Меню Рубрики

Малярия взятие крови приготовление тонкого мазка и толстой капли

Показания: подозрение на малярию.

1. Иглу – копьё (скарификатор)

8.Лоток для использованного материала.

1. Установить доверительные отношения с пациентом, объяснить цель и ход исследования, получить согласие на проведение манипуляции.

1. Выполнить гигиеническую обработку рук, надеть перчатки.

2. Обработать место прокола стерильным ватным шариком, смоченным в спирте.

3. Проколоть иглой – копьём кожу

четвертого пальца или мочки уха.

4. Стереть первую каплю крови сухим ватным шариком.

5. К следующей капле крови прикасаются стеклом в 2 местах на небольшом расстоянии друг от друга, не касаясь пальца.

6. Затем, углом другого стекла или стеклянной палочкой обе капли соединяют и размазывают до диаметра 10-15 мм.

Последующий уход: не требуется.

1. Забор крови желательно проводить в период повышения температуры в начале заболевания и на фоне нормальной температуры в конце заболевания для контроля эффективности лечения.

2. Обычно для каждого пациента готовят 2-3 толстые капли одновременно и 1 мазок крови.

2. Препарат «толстой капли» высушивают при комнатной температуре и окрашивают по методу Романовского – Гимзе.

2.Если при взятии крови, кровь идёт

Выдавливать кровь из пальца

нельзя, т.к. может выступать лимфа,

а это повлияет на результаты

— объяснить пациенту значение исследования.

— предупредить пациента, что будет небольшой укол. Попросить потерпеть, не напрягать кисть.

Показания: пищевые токсикоинфекции, холера.

1.Широкогорлые стерильные флаконы (банки).

2. металлическую ложку или пипетку

3. Плотную бумагу или целлофан.

Подготовка пациента: не требуется.

1. Выполнить гигиеническую обработку рук, надеть перчатки.

2. Рвотные массы собрать в стерильные банки или широкогорлые флаконы в количестве 50-100 (мл)

2. Отверстие банки или флакона

закрыть целлофаном или плотной вощеной бумагой. Материал направить в лабораторию.

Последующий уход: если у пациента продолжается рвота, оказать помощь, после прекращения рвоты пациенту дать прополоскать рот, умыть, переодеть.

Возможные осложнения: распространение инфекции.

Примечания: аналогичным способом можно собрать промывные воды желудка, но промывание следует производить кипяченой водой без применения антисептических

средств, обладающих губительным действием на микробы.

— рассказать пациенту о значении исследования.

— пациента успокоить, следить за его состоянием.

— забор производится специальной металлической ложкой или пипеткой с резиновым грушевидным баллончиком на конце.

Забор крови на серологическое исследование

Показания: подозрение на брюшной тиф, вирусные гепатиты, ВИЧ-инфекцию и другие инфекционные заболевания.

1.Центрифужные пробирки в штативе.

2.Инъекционную иглу с широким просветом.

3.Стерильные марлевые шарики, салфетки, бинт.

9. Клеёнчатую подушку, обёрнутую пелёнкой.

10.Ёмкость с дезинфицирующим раствором.

11.Лоток для использованного материала.

1.Установить доверительные отношения с пациентом.

2.Объяснить пациенту цель и ход процедуры, получить согласие.

3.Помочь пациенту занять удобное положение (сидя или лёжа).

4.Под локоть пациента подложить клеёнчатую подушку, обёрнутую стерильной салфеткой или пелёнкой.

1.Обработать руки на гигиеническом уровне, надеть стерильные перчатки.

2.Подготовить стерильный лоток со стерильной иглой для венепункции и стерильной салфеткой, штатив с центрифужными пробирками.

3.Осмотреть и пропальпировать вену.

4.Исследовать пульс на лучевой артерии.

5.Наложить жгут на плечо пациента, обёрнутое стерильной пелёнкой.

6.Повторно исследовать пульс.

7.Попросить пациента работать кулаком.

8.Дважды обработать кожу внутренней поверхности локтевого сгиба спиртом в направлении от периферии к центру (сначала большую поверхность, затем только место венепункции).

9.Ниже места предстоящей венепункции положить стерильную марлевую салфетку.

10.В правую руку взять иглу для венепункции, попросить пациента зажать кулак.

11.Большим пальцем левой руки зафиксировать вену, правой рукой выполнить венепункцию, левой рукой подставить под канюлю иглы пробирку и набрать необходимое количество крови.

12. Поставить пробирку в штатив.

13. Попросить пациента разжать кулак, снять жгут и приложив к месту венепункции стерильный марлевый шарик, смоченный спиртом, извлечь иглу.

14.Попросить пациента согнуть руку в локтевом суставе или наложить давящую повязку.

1.Весь использованный инструментарий подвергнуть дезинфекции.

4.Оформить направление в лабораторию. Доставить пробирку с кровью в лабораторию.

Возможные осложнения: гематома, инфицирование.

центрифугируется, из неё готовится

сыворотка и проводится реакция агглютинации с готовыми диагностикумами различных заболеваний.

2. Недостаток метода в том, что антитела появляются на 5-7 день болезни, преимущества — точный и используется для контроля за эффективностью лечения.

3.При заборе крови на ВИЧ – инфекцию используется шприц- контейнер.

– выявление специфических антител к возбудителю заболевания или антигенов микроорганизма .

источник

ЦЕЛЬ: диагностическая, обнаружение малярийных плазмодиев в крови

1. 70% раствор спирта этилового и эфир медицинский.

2. Предметные стёкла, обезжиренные смесью Никифорова.

3. Бланки направлений, авторучка.

9. Ёмкость с дезинфицирующим раствором.

10. Стерильные: лоток, индивидуальные перья-копья, пинцет, ватные шарики.

ПОДГОТОВКА ПАЦИЕНТА И МЕДИЦИНСКОГО РАБОТНИКА:

1. Установить доверительные отношения с пациентом.

2. Объяснить пациенту цель и ход процедуры, получить его согласие.

ТЕХНИКА ВЫПОЛНЕНИЯ:

2. Надеть перчатки и маску.

3. Обработать кожу IV пальца руки пациента спиртом с эфиром.

4. Вскрыть перо – копье, проверив срок годности.

5. Проколоть мякоть латеральной фаланги IV пальца индивидуальным пером-копьём.

6. Поместить перо в лоток для сброса.

7. Снять первую каплю крови сухим ватным шариком.

8. Поместить шарик в ёмкость с дезинфицирующим раствором.

9. Повернуть палец проколом вниз.

10. Прикоснуться предметным стеклом ко второй капле крови в двух местах (при необходимости взять 2 — 3 стекла).

11. Приложить ватный шарик со спиртом к месту прокола.

12. Размазать каплю крови на предметном стекле в диск диаметром 10-15 мм углом второго предметного стекла.

13. Обвести толстую каплю крови стеклографом с обратной стороны стекла.

14. Указать регистрационный номер с обратной стороны стекла.

15. Высушить препарат на воздухе в горизонтальном положении, предохраняя от пыли и мух.

16. Поместить стекло с толстой каплей между двумя предметными стёклами, используя спички и круглую резинку.

17. Поместить препарат в конверт.

1. Оформить направление в паразитологическую лабораторию.

2. Отправить конверт в лабораторию сразу же.

3. Провести дезинфекцию использованного инструментария и оснащения:

· Перо- копьё замочить в 5% растворе хлорамина на 60 минут, затем утилизировать.

· Тампон и марлевую салфетку замочить в 5% растворе хлорамина на 60 минут, а затем утилизировать.

· Лоток обработать двукратным протиранием 3% хлорамином с интервалом 15 минут или погрузить в раствор на 1 час.

· Снять перчатки, опустить в 5% раствор хлорамина на 1 час, затем утилизировать.

ИНСТРУКЦИЯ ПО ЗАБОРУ МАТЕРИАЛА

ПРИ ПОДОЗРЕНИИ НА ЗАБОЛЕВАНИЕ ХОЛЕРОЙ.

ПОМНИ! Испражнения и рвотные массы для лабораторного исследования нужно брать немедленно при выявлении больного и обязательно до начала лечения. Вся посуда для проведения забора материала должна быть стерильной, проверена на целостность и подписана до начала забора материала.

1. Защитный костюм 4-го типа.

2. Стерильная банка с плотной крышкой.

3. Стерильная ложка или шпатель.

4. Емкости для дезинфицирующих растворов и ветошь.

6. Целлофановые пакеты и крафт-бумага.

7. Контейнер или бикс для транспортировки.

9. Резиновое кольцо или шпагат.

10. Лейкопластырь или липкая лента.

ПОДГОТОВКА МЕДИЦИНСКОГО РАБОТНИКА:

1. Приготовить необходимое оснащение.

2. Заполнить направление, завернуть его в целлофановый пакет и положить в бикс.

3. Промаркировать емкости: «1% хлорамин», «3% хлорамин».

4. Надеть защитный костюм 4 типа (длинный медицинский халат, перчатки, шапочку, клеенчатый фартук, маску).

5. Развести хлорамин в 2-х ёмкостях: 3% и 1%.

ТЕХНИКА ВЫПОЛНЕНИЯ:

Читайте также:  Почему малярия в одном месте

ПОМНИ! Материал для исследования на холеру берется только из судна или других ёмкостей для сбора испражнений.

1. Взять стерильные ёмкости (баночки) для сбора испражнений с плотными крышками, промаркировать их.

2. Набрать из судна (лотка, таза) испражнения или рвотные массы стерильным шпателем или ложкой до 50 мл.

3. Положить шпатель (ложку) в ёмкость с 3% раствором хлорамина.

4. Наружную поверхность ёмкости (баночки) протиреть ветошью, смоченной в 1% хлорамине.

5. Плотно закрыть крышкой, обернуть крышку крафт-бумагой или поместить в целлофановый пакет, закрепив резиновым кольцом.

6. Поместить емкости с материалом в контейнер или бикс.

7. Обработать руки в перчатках 1% раствором хлорамина.

8. Закрыть контейнер (бикс), обработать 1% раствором хлорамина и заклеить лейкопластырем или липкой лентой.

9. Обработать руки в перчатках 1% раствором хлорамина.

10. Промаркировать контейнер: «ВЕРХ», «НЕ ОТКРЫВАТЬ!».

1. Бикс отправить в бактериологическую лабораторию ЦГСЭН под роспись (3 этаж) с медицинским работником, прошедшим инструктаж. Во время транспортировки бикс не открывать, не болтать и не переворачивать. После доставки материала контейнер (бикс) обрабатывается и доставляется в отделение.

2. Провести дезинфекцию испражнений пациента: засыпать сухой хлорной известью 1: 5, экспозиция 1 час.

3. Провести обработку фартука 3% хлорамином.

4. Снять загрязненные перчатки и погрузить их в 5% хлорамин на 1 час, затем утилизировать.

5. Обработать руки 70% спиртом, надеть стерильные перчатки и начать оральную регидратацию.

6. После ее проведения провести обработку инструментария и рабочего места.

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском:

Лучшие изречения: Только сон приблежает студента к концу лекции. А чужой храп его отдаляет. 8534 — | 7363 — или читать все.

195.133.146.119 © studopedia.ru Не является автором материалов, которые размещены. Но предоставляет возможность бесплатного использования. Есть нарушение авторского права? Напишите нам | Обратная связь.

Отключите adBlock!
и обновите страницу (F5)

очень нужно

источник

Основной метод лабораторной диагностики малярии – обнаружение эритроцитарных паразитов в толстой капле или мазке крови. В практической работе исследуют преимущественно толстые капли, так как за один и тот же промежуток времени в толстой капле можно просмотреть в 30- 50 раз больший объем крови, чем в мазке, а следовательно, и количество плазмодиев в ней больше. К мазку обращаются лишь в тех случаях, когда видовую принадлежность найденных паразитов по толстой капле установить не удается. Для выявления возбудителей малярии кровь берут при первом же подозрении на эту инфекцию независимо от температуры тела (лучше всего во время лихорадки или сразу после озноба), поскольку паразиты циркулируют в крови и в интервале между приступами.

Предметные стекла, на которых готовят препараты, должны быть хорошо вымыты и обезжирены. Кровь берется с соблюдением правил асептики. Кожу пальца протирают спиртом и прокалывают стерильной иглой-копьем или толстой инъекционной иглой. Если кровь из мякоти пальца вытекает плохо, то больного просят сделать несколько энергичных движении рукой, кистью и слегка массируют палец. Первую выступившую каплю крови вытирают сухой ватой, затем палец поворачивают проколом вниз и ко второй капле прикасаются предметным стеклом.

Тонкие мазки крови приготавливают по методике, общепринятой для гематологических исследований. Мазок не должен доходить ни до конца, ни до краев предметного стекла. Поэтому капля крови должна быть диаметром не более 2–3 мм. Предметное шлифованное стекло, которым делается мазок, должно быть уже стекла, на которое наносят мазок. Для этого углы шлифованного стекла обламывают пинцетом. В целях приготовления мазка шлифованное стекло славят перед каплей крови под углом 45° и продвигают вперед до соприкосновения с ней. Когда кровь равномерно распределится между обоими стеклами, быстрым дви-жением делают мазок.

Для приготовления толстой капли крови на предметное стекло наносят каплю крови диаметром около 5 мм. Эту каплю размазывают иглой или углом предметного стекла в диск диаметром 10–15 мм. Толщина капли должна быть такой, чтобы сквозь нее можно было читать газетный шрифт Мазки не должны быть толстыми, поскольку после высыхания они растрескиваются и отстают от стекла. Обычно на стекло наносят 2–3 капли на некотором расстоянии одна от другой. Взятые капли должны быть отмечены. На обратной стороне стекла восковым карандашом указывается фамилия больного или соответствующий регистрационный номер.

Очень удобно наносить толстую каплю на влажный толстый мазок крови. В этом случае капля самостоятельно растекается в правильный диск. Простым карандашом на мазке делается маркировка препарата Такой препарат удобен еще и тем, что в мазке довольно хорошо сохраняется часть пораженных эритроцитов, а это важно для уточнения вида паразита. Преимущество данного метода в том, что капля, нанесенная на мазок, удерживается более прочно, чем нанесенная непосредственно на стекло.

Приготовленные толстые капли высушивают при комнатной температуре не менее 2–3 ч без какого-либо дополнительного подогревания во избежание фиксации крови. После высыхания капли на нее наливают краску Романовского- Гимза. разведенную как обычно (2 капли краски на 1 мл дистиллированной воды). Продолжительность окраски в среднем составляет 30- 45 мин. Окрашенную каплю осторожно ополаскивают водопроводной водой (сильная струя может смыть каплю) и просушивают в вертикальном положении. Фильтровальной бумагой ее высушивать нельзя. При окраске капли в водных растворах красок происходит выщелачивание гемоглобина из эритроцитов, вследствие чего в окрашенной капле эритроциты уже не видны. Из форменных элементов сохраняются лейкоциты и тромбоциты.

Мазки фиксируют, помещая их на 3 мин в метиловый или на 10 мин в 96% этиловый спирт. Зафиксированные препараты высушивают на воздухе, защищая от пыли и мух. Потом препараты помещают в специальный контейнер и окрашивают азур-эозиновым красителем по Романовскому – Гимза на протяжении 20- 30 мин.

По истечении этого срока контейнер подставляют под слабую струю воды и промывают. После того как из контейнера польется неокрашенная вода, остатки ее сливают и промывают еще раз. Не рекомендуется сначала сливать краску, а затем промывать мазок водой, поскольку пленка, образовавшаяся на поверхности красителя, может попасть на препараты и оказаться причиной Диагностической ошибки. Капля на мазке окрашивается так же, как толстая капля.

Промытые препараты высушивают и исследуют под микроскопом. В зараженных эритроцитах видны плазмодии малярии с голубой цитоплазмой и ярко-красным ядром. Нахождение плазмодиев малярии в крови больного является неоспоримым доказательством болезни.

источник

Диагностика малярии основана на данных клинических проявлений, эпидемиологического расследования и лабораторных методах исследования, включающих методики выявления паразитов, их количества, видовую принадлежность и обнаружение антител в организме исследуемого. Обследованию в первую очередь подлежат пациенты из группы риска — прибывшие из эндемичных по малярии регионов, лихорадка у которых появилась в первые два года после выезда из этих регионов.

Рис. 1. Забор крови для приготовления препарата «толстая капля».

Рис. 2. Окраска и вид препаратов «толстая капля» и тонкий мазок.

Микроскопия препарата «толстая капля» и тонкого мазка, позволяющая обнаружить паразитов, их количество и видовую принадлежность, является ведущим методом диагностики малярии. Она проводится при малейшем подозрении на это заболевание, независимо от температурной реакции пациента. Для определения видовой принадлежности паразитов и стадии заболевания используется тонкий мазок крови. В толстой капле локализуется больше паразитов, чем в мазке. Этот метод диагностики превосходит методику определения наличия возбудителей малярии в тонком мазке крови в 20 — 40 раз.

Читайте также:  Малярия от животного к человеку

В периферической крови паразиты обнаруживаются через определенное время после заражения:

  • при 3-х дневной малярии — через 8 — 12 дней,
  • при тропической — от пяти с половиной дней до 12,
  • при 4-х дневной — через 15 — 21 день,
  • при малярии, подобной 3-х дневной — через 9 — 15 дней.

Паразиты в крови присутствуют как во время лихорадочного приступа, так и в межприступный период и при паразитоносительстве.

Рис. 3. Техника приготовления тонкого мазка.

Полученная при проколе пальца капля крови наносится на предварительно очищенное и сухое предметное стекло и размазывается до получения пятна 1 см в диаметре. После подсушивания на воздухе предметное стекло заливается краской Романовского—Гимзы. По истечении 40-минутной экспозиции препарат ополаскивается под проточной водой и подсушивается при комнатной температуре, установленный в вертикальное положение.

Под микроскопом исследуется не менее 100 полей зрения. Более эффективным считается исследование 2-х толстых капель в течение 2,5 минут, чем 1-й капли в течение 5-и минут. 100 полей зрения просматриваются даже в том случае, когда малярийные плазмодии выявились уже в первых полях. Это производится для того, чтобы не пропустить микст-инфекцию.

Рис. 4. Микроскопия препарата «толстая капля» и тонкого мазка является ведущим методом диагностики малярии.

Порогом обнаружения малярийных плазмодиев называется минимальная концентрация возбудителей, которую возможно выявить при микроскопировании препарата «толстая капля». При заболевании этот показатель составляет 5 паразитов в одном микролитре крови. При просмотре 100 полей зрения обследуется 0,2 мкл крови.

При наличии косвенных признаков малярии (пребывание в эндемичных зонах, гипохромная анемия, обнаружение пигмента в моноцитах) и отрицательных результатов исследования препаратов «толстая капля», исследование вновь повторяется более тщательно, и не одно, а серия, состоящая из 4 — 6 препаратов при одном уколе, либо полученных при заборе крови, который производится 4 — 6 раз в сутки в течение 2 — 3 дней.

Интенсивность паразитемии определяется знаком «+».

  • 1 (+) обозначает выявление от 1 до 100 паразитов в 10 п/зр, что соответствует 5 — 50 плазмодиям в одном мкл крови;
  • 2 (+) обозначает выявление от 10 до 100 паразитов в 10 п/зр, что соответствует 50 — 500 плазмодиям в одном мкл крови;
  • 3 (+) обозначает выявление от 1 до 10 паразитов в 1 п/зр, что соответствует 500 — 5000 плазмодиям в одном мкл крови;
  • 4 (+) обозначает выявление от 10 до 100 паразитов в 1 п/зр, что соответствует 5000 — 50000 плазмодиям в одном мкл крови;
  • 5 (+) обозначает выявление более 100 паразитов в 1 п/зр, что соответствует более 50000 плазмодиям в одном мкл крови.

Интенсивность паразитемии можно вычислить по количеству паразитов на 100 эритроцитов в 10 полях зрения, либо по соотношению числа паразитов и лейкоцитов в 1 мкл крови.

По интенсивности паразитемии определяется прогноз при тропической малярии. При других видах заболевания более 2% эритроцитов не поражается.

В препарате крови «толстая капля» возможно определить плазмодии малярии, находящиеся на разных стадиях развития — трофозоида, кольца, шизонта, морулы, и гаметы.

Рис. 5. Plasmodium ovale имеет округлую форму.

Рис. 6. Молодой трофозоит Plasmodium vivax в эритроците.

Рис. 7. Юные трофозоиды Plasmodium falciparum.

Рис. 8. Кольцевидные трофозоиты Plasmodium vivax.

Рис. 9. Амебовидные шизонты Plasmodium vivax.

Рис. 10. Зрелые шизонты Plasmodium vivax.

Рис. 11. Женские гаметоциты возбудителей тропической малярии.

Рис. 12. Гаметоциты плазмодий тропической малярии имеют полулунную форму, плазмодии других видов заболевания — округлую.

Рис. 13. В процессе роста в цитоплазме паразитов накапливается пигмент. На фото Р. vivax.

При адекватном лечении малярии уровень паразитемии в течение суток снижается на 25% и более, а через 3 суток от начала лечения он должен составлять не более 25% от исходного. В случае обнаружения паразитов на 4-е сутки от начала лечения свидетельствует о развитии лекарственной резистентности возбудителей.

При выявлении малярии микроскопическое исследование препаратов крови проводится ежедневно. При тяжелой форме тропической малярии микроскопия проводится 2 раза в день до исчезновения возбудителей в крови и далее еженедельно до 28 дня лечения с целью оценки его эффективности и выявления резистентности к противомалярийным препаратам.

Рис. 14. Эритроциты при инфицировании P. vivax и P. ovale увеличиваются, обесцвечиваются и деформируются, в них появляется токсическая зернистость.

При инфицировании P. malariae и P. falciparum форма и размеры эритроцитов не изменяется. На фото деформированные эритроциты больного малярией (микрофотография в сканирующем микроскопе).

С помощью серодиагностики малярии возможно выявить в сыворотке крови пациента антитела и растворимые паразитарные антигены. Серологические реакции показаны к применению в случаях появления у больных лихорадки неясного генеза, гепатоспланомегалии, анемии, а также для исследования крови донора — предполагаемого источника инфекции. Серологические реакции применяются при эпидемиологическом наблюдении за лицами, проживающими в неблагополучных по малярии в прошлом территориях.

Чаще всего при диагностике малярии применяется НРИФ — непрямая реакция иммунофлуоресценции. Используются так же ИФА, РИГА и др. Внедряется в практику использование реакции энзим-меченых антител (РЭМА).

В случаях очень низкой паразитемии показано применение ПЦР (полимеразной цепной реакции). Дороговизна и сложность применения данной методики не позволяет широко ее использовать.

Разработаны новые методы диагностики малярии — экспрессного микроскопического анализа препаратов крови с использованием флюоресцирующих красителей, позволяющие в течение двух минут выявить паразитов тропической малярии, количество которых более 60 в 1 мкл гемолизированой крови.

При малярии антитела появляются на 8 — 27 день паразитемии. Первыми появляются антитела IgM, затем — антитела IgG. Антитела после перенесенной малярии и успешного излечения могут длительно сохраняться в крови человека — от 0,5 до 2 и даже 20 лет.

Рис. 15. Чаще всего при диагностике малярии применяется НРИФ — непрямая реакция иммунофлуоресценции.

Малярию следует отличать от гриппа и других ОРВИ, кишечных инфекций, лептоспироза, желтой лихорадки, злокачественных форм вирусных гепатитов, тифо-паратифозных заболеваний, сепсиса, бруцеллеза, сепсиса, геморрагических лихорадок, заболеваний крови.

При коматозном состоянии малярию следует отличать от эпидемического цереброспинального менингита, уремической, печеночной и диабетической комы.

Иногда малярию следует дифференцировать с холециститом, холангитом, абсцессом печени, пиелонефритом и лимфогранулематозом.

Рис. 16. Рутинное исследование препарата «толстая капля» в регионах эндемичных по малярии.

Приготовление мазка крови и толстой капли для диагностики малярии.

  1. Перед манипуляцией наденьте перчатки.
  2. Подготовьте необходимое оборудование и инструментарий:
  • Скарификатор одноразового использования.
  • 70% раствор этилового спирта.
  • Ватные шарики.
  • Предметное стекло.
  • Предметное стекло с шлифованной краем.
  • Чашку Петри.
  • Стерильный лоток.
  • Лоток для отработанного материала.
  • Сухое мыло.
  • Марлевую салфетку.

Инструментарий и материал должны быть стерильными. Предметное стекло — чистое, сухое, обезжиренное.

  • Предложите пациенту сесть удобно на стул.
  • Объясните ему суть манипуляции.
  • Выясните, какая рука у пациента нерабочая.
  • Помассируйте безымянный палец.
  • Обработайте кожу ногтевой фаланги ватным шариком, смоченным 70% этиловым спиртом по всем правилам и осушите вторым (сухим) ватным шариком.
  • Соблюдайте правила этики и деонтологии при общении с пациентом.

4. Приготовление мазка крови.

  • Сделайте прокол кожи скарификатором.
  • Первую каплю снимите сухим ватным шариком.
  • Прикоснитесь нижней поверхностью предметного стекла ко второй капле на пальце на расстоянии 1-1.5 см от края стекла.
  • Переверните стекло каплей вверх и возьмите в левую руку боковые ребра стекла. Капля располагается сверху и справа. Диаметр капли на стекле должен быть 2-3 мм.
  • Правой рукой установите стекло с шлифованной краем слева от капли под углом 45 0 с наклоном в сторону капли. Стекло с шлифованным краем должно быть немного уже предметного стекла с каплей крови. Продвигайте шлифованный край вправо до соприкосновения с каплей и подождите, пока кровь растечется по краю шлифованного стекла.
  • Не надавливая, быстрым равномерным движением проведите стеклом с шлифованной краем по предметному стеклу, пока капля не будет исчерпана. Мазок должен быть тонким и равномерным, иметь светло-розовую окраску, просвечивать, занимать ½ — ¾ стекла и заканчиваться щёточкой
  • Если крови выделилось недостаточно, предложите пациенту опустить руку вниз — выжимать каплю крови нельзя!
  • Не прикасайтесь предметным стеклом к коже!
Читайте также:  Малярия от животного к человеку

5. Приготовление «толстой капли».

  • На предметное стекло нанесите 2-3 капли крови на небольшом расстоянии друг от друга.
  • Стеклянной палочкой или углом другого предметного стекла смешайте их. Смешивайте легко, чтобы образовалась пятно диаметром 1,5 см. Слой крови не должен быть слишком толстым, иначе при высыхании образуется просто корка, которая отвалится.

6. Оформите сопроводительную документацию по известным Вам правилам и требованиям.

7. Транспортировка в лабораторию.

  • Подсушите мазок и толстую каплю на воздухе. На поверхности стекла ближе к началу мазка напишите номер, совпадающий с номером на направлении.
  • Изготовленные препараты уложите в чашку Петри и в таком виде транспортируйте в лабораторию.

8. Поместите использованное оборудование в дезинфицирующий раствор.

По материалам infection-net.ru

Показания: пищевые токсикоинфекции, холера.

1.Широкогорлые стерильные флаконы (банки).

2. металлическую ложку или пипетку

3. Плотную бумагу или целлофан.

Подготовка пациента: не требуется.

1. Выполнить гигиеническую обработку рук, надеть перчатки.

2. Рвотные массы собрать в стерильные банки или широкогорлые флаконы в количестве 50-100 (мл)

2. Отверстие банки или флакона

закрыть целлофаном или плотной вощеной бумагой. Материал направить в лабораторию.

Последующий уход: если у пациента продолжается рвота, оказать помощь, после прекращения рвоты пациенту дать прополоскать рот, умыть, переодеть.

Возможные осложнения: распространение инфекции.

Примечания: аналогичным способом можно собрать промывные воды желудка, но промывание следует производить кипяченой водой без применения антисептических

средств, обладающих губительным действием на микробы.

— рассказать пациенту о значении исследования.

— пациента успокоить, следить за его состоянием.

— забор производится специальной металлической ложкой или пипеткой с резиновым грушевидным баллончиком на конце.

Забор крови на серологическое исследование

Показания: подозрение на брюшной тиф, вирусные гепатиты, ВИЧ-инфекцию и другие инфекционные заболевания.

1.Центрифужные пробирки в штативе.

2.Инъекционную иглу с широким просветом.

3.Стерильные марлевые шарики, салфетки, бинт.

9. Клеёнчатую подушку, обёрнутую пелёнкой.

10.Ёмкость с дезинфицирующим раствором.

11.Лоток для использованного материала.

1.Установить доверительные отношения с пациентом.

2.Объяснить пациенту цель и ход процедуры, получить согласие.

3.Помочь пациенту занять удобное положение (сидя или лёжа).

4.Под локоть пациента подложить клеёнчатую подушку, обёрнутую стерильной салфеткой или пелёнкой.

1.Обработать руки на гигиеническом уровне, надеть стерильные перчатки.

2.Подготовить стерильный лоток со стерильной иглой для венепункции и стерильной салфеткой, штатив с центрифужными пробирками.

3.Осмотреть и пропальпировать вену.

4.Исследовать пульс на лучевой артерии.

5.Наложить жгут на плечо пациента, обёрнутое стерильной пелёнкой.

6.Повторно исследовать пульс.

7.Попросить пациента работать кулаком.

8.Дважды обработать кожу внутренней поверхности локтевого сгиба спиртом в направлении от периферии к центру (сначала большую поверхность, затем только место венепункции).

9.Ниже места предстоящей венепункции положить стерильную марлевую салфетку.

10.В правую руку взять иглу для венепункции, попросить пациента зажать кулак.

11.Большим пальцем левой руки зафиксировать вену, правой рукой выполнить венепункцию, левой рукой подставить под канюлю иглы пробирку и набрать необходимое количество крови.

12. Поставить пробирку в штатив.

13. Попросить пациента разжать кулак, снять жгут и приложив к месту венепункции стерильный марлевый шарик, смоченный спиртом, извлечь иглу.

14.Попросить пациента согнуть руку в локтевом суставе или наложить давящую повязку.

1.Весь использованный инструментарий подвергнуть дезинфекции.

4.Оформить направление в лабораторию. Доставить пробирку с кровью в лабораторию.

Возможные осложнения: гематома, инфицирование.

центрифугируется, из неё готовится

сыворотка и проводится реакция агглютинации с готовыми диагностикумами различных заболеваний.

2. Недостаток метода в том, что антитела появляются на 5-7 день болезни, преимущества — точный и используется для контроля за эффективностью лечения.

3.При заборе крови на ВИЧ – инфекцию используется шприц- контейнер.

– выявление специфических антител к возбудителю заболевания или антигенов микроорганизма .

По материалам studfiles.net

Достоверное установление диагноза малярии осуществляется исследованием препаратов толстой капли крови и тонкого мазка, и обнаружением в них малярийных паразитов.

Для приготовления препаратов, кровь обычно берут из 4-го пальца левой руки (меньше подвергающегося загрязнению). Концевую фалангу 4-го пальца предварительно протирают кусочком марли или ваты, пропитанной спиртом, после чего спирту дают испариться с поверхности кожи. Укол наносят копьём на глубину 2-3 мм, в зависимости от толщины кожи.

Выступившую на месте прокола первую каплю крови снимают кусочком сухой ваты, дают появиться второй капле, из которой приготовляют препарат.

Предметные стекла должны быть тщательно обезжирены. Для этого их кипятят в мыльном растворе, затем промывают в мыльном растворе. Затем промывают водопроводной и дистиллированной водой и высушивают спиртом.

Приготовление толстой капли.

В капле крови, выступившей из укола, осторожно прикасаются по­верхностью предметного отекла, после чего легким круговым движением, распределяется кровь на большой поверхности, для того, чтобы слой крови не был чересчур толстым (величина капли как 2ух-копевчная монета).

Обычно на одно стекло берут 2 капли, на некотором расстоянии друг от друга, надпись делается восковым карандашом. Капле дают высохнуть на воздухе без подогревания в горизонтальном положении.

Приготовление тонкого мазка

На поверхность предметного стекла на средней линии, ближе к од­ному концу стекла наносят маленькую, каплю крови. Стекло, (каплей вверх и направо) прижимают к горизонтальной поверхности, стола, двумя пальцами правой руки (придерживать отекло следует за ребро). Правой рукой берут шлифованное стекло (край шлифованного стекла должен быть уже предметного), которое устанавливается по середине предметного стекла перед каплей под углом 45°.

Если стекло наклонять под меньшим углом, получится слишком тонкий мазок, а если шлифованное стекло наклонять под большим градусом — мазок будет очень толстым. Затем шлифованное стекло при том же накло­не подводиться к капле до соприкосновения с ней. Капля растекается в остром углу между стеклами;

После того, как кровь распределится ровной полоской между предмет­ным стеклом и краем шлифованного, стекла, последнее легким и быстрым движением продвигается по предметному стеклу в обратном направлении, т.е. справа налево, и кровь, следуя за шлифованным стеклом, тонким слоем равномерно распределяется по поверхности предметного стекла.

После того, как кровь высохнет, у одного края мазка иглой, углом предметного стекла или простым карандашом делают надпись (фамилия, дата, номер карточки и пр). Мазки высушиваются на воздухе (избегать подогревания, не допускать мух).

Высохшие на воздухе мазки, погружают для фиксации в широкогорлую банку с фиксирующей жидкостью (метиленовый алкоголь) на 3 мин или в смеси из равных частей спирта и эфира на 20-30 минут.

источник