Антиген из коксиелл Бернета 1-й фазы в настоящее время промышленностью не выпускается, но он может быть приготовлен в любой лаборатории, имеющей право работы с этим возбудителем.

Комплемент применяют согласно прилагаемой к этому препарату инструкции. Комплемент следует титровать каждый раз перед постановкой опыта.

Гемолитическая сыворотка выпускается в ампулах; это сыворотка кролика, иммунизированного по определенной схеме взвесью бараньих эритроцитов. На этикетке гемолитической сыворотки указан её титр. В опыт гемолитическую сыворотку вводят в тройном титре: например, рабочий титр, указанный на этикетке, равен 1:1800; в этом случае в опыт берут сыворотку, разведенную 1:600. При длительном хранении первоначальный титр гемолитической сыворотки может снижаться. Проверку её титра производят следующим образом. Готовят основное разведение сыворотки 1:100 (0,1 мл сыворотки + 9,9 мл физиологического раствора). В ряд пробирок последовательно разливают по 0,2 мл разведений сывороток, начиная с 1:1000; в каждую пробирку добавляют комплемент в разведении 1:10 в объеме 0,2 мл и по 0,2 мл 3% взвеси бараньих эритроцитов; затем доливают в каждую пробирку по 0,4 мл физиологического раствора. Смесь ингредиентов выдерживают в термостате при 37°С в течение 1 ч. По наличию полного гемолиза эритроцитов судят о титре сыворотки. Схема титрования гемолитической сыворотки представлена в таблице 1.

источник

Заболевание известно в разных странах. Широкое распространение лихорадки Ку связанно с тем, что её резервуар – это млекопитающие, птицы и клещи. Восприимчивость человека высокая. Возбудитель устойчив во внешней среде. Основной путь передачи – воздушно-пылевой. Были даже случаи инфицирования людей, проходящих мимо отары овец. Из-за отсутствия специфической клинической картины чаще проходит под диагнозом ОРВИ, реже как лихорадка неясного генеза. В эпидемических районах случаи не единичны. Поэтому при любой неясной лихорадке врачи сначала исключают лихорадку Ку.

Повышение температуры до 39–40° С.
Сильная головная боль.
Озноб.
Потливость.
Плохой аппетит.
Нарушенный сон.
Боль при движении глаз.
Боль в суставах, мышцах.
Сухой кашель, утрудненное дыхание.
Падение артериального давления.
Уменьшение частоты пульса.
Боли в животе, вздутие.
Поносы или запоры.
Тяжесть в правом и левом подреберье.

Лихорадка Ку или коксиеллез – инфекция, вызванная бактериями коксиеллами. Заражение возможно при контакте с инфицированными животными или продуктами их жизнедеятельности. Характерно поражение лимфатических узлов, печени, селезенки, костного мозга. Клинически характеризируется лихорадкой, интоксикацией и частым развитием атипичной пневмонии.

Лихорадка Ку – это исторически возникшее название, дословно с английского языка
«query» — неясная. Долгое время причина лихорадки у фермеров и работников мясных фабрик была неясной. в 1937 году стало известно, что лихорадка Ку – инфекционное заболевание. Её специфический возбудитель – коксиелла Бернети. Эти бактерии (легионеллы) очень стойкие в окружающей среде и продуктах, а также к действию дезинфиктантов. Наличие споровых форм сохраняет жизнеспособность в неблагоприятных условиях.

Источники инфекции и резервуар – больше 60 видов млекопитающих, 50 видов птиц и более 70 видов клещей. Они выделяют возбудителя с мочой, фекалиями, молоком, что вызывает большие масштабы распространения.

Существуют основные пути передачи:

Воздушно-пылевой (самый частый) – происходит при вдыхании пыли, работе с инфицированной соломой, шерсти, меха, пуха (коксиеллы длительное время сохраняются в высушенном состоянии).
Контактный – при контакте с животными, чаще при их забое, уходе.
Трансмиссивный – при укусе человека иксодовыми клещами.
Алиментарный – при использовании пищевых продуктов: сырого молока, кефира, мяса, воды.

Зараженный человек выделяет бактерию с мокротой, но инфицирование от человека – это казуистические случаи. Эпидемиологическую опасность он не представляет.

Болезнь носит профессиональный характер. Представители профессий, связанные с животными или продуктами их жизнедеятельности, имеют риск инфицирования. Подвержены лица, занятые в таких сферах:

работники мясоперерабатывающих предприятий;
работники молокозаводов;
производства, связанные с шерстью, мехом, пухом;
охотники.

Для этой болезни характерна сезонность. Повышение заболеваемости наблюдается весной и летом. Чаще Ку лихорадка возникает в сельской местности. Там возможность контакта с больными животными или носителями инфекции выше, чем в городской.

В организм человека коксиелла попадает через слизистые оболочки дыхательных путей, пищевого тракта или поврежденную кожу. В месте проникновения каких-либо признаков может не быть, местная воспалительная реакция не развивается. Следующие этапы развития лихорадки Ку:

Бактерии попадают в лимфу и циркулируют в лимфатической системе некоторое время. С лимфы они попадают в кровь.
Происходит распространение коксиелл Бернета. Они оседают в тканях лимфатических узлов, печени, селезёнки, костного мозга, легких.
Следующий этап – размножение в этих органах. На данном этапе возникает интоксикация и лихорадка.
Аллергическая реакция на возбудителя и его токсины.
Следующий этап – формирование иммунитета с регрессией всех проявлений.

На любом из перечисленных выше этапов возбудитель разрушается клетками иммунитета. В этом случае иммунитет ошибочно думает, что это хорошо, так как при разрушении выделяется сильный токсин, который поражает нервную систему.

Острая (до 2–3-х недель).
Подострая (до 4-х недель).
Хроническая (до года).
Стёртая (без клинических проявлений).
Латентная

Легкое.
Средней тяжести.
Тяжёлое

Также существуют формы по подобной клинической картине к другим инфекциям: псевдотифозная, псевдотуберкулёзная, псевдосептическая, гриппоподобная и др.

Инкубационный период длится до 30 дней. Особенность лихорадки Ку – отсутствие чёткого сценария развития симптоматики. Болезнь развивается у здорового человека внезапно. Для неё характерны такие симптомы:

Повышение температуры до 39–40° С, уже в первый день.
Сильная головная боль, озноб, потливость, плохой аппетит, нарушенный сон, боль при движении глаз, боль в суставах, мышцах.
Сухой кашель, утрудненное дыхание.
Падение артериального давления, уменьшение частоты пульса.
Боли в животе, вздутие, поносы или запоры.
Тяжесть в правом и левом подреберье.

Лихорадка вызывает такие внешне изменения:

Покраснение лица, шеи, склер, слизистой оболочки ротоглотки.
Проявление герпеса на губах, носу.
Язык покрытый грязно-серым налётом.
Живот умеренно вздутый.
Увеличение печени и селезёнки (с 3–4-го дня от начала заболевания).
С 6–8-го дня болезни появляются высыпания на боковых поверхностях туловища и живота.

Лихорадка Ку бывает хронической. Для нее характерно поражение клапанов сердца, суставов, печени и селезёнки. Периоды обострения болезни чередуются с периодами ремиссии (ослабление симптомов или их отсутствие).

У некоторых больных развиваются стертые или легкие формы течения Ку лихорадки. Для них характерно отсутствие высокой температуры и интоксикации. В таком случае человек может и не знать о том, что он переболел, или думать, что перенес обычную простуду.

После перенесенной инфекции чаще происходит полное выздоровление. Формируется стойкий иммунитет. При следующей встрече с возбудителем болезнь не развивается. В отдельных случаях (у людей с ослаблённым иммунным ответом) возможное затяжное или хроническое течение.

Важно! Для успешного выздоровления необходимо пройти полный курс лечения антибиотиками. Стоит учитывать, что даже после нормализации температуры лекарство нужно принимать не меньше недели

Осложнения встречаются редко благодаря лечению антибиотиками. Возможны следующие осложнения:

пневмония;
плеврит;
гнойник в лёгких;
панкреатит;
пиелонефрит;
поражение клапанов сердца.

При полном выздоровлении прогноз благоприятный. В случае хронического течения абсолютного излечения инфекции никогда не будет. Можно достичь ослабления или отсутствия симптомов на некоторое время.

Лихорадка Ку – профессиональное инфекционное заболевание. При появлении первых симптомов болезни, следует срочно обратиться в медпункт предприятия. При подозрении необходима обязательная консультация инфекциониста. При подтверждении вопрос о следующем месте лечения определяется тяжестью течения. Легкие, среднетяжёлые и тяжёлые формы без осложнений можно лечить в инфекционном отделении. Тяжёлые осложненные формы с сильной интоксикацией требуют лечения в условиях реанимации.

Начало инфекции похоже на простуду. Если лихорадка не реагирует на лечение больше 5 дней и ее невозможно чем-то объяснить, проводят специфическую диагностику лихорадки Ку.

Используют такие лабораторные и инструментальные методы:

Общий анализ крови: уменьшение лейкоцитов, увеличение СОЭ.
Серологические методы: РСК (реакция связывания комплимента) с диагностическими сыворотками – нарастание титра антител (1:16 – 1:32) на 2–3 недели болезни.
ПЦР (полимеразная цепная реакция) – выявление генетического материала бактерии первые 2 недели высокой температуры.
УЗИ (ультразвуковое исследование) печени, селезёнки, сердца.
Рентгенологическое исследование лёгких – при пневмонии.

Все эти методы используют для точной верификации инфекции. Диагностические процедуры помогут отличить лихорадку Ку от брюшного тифа, вирусного гепатита, бруцеллеза, гриппа и других похожих болезней.

При подозрении на лихорадку Ку, исходя из выраженности симптомов интоксикации, больные госпитализируются в инфекционное отделение для лечения.

По 0,1 г в сутки на протяжении 10 дней

По 0,2 г 3 раза в день, не меньше 14 дней

В 1-й день – 0,5 г, со 2–5 день по 0,25 г

Совет врача! Назначать себе лечение самостоятельно и приписывать антибиотики ни в коем случае нельзя. Этим должен заниматься профессиональный доктор

Курс применения антибиотиков 10–14 дней предупреждает переход в хроническую форму и формирование осложнений.

При клинических показаниях используют дезинтоксикационную терапию (для уменьшения интоксикации), Преднизолон (сильный противовоспалительный гормональный препарат). В случае поражения клапанов сердца нужно проконсультироваться с кардиохирургом для определения показаний к оперативному лечению. Выписку из стационара проводят после клинического выздоровления (нормализации температуры, отсутствия интоксикации).

Общая профилактика включает проведение ветеринарно-санитарных мероприятий:

Наблюдение и раннее выявление больных животных.
Определение качества мясных и молочных продуктов.
Отказ от приёма сырого молока.
Проведение борьбы с клещами (противоклещевая обработка пастбищ) в очагах.
Систематическая уборка помещения, где находятся животные, дезинфекция пола.
Соблюдение личной гигиены ветеринарами и работниками предприятий, контактирующих с животными (защитная одежда, очки, респираторы).

Специфическая профилактика проводится по эпидемическим показаниям лицам группы риска (ветеринарам, работникам ферм, молоко- и мясокомбинатов). Для этого используют живую вакцину штамма коксиелл М-44. Её проводят лицам от 14-ти до 60-ти лет. Ревакцинацию проводят через 2 года по требованию. После перенесенной болезни повторно заболеть невозможно.

источник

Важную часть обследования ребенка с лихорадкой неустановленного происхождения составляют правильно проведенные лабораторные исследования.
Если не назначить вовремя необходимые лабораторные исследования, можно опоздать с постановкой правильного диагноза. В то же время ненужные лабораторные тесты связаны с лишними материальными затратами, дискомфортом больного, а иногда и с определенным риском для него. По данным Lohr, лабораторные методы, включая рентгенографию, помогли в постановке правильного диагноза у 31 из 54 детей с лихорадкой неустановленного происхождения.

Лабораторные исследования должны назначаться обоснованно и логично. В первую очередь следует проводить те пробы, которые вероятнее всего дадут положительные результаты. Диагностические процедуры, сопровождающиеся значительным риском для ребенка, следует отложить до тех пор, пока не будет проведено предварительное наблюдение и другие лабораторные методы не окажутся бесполезными.

Необходимо учитывать стоимость каждого исследования, но при этом следует помнить, что каждый дополнительный день госпитализации может стоить больше, чем несколько лабораторных тестов.

Диагностические тесты по возможности следует назначать с учетом анамнестических данных, результатов физикального обследования или показателей предварительных лабораторных исследований. Однако при недостатке клинических данных для точного определения объема лабораторного обследования разумно провести серию доступных тестов, разделенных на этапы, или стадии, причем каждый последующий этап следует осуществлять после получения результатов предыдущего.

Предлагаемую ниже схему нужно рассматривать лишь как общее руководство для таких ситуаций и не обязательно жестко придерживаться ее при диагностике всех случаев лихорадки неустановленного происхождения.

Первый этап анализов при лихорадке неустановленного происхождения:
— Общий анализ крови (ОАК)
— Скорость оседания эритроцитов (СОЭ)
— Общий анализ и посев мочи
— Туберкулиновая кожная проба
— Рентгенография органов грудной клетки
— Противоточный иммуноэлектрофорез (ПИЭФ)
— Посев крови

Спинномозговая пункция (проводится в зависимости от таких факторов, как возраст ребенка, длительность и величина лихорадки, клиническая картина заболевания).

Как только поставлен рабочий диагноз лихорадки неустановленного происхождения, эту начальную группу лабораторных тестов необходимо выполнить как можно быстрее либо в поликлинических условиях, либо сразу же при поступлении больного в стационар. Если вероятность наличия гнойной инфекции очень мала, то можно обойтись без ПИЭФ.

Повышенная СОЭ хотя и не имеет большого дифференциально-диагностического значения, тем не менее является важным показателем развития воспалительного процесса. Кроме того, если у ребенка СОЭ повышена, то маловероятно, что причиной этого являются тепловые заболевания (гипертиреоз и т. д.) или ложная лихорадка. Повышение СОЭ отмечается более чем у 75% детей при лихорадке неустановленного происхождения, вызванной новообразованиями или заболеваниями соединительной ткани.

Спинномозговая пункция необходима у детей грудного возраста с лихорадкой неустановленного происхождения, особенно если лихорадка сохраняется в течение нескольких недель. Feigin показал, что в 20 из 63 случаев у детей при лихорадке неустановленного происхождения были выявлены изменения в ликворе, характерные для инфекционного процесса, при полном отсутствии каких-либо аменингеальных симптомов. Но автор не привел ни возраст своих больных, ни длительность лихорадки.

Необходимо произвести посев крови на стерильность для выявления как аэробной, так и анаэробной флоры. При этом особое внимание следует уделить тщательному соблюдению стерильности. Если больной получает антибиотики, то в культуру крови нужно ввести вещества, разрушающие эти антибиотики.

Второй этап анализов при лихорадке неустановленного происхождения:
— Посевы крови (повторные, множественные и включающие специальные среды)
— Исследование мазка крови на наличие микроорганизмов
— Посев кала
— Спинномозговая пункция (если не была выполнена ранее)
— Рентгенография органов грудной клетки (повторить, если предыдущие результаты были отрицательными)
— ПИЭФ (если не был выполнен ранее)
— OAK (повторно)
— СОЭ (повторно)
— Белки сыворотки крови
— Биохимическое исследование печени
— Антинуклеарные антитела
— Офтальмологическое обследование с помощью щелевой лампы и непрямой ретиноскопии
— Титр сывороточных антител против возбудителей сальмонеллеза, туляремии, орнитоза, трихиноза, бруцеллеза, токсоплазмоза, лихорадки Ку, гистоплазмоза, кокцидиоидомикоза
— Антигены сывороточного гепатита — Сканирование печени и селезенки — Галлиевая сцинтиграфия
— Ультразвуковое обследование брюшной полости (не обязательно)

Некоторые тесты необходимо провести повторно. ОАУ и СОЭ следует повторять каждые 5—7 дней, даже при ранее нормальных показателях.

Туберкулиновую пробу следует повторно провести через 10—14 дней после первого отрицательного результата; если он снова окажется отрицательным, то необходимо взять большее по концентрации разведение очищенного туберкулина. Следует провести многократные посевы достаточно большого количества крови для выявления как аэробных, так и анаэробных возбудителей.

При необходимости нужно использовать специальные среды для микроорганизмов, таких, как лептоспиры и спириллиум. Необходимо повторить рентгенографию органов грудной клетки, если последний снимок сделан более 5 дней назад. По данным Feigin, у 5 больных с ранее нормальной рентгенограммой органов грудной клетки при повторном исследовании были обнаружены выраженные рентгенологические изменения.

Такие методы исследования, как сканирование печени и селезенки, ультразвуковое исследование брюшной полости, галлиевая сцинтиграфия всего тела, чаще дают дополнительные сведения и редко имеют решающее значение в диагностике. Один такой метод может помочь обнаружить патологические изменения, не выявленные другим.

Указанные выше тесты позволяют обнаружить внутрибрюшные, забрюшинные, внутрипеченочные и внутригрудные образования, такие, как опухоли, лимфоузлы или абсцессы. Они могут выявить скрытый остеомиелит. Область применения этих современных методов исследования у детей с лихорадкой неустановленного происхождения пока не определена. При отсутствии специфических симптомов их ценность довольно низка, но все же они позволяют получить информацию, которую трудно добыть любыми другими неинвазивными методами.

Habibian показал, что галлиевая сцинтиграфия всего тела у взрослых — чувствительный метод при лихорадке неустановленного происхождения, поскольку он получил с его помощью положительные результаты у 17 из 22 больных. По данным Quinn, компьютерная томография (КТ) брюшной полости позволила обнаружить специфические патологические процессы (абсцесс, опухоль, гематома и пр.) у 23 из 78 взрослых больных с лихорадкой неустановленного происхождения, а неспецифические изменения (ге-патомегалия или спленомегалия) еще у 8 больных.

Хотя обе эти работы показывают, что сканирование дает полезную, а подчас и определяющую информацию, они не содержат материалов о том, как часто эти методы исследования дают положительные результаты при отсутствии клинических признаков или симптомов заболевания.

Третий этап анализов при лихорадке неустановленного происхождения:
— Обзорная рентгенография костей
— Сканирование костей с помощью технеция
— Рентгенография придаточных пазух носа
— Клизма с барием
— Рентгенография верхних отделов желудочно-кишечного тракта и тонкого кишечника
— Пункция костного мозга
— КТ брюшной полости
— Внутривенная пиелография
— Эхокардиография
— Биопсия печени

Данные методы объединены в эту группу либо из-за их малой эффективности при обследовании больных без специфических симптомов, либо ввиду их инвазивности (в том числе и. значительной лучевой нагрузки).

Если сканирование с галлием ранее дало отрицательные результаты, то маловероятно, что сканирование костей с использованием технеция или обычная рентгенография окажутся полезными. Рентгенография придаточных пазух носа и внутривенная пиелография имеют низкую диагностическую ценность при обследовании больных без соответствующих клинических проявлений, а рентгенологическое исследование тонкого и толстого кишечника связано со значительным радиационным воздействием.

Диагностическое значение чрескожной биопсии печени у детей при лихорадке неустановленного происхождения без признаков гепатомегалии не определено, но, вероятно, очень мало. Даже у взрослых число положительных результатов незначительно. По материалам Mitchell, чрескожная биопсия оказала помощь при постановке диагноза у 6 из 43 взрослых с лихорадкой неустановленного происхождения, но у всех 6 больных имелись некоторые нарушения функции печени, а у 4 из них была гепатомегалия.

Аспирированный костный мозг необходимо не только подвергнуть микроскопическому исследованию, но и произвести его посев на наличие пиогенных бактерий, микобактерий, грибов и вирусов.
Эхокардиография позволяет диагностировать эндокардит, миокардит, миксому предсердия.

Роль таких методов исследования, как биопсия лимфатических узлов, лимфоангиография и диагностическая лапаротомия, настолько мала, а сами исследования столь инвазивны, что при обследовании детей с лихорадкой неустановленного происхождения эти тесты не используются. Исключение составляют те ситуации, когда имеются четкие клинические или лабораторные показания к их проведению.

В настоящее время на смену этим инвазивным методам приходят радиологические тесты и методы сканирования, упомянутые в первой и второй группе лабораторных исследований.

источник

Лабораторные методы исследования являются большим подспорьем в распознавании заболевания. Серологическая диагностика проводится с антигеном из риккетсий Бернета в реакции агглютинации и реакции связывания комплемента.

Реакция агглютинации часто бывает положительной уже к концу 1-й педели и почти всегда к концу 2-й недели заболевания. Реакция связывания комплемента становится положительной с 5—9-го дня заболевания или несколько позже. Обе реакции наиболее выражены на 3—5-й неделе заболевания, затем титр их снижается, по ой и продолжают оставаться положительными до 6—12 мес, иногда и дольше. У больных, леченных антибиотиками, антитела появляются и крови в более поздние сроки и в более низких титрах.

Метод серодиагностики является довольно простым и повсеместно доступным. Наиболее специфичной считается реакция связывания комплемента. Безусловно достоверным считается титр 1:80. При более низких первоначальных титрах следует учитывать динамику их нарастания.

Вместе с тем в ряде случаев при безусловной клинической и эпидемиологической диагностике Ку-лихорадки титр реакции связывания комплемента остается низким в течение всей болезни, а иногда она оказывается даже отрицательной (до 5% случаев).

Общепризнано, что серологические реакции при Ку-лихорадке (в противоположность другим риккетсиозам) бывают отрицательными со всеми типами протея (реакция Вейля—Феликса) и с возбудителями других риккетсиозов.

Антиген для реакции связывания комплемента выпускается в сухом виде и перед постановкой реакции его разводят в физиологическом растворе из расчета 50 млн. риккетсий на 1 мл.

При отдаленности лаборатории доставка материала возможна также в виде сухой капли сыворотки на бумаге. Для постановки внутрикожной аллергической пробы аллерген вводят на внутреннюю поверхность предплечья в дозе 0,1 мл, в разведении 1:10 — 1:5. Реакция считается положительной, если через 6—8 ч появляется гиперемия, затем отечность. Через 20-24 ч в центре гиперемии отмечается небольшой инфильтрат.

По данным как отечественных, так и зарубежных авторов, аллергическая проба еще более специфична, чем реакция связывания комплемента. Положительная реакция у больных выявляется на 3—8—10-й день заболевания и сохраняется в прослеженных случаях до 4 лет. Возможность более длительного сохранения реакции не исключена. Поэтому аллергическая проба при Ку-лихорадке имеет лишь вспомогательное значение, так как с ее помощью невозможно отличить текущее заболевание от имевшего место в прошлом. В эпидемиологической практике метод аллергической пробы может найти применение для ретроспективной диагностики.

Бактериологическая диагностика Ку-лихорадки является наиболее достоверным методом, однако проведение таких исследований требует специально оборудованной лаборатории и подготовленного персонала.

Для выделения возбудителя можно пользоваться кровью, спинномозговой жидкостью, мочой и мокротой (при легочной форме) больного; взятых в разгар заболевания. Материал в объеме 5 мл вводят внутрибрюшинно морской свинке весом 300—400 г, у которой затем ежедневно измеряют ректальную температуру. Если температура повышается более 39,5°, то производят дальнейшие пассажи здоровым морским свинкам 10% взвесью печени и селезенки больной морской свинки, так как в ряде случаев при первых пассажах обнаружить возбудителя не удается.

Возбудитель идентифицируется по обнаружению риккетсий в окрашенных мазках из тканей инфицированных животных, по результатам опытов перекрестного иммунитета, по наличию в сыворотке выздоравливающих морских свинок специфических комплементсвязывающих антител.

Более быстрым методом лабораторной диагностики является введение 0,25 мл 10% взвеси крови или селезенки в яичко здоровой морской свинки. При этом уже в первом пассаже можно обнаружить риккетсии в зараженном яичке на 7—10-й день заболевания.

Культивирование выделенных штаммов возможно также на 7-дневных куриных эмбрионах, которых заражают 0,5 мл 10% взвеси селезенки пассажной морской свинки.

При посылке материала в лабораторию рекомендуется (для сохранения возбудителя) помещать сгустки крови в химически чистый глицерин. Материал забирают в стерильных условиях.

Если вы нашли ошибку, пожалуйста, выделите фрагмент текста и нажмите Ctrl+Enter.

источник

Лихорадка Ку – риккетсиозная инфекция, протекающая с лихорадочным синдромом и поражением легких, в частности, с развитием атипичной пневмонии. Начальный период лихорадки Ку характеризуется общетоксическими проявлениями; в период разгара доминируют симптомы трахеита, бронхита, пневмонии. Диагноз лихорадки Ку основан на комплексе клинико-эпидемиологических и лабораторных данных (РСК, ИФА, РНФ, бактериологический анализ), внутрикожных и биологических проб, рентгенографии легких. Основу лечения лихорадки Ку составляет антибиотикотерапия; дополнительно проводится дезинтоксикационная, десенсибилизирующая, противовоспалительная терапия, ингаляции.

Лихорадка Ку (Q-лихорадка, пневмориккетсиоз, балканский грипп) – острый, природно-очаговый клещевой риккетсиоз, характеризующийся преимущественным поражением дыхательной системы. Лихорадка Ку распространена во всех географических зонах, наиболее широко в Австралии и Америке. Спорадические и групповые случаи заболевания также регистрируются в Европе, Азии, ряде районов России и СНГ. Лихорадка Ку отличается высокой контагиозностью, к инфекции восприимчивы лица различного возраста. Чаще заражаются жителей сельской местности, работающие на животноводческих фермах, птицефермах, скотобойнях; занятые охотой, сбором, хранением и переработкой мяса, кожи, меха и пуха. Несмотря на незначительный удельный вес лихорадки Ку в структуре инфекционных заболеваний, высокая частота тяжелых пневмоний и осложнений определяют актуальность и инфекционную настороженность в отношении данной патологии.

Возбудителями лихорадки Ку являются облигатные внутриклеточные паразиты — риккетсии Бернета (коксиеллы, Coxiella burnetii). Они представляют собой мелкие неподвижные грамотрицательные бактерии, способные образовывать фильтрующиеся и спорообразные формы. Риккетсии Бернета обитают и репродуцируются в живых, активно метаболизирующих клетках — внутри эпителиоцитов кишечного тракта клещей, в клетках различных органов и систем человека. Возбудителя лихорадки Ку отличает высокая устойчивость к факторам внешней среды: вне живого организма они сохраняют жизнеспособность несколько месяцев. Коксиеллы устойчивы к ультрафиолетовым лучам, дезинфектантам (хлорной извести, формалину), повышенной и низкой температуре, однако при кипячении погибают в течение одной минуты.

Природным источником возбудителя лихорадки Ку выступает более 40 разновидностей клещей (в основном, иксодовые, а также гамазовые, аргасовые и др.), инфицированные дикие и домашние животные, птицы, выделяющие коксиелл в окружающую среду на протяжении всего периода заболевания. Передача инфекции человеку осуществляется различными путями: аспирационным, алиментарным, контактным, трансмиссивным. Чаще всего возбудитель лихорадки Ку проникает через слизистые оболочки дыхательных путей при вдыхании инфицированной пыли во время обработки шкур и шерсти животных; через поврежденные кожные покровы при уходе за больными животными; через ЖКТ при употреблении инфицированных мяса, молока, воды. Природные очаги лихорадки Ку поддерживаются зараженными клещами. Инфицирование людей чаще происходит в весенне-летне-осенний период.

В месте проникновения возбудителя в организм человека воспалительной реакции не возникает. Бактериемия приводит к поражению ретикулогистиоцитарной системы, сопровождается выраженной токсемией, развитием специфических дистрофических изменений в сердечно-сосудистой и нервной системах, почках, других внутренних органах. Риккетсии Бернета обладают выраженной пневмотропностью, поэтому при лихорадке Ку наибольшие изменения возникают в дыхательной системе.

Лихорадка Ку может протекать в острой, подострой и хронической форме. В динамическом течении заболевания выделяют инкубационный, начальный период, период разгара и реконвалесценции. Инкубационный период варьирует от 3 до 30 дней (в среднем 19-20 дней).

Заболевание начинается внезапно, с быстрого подъема температуры до 39-40˚C, озноба и потливости, сопровождающихся сильной головной болью, миалгией и артралгией, выраженной слабостью и бессонницей. Часто наблюдается гиперемия лица и шеи, слизистой зева, инъекция сосудов склер и конъюнктивы. Иногда отмечается сыпь розеолезного или пятнисто-папулезного характера. Выявляются приглушенные тоны сердца, брадикардия, умеренная артериальная гипотензия. Начальный период лихорадки Ку продолжается 7-9 дней. Через несколько дней температура снижается, непродолжительно держится на субфебрильных значениях, пока не наступает вторая волна лихорадки.

В разгар заболевания начинают доминировать признаки поражения органов дыхания – развивается картина трахеита, бронхита или атипичной пневмонии. Больных лихорадкой Ку беспокоит чувство стеснения в груди, кашель сухой или с выделением скудной мокроты, сопровождающийся болью в грудной клетке. С развитием пневмонии кашель становится влажным с серозно-гнойной мокротой, иногда с примесью крови; появляется одышка, выслушиваются сухие, реже влажные мелкопузырчатые хрипы. Течение пневмонии при лихорадке Ку – торпидное, с медленным разрешением клинических и рентгенологических признаков.

Стадия реконвалесценции протекает с постепенным снижением температуры, улучшением самочувствия больных, исчезновением основных клинических симптомов. Отмечается длительный астенический синдром, восстановление работоспособности происходит медленно. Подострая форма лихорадки Ку имеет продолжительность от 1 до 3 месяцев, обычно легкое или среднетяжелое течение с волнообразным небольшим подъемом температуры. Для хронической формы характерен часто рецидивирующий, вялотекущий процесс длительностью от нескольких месяцев до 1 года и более.

Осложнения лихорадки Ку наблюдаются нечасто. В отдельных случаях может развиться плеврит, инфаркт легкого, эндокардит, менингоэнцефалит, пиелонефрит, панкреатит, гепатит, орхит или эпидидимит риккетсионной природы, тромбофлебит глубоких вен конечностей, неврит. Присоединение вторичной инфекции сопровождается формированием абсцессов.

Диагноз лихорадки Ку основывается на комплексе клинико-эпидемиологических данных, результатах лабораторного и инструментального обследования. В крови больных лихорадкой Ку отмечается тромбоцитопения, относительный лимфо- и моноцитоз, умеренное увеличение СОЭ; в моче — протеинурия и гематурия. Лихорадку Ку подтверждает выделение культуры возбудителя в крови, моче, мокроте, ликворе больных с помощью бактериологического посева на тканевые среды или методом биологической пробы на морских свинках и грызунах. Чистые культуры риккетсий получают путем введения исследуемого материала в куриные эмбрионы.

Рентгенография грудной клетки при риккетсиозной пневмонии выявляет мелкоочаговые инфильтраты в нижних отделах и прикорневых зонах, усиление легочного рисунка, уплотнение и расширение корней легких, увеличение перибронхиальных лимфоузлов. Специфическая диагностика лихорадки Ку включает серологические методы: РСК, РНФ, ИФА, внутрикожные пробы с очищенным антигеном возбудителя. Диагностические титры становятся положительными на 10-12 день заболевания и достигают максимума к 3-4 неделе.

Природные очаги лихорадки Ку определяют исследованием гемолимфы и кишечника клещей, а также препаратов-отпечатков внутренних органов животных на наличие риккетсий Бернета. Необходимо проведение дифференциальной диагностики лихорадки Ку с туберкулезом легких, гриппом, сыпным и брюшным тифом, острым и подострым бруцеллезом, лептоспирозом, туляремией, пневмониями различного генеза, сепсисом.

Лечение заболевших лихорадкой Ку проводится в стационаре, однако специальной изоляции пациентов не требуется. Рекомендован постельный режим, диета. В качестве этиотропной терапии назначаются антибиотики тетрациклинового ряда (биомицин, окситетрациклин), возможно в комбинации с хлорамфениколом. Длительность курса терапии 8-10 дней; снижение сроков и дозы приема препаратов способствует развитию рецидивов.

Целесообразен прием антигистаминных препаратов, НПВС, поливитаминов. По показаниям назначается дезинтоксикационная терапия; при развитии патологии дыхательной системы проводится оксигенотерапия, ингаляции с бронходилататорами. При тяжелых формах лихорадки Ку применяются кортикостероиды (преднизолон, дексаметазон).

Прогноз лихорадки Ку благоприятный, большинство случаев заболевания заканчивается полным выздоровлением, иногда могут развиваться затяжные и хронические формы заболевания. Летальные исходы наблюдаются крайне редко. Профилактика лихорадки Ку включает комплекс противоэпидемических, ветеринарных и санитарно-гигиенических мероприятий. Эти меры предполагают проведение противоклещевой обработки пастбищ, уничтожение грызунов, ветеринарный надзор за скотом, тщательную термическую обработку мяса, молока и воды. В природных очагах особую актуальность имеют вопросы соблюдения личной гигиены, иммунизации лиц группы риска живой вакциной.

источник

Повышение температуры до 39–40° С.
Сильная головная боль.
Озноб.
Потливость.
Плохой аппетит.
Нарушенный сон.
Боль при движении глаз.
Боль в суставах, мышцах.
Сухой кашель, утрудненное дыхание.
Падение артериального давления.
Уменьшение частоты пульса.
Боли в животе, вздутие.
Поносы или запоры.
Тяжесть в правом и левом подреберье.

Существуют основные пути передачи:

Воздушно-пылевой (самый частый) – происходит при вдыхании пыли, работе с инфицированной соломой, шерсти, меха, пуха (коксиеллы длительное время сохраняются в высушенном состоянии).
Контактный – при контакте с животными, чаще при их забое, уходе.
Трансмиссивный – при укусе человека иксодовыми клещами.
Алиментарный – при использовании пищевых продуктов: сырого молока, кефира, мяса, воды.

работники мясоперерабатывающих предприятий;
работники молокозаводов;
производства, связанные с шерстью, мехом, пухом;
охотники.

Бактерии попадают в лимфу и циркулируют в лимфатической системе некоторое время. С лимфы они попадают в кровь.
Происходит распространение коксиелл Бернета. Они оседают в тканях лимфатических узлов, печени, селезёнки, костного мозга, легких.
Следующий этап – размножение в этих органах. На данном этапе возникает интоксикация и лихорадка.
Аллергическая реакция на возбудителя и его токсины.
Следующий этап – формирование иммунитета с регрессией всех проявлений.

Используют следующие антибактериальные препараты:
Острая (до 2–3-х недель). Подострая (до 4-х недель). Хроническая (до года). Стёртая (без клинических проявлений). Латентная
Легкое. Средней тяжести. Тяжёлое

Повышение температуры до 39–40° С, уже в первый день.
Сильная головная боль, озноб, потливость, плохой аппетит, нарушенный сон, боль при движении глаз, боль в суставах, мышцах.
Сухой кашель, утрудненное дыхание.
Падение артериального давления, уменьшение частоты пульса.
Боли в животе, вздутие, поносы или запоры.
Тяжесть в правом и левом подреберье.

Лихорадка вызывает такие внешне изменения:

Покраснение лица, шеи, склер, слизистой оболочки ротоглотки.
Проявление герпеса на губах, носу.
Язык покрытый грязно-серым налётом.
Живот умеренно вздутый.
Увеличение печени и селезёнки (с 3–4-го дня от начала заболевания).
С 6–8-го дня болезни появляются высыпания на боковых поверхностях туловища и живота.

Важно! Для успешного выздоровления необходимо пройти полный курс лечения антибиотиками. Стоит учитывать, что даже после нормализации температуры лекарство нужно принимать не меньше недели

Осложнения встречаются редко благодаря лечению антибиотиками. Возможны следующие осложнения:

пневмония;
плеврит;
гнойник в лёгких;
панкреатит;
пиелонефрит;
поражение клапанов сердца.

Используют такие лабораторные и инструментальные методы:

Общий анализ крови: уменьшение лейкоцитов, увеличение СОЭ.
Серологические методы: РСК (реакция связывания комплимента) с диагностическими сыворотками – нарастание титра антител (1:16 – 1:32) на 2–3 недели болезни.
ПЦР (полимеразная цепная реакция) – выявление генетического материала бактерии первые 2 недели высокой температуры.
УЗИ (ультразвуковое исследование) печени, селезёнки, сердца.
Рентгенологическое исследование лёгких – при пневмонии.

По 0,1 г в сутки на протяжении 10 дней

По 0,2 г 3 раза в день, не меньше 14 дней

В 1-й день – 0,5 г, со 2–5 день по 0,25 г

Совет врача! Назначать себе лечение самостоятельно и приписывать антибиотики ни в коем случае нельзя. Этим должен заниматься профессиональный доктор

Общая профилактика включает проведение ветеринарно-санитарных мероприятий:

Наблюдение и раннее выявление больных животных.
Определение качества мясных и молочных продуктов.
Отказ от приёма сырого молока.
Проведение борьбы с клещами (противоклещевая обработка пастбищ) в очагах.
Систематическая уборка помещения, где находятся животные, дезинфекция пола.
Соблюдение личной гигиены ветеринарами и работниками предприятий, контактирующих с животными (защитная одежда, очки, респираторы).

источник

Используют следующие антибактериальные препараты: