Экспресс анализ на дифтерию

Диагностика дифтерии основана на клинических данных с последующим подтверждением диагноза бактериологическим исследованием. Лабораторная диагностика дифтерии включает в себя ряд исследований, основным из которых является микробиологическое.

• Зачастую для постановки диагноза бывает достаточно тщательно собранного анамнеза заболевания и осмотра ротоглотки. Всякая задержка при установлении диагноза и назначения адекватного лечения увеличивает вероятность неблагоприятного исхода заболевания.
• Выделение культуры возбудителей с последующим определением у выделенных возбудителей токсикогенности является основным и единственным методом микробиологической диагностики дифтерии. Предварительный результат получается через 24 часа, через 48 часов получается результат исследования дифтерийных палочек на токсикогенность, через 72 часа определяется биовар возбудителя.
• Микроскопическое исследование при дифтерии нерационально.
• Серологическая диагностика основана на определении роста титра антибактериальных антител. Результаты получаются на 2-й неделе заболевания.
• При диагностике дифтерии применяется генетический метод (ПЦР), позволяющий определить ДНК бактерий.
• Реакция латекс агглютинации относится к экспресс-методам. Результат получается уже через два часа.
• Иммунофлуоресцентный анализ результативен. Однако его проведение должно осуществляться только высококвалифицированным персоналом.

Рис. 1. Пленка грязно-белого цвета и выраженный отек подкожной жировой клетчатки шеи — «бычья шея» — классические признаки дифтерии.

Микробиологическое исследование является основным методом лабораторной диагностики дифтерии.

Бактериологическое исследование проводится в следующих случаях:

• с целью диагностики дифтерии зева, носа и глотки у взрослых и детей,
• с целью выявления возможного бактерионосительства у лиц, которые поступают в детские дошкольные учреждения и специализированные учреждения для взрослых,
• с целью выявления заболевания среди контактирующих лиц.

Материал для исследования (мазок на дифтерию) собирается натощак или спустя 2 часа после еды. Для исследования используются дифтерийные пленки или кусочки тканей, расположенных по соседству, отделяемое из мест поражения и носоглоточная слизь.

Забор материала (мазок на дифтерию) осуществляется ватным тампоном. Корень языка прижимается шпателем. Ватным тампоном необходимо коснуться слизистой оболочки миндалин на границе пленки, дужек и задней стенки глотки. Далее тампон опускается в стерильную пробирку, не касаясь ее стенок.

В течение первых 3-х часов должен быть отправлен в лабораторию. При невозможности произвести посев в ближайшие 3 — 4 часа, забор материала осуществляется стерильным ватным тампоном, который смачивают в 5% растворе глицерина в изотоническом растворе хлорида натрия или 2% растворе теллурита калия.

Забор материала (мазок на дифтерию) осуществляется двумя ватными тампонами, один из которых используется для посева, другой — для микроскопии.

При подозрении на дифтерию необходимо оповестить сотрудников лаборатории, чтобы собранный материал был посеян на соответствующие среды (кровяной агар, среда Леффлера или теллуритовая среда).

Посев осуществляется на питательные среды (кровяной агар, среда Леффлера или теллуритовая среда). Теллурит в большой концентрации подавляет рост сопутствующей микрофлоры.

Рис. 2. На фото рост колоний палочки дифтерии на разных средах — кровяном агаре и теллуритовой среде.

При росте бактерий на кровяном агаре колонии приобретают беловатую окраску, они непрозрачные, округлые, выпуклой формы, 1 — 2 мм в диаметре, чаще маслянистой консистенции.

При росте бактерий на теллуритовых средах колонии серого цвета, выпуклые, края ровные. Через двое суток колонии приобретают темно-серый или черный цвет, они имеют металлический блеск, ровные или фестончатые края, поверхность гладкая или радиально исчерчена.

Идентификации разновидностей штаммов возбудителей дифтерии основана на способности бактерий расщеплять гликоген и крахмал. Для этих целей используется методика «длинного» ряда углеводов.

Принимая во внимание ферментативные признаки возбудителей и структуру колоний при росте на теллуритовых средах, выделяют 4 биотипа коринебактерий дифтерии: Corynebacterium diphtheriae gravis, Corynebacterium diphtheriae mittis, Corynebacterium diphtheriae intermedius и Corynebacterium diphtheriae belfanti.

Рис. 3. На фото слева колонии коринебактерий дифтерии гравис (Corynebacterium diphtheriae gravis). Они имеют большой размер, выпуклые по центру, радиально исчерчены, с неровными краями. На фото справа Corynebacterium diphtheriae mittis. Они небольшого размера, темной окраски, гладкие и блестящие, с ровными краями.

Токсикогенность возбудителей дифтерии определяется после выделения культуры бактерий. Для этих целей используется методика диффузной преципитации в геле и методика определения токсикогенности бактерий в живом организме (на морских свинках).

Лабораторная диагностика с применением микроскопии является второстепенным по значимости. Ввиду того, что возбудители дифтерии плохо впитывают красители, окраска по Граму считается не специфичной, однако она позволяет косвенно определить непатогенные коринебактерии, которые в мазке располагаются параллельно друг другу.

При окраске по Нейссеру выявляются характерные для дифтерийных палочек зерна Бабеша-Эрнста, которые располагаются на полюсах клеток, придавая им вид булавы.

В мазках патогенные дифтерийные палочки располагаются под углом друг к другу.

Для выявления зерен Бабеша-Эрнста применяется методика люминесцентной микроскопии. При окрашивании мазков корифосфином в микроскопе можно увидеть желто-зеленые тела бактериальных клеток с оранжево красными зернами волютина.

Рис. 4. Дифтерийные палочки под микроскопом. Окраска по Граму.

Рис. 5. На фото слева ложнодифтерийные палочки Гоффмана. Они часто обнаруживаются в носоглотке. Они толстые, короткие, располагаются в мазках параллельно друг другу. На фото справа патогенные бактерии. В мазке располагаются под углом друг к другу.

Серологические исследования позволяют обнаружить антибактериальные и антитоксические антитела. Значимым является обнаружение антибактериальных антител, так как содержание антитоксина изменяется в связи с применением с первых дней антитоксической сыворотки. Наиболее распространенными в настоящее время является реакция пассивной гемагглютинации (РНГА и РПГА).

Иммуноглобулины G и M говорят об остроте инфекционного процесса.

Иммуноглобулины G говорят о недавно перенесенном заболевании.

Иммуноглобулины М говорят об остропротекающей дифтерии.

При дифтерии титр антител со временем повышается. Понижение концентрации антител свидетельствует о выздоровлении больного.

Противодифтерийные антитела образуются после вакцинации. В крови привитого человека они циркулируют многие годы.

Благодаря применению методики флуоресцирующих антител стало возможным проведение качественного и количественного анализа внутриклеточных и поверхностных антигенов в образцах клеточных суспензий. Антигены визуализируются с помощью специфических антител с флуоресцентными маркерами. Использование данной методики доверяется только высококвалифицированному персоналу.

Методика ПЦР применяется для раннего выявления дифтерийных палочек, подтверждения диагноза и в случаях атипичной ангины. Обнаружение гена токсикогенности методом ПЦР является наиболее быстрым и надежным методом лабораторной диагностики дифтерии.

Рис. 6. ПЦР является наиболее быстрым и надежным методом лабораторной диагностики дифтерии.

• При токсическом поражении сердечной мышцы отмечаются изменения на электрокардиограмме, фонокардиограмме и УЗИ сердца. Исследуется активность целого ряда ферментов (лактатдегодрогиназа, креатинфосфокиназа, аспартатаминотрансфераза).
• Поражение почек при дифтерии проявляется в виде токсического нефроза. При подозрении на это осложнение производится общий анализ крови и мочи, биохимические исследования (определение креатинина, мочевины, остаточного азота), производится УЗИ почек.
• Токсическое поражение печени протекает с явлениями гипогликемии (снижение уровня глюкозы в крови) и глюкозурии (наличие глюкозы в моче).
• Развитие анемии связано с гемолизом эритроцитов.

к содержанию ↑

Наличие или отсутствие противодифтерийного иммунитета устанавливается при помощи внутрикожной пробы Шика, которая проводится с дифтерийным токсином.

В случае отрицательной реакции говорят о невосприимчивости к дифтерии. Реакцию Шика сегодня используют только по эпидпоказаниям. На ее проведение уходит несколько дней. Однако несмотря на это она помогает определить степень восприимчивости к дифтерии лиц, находившихся в контакте с больным и уточнить их иммунный статус.

Рис. 7. Реакция Шика проводится с дифтерийным токсином. Стандартный дифтерийный токсин в дозе 0,2 мл вводится внутрикожно в среднюю треть предплечья туберкулиновым шприцом.

источник

Дифтерию вызывают токсигенные штаммы Corynebacterium diphtheriae или палочки Леффлера, не токсигенные штаммы заболевания не вызывают. Дифтерийный токсин по своим свойствам относится к сильнодействующим ядам, уступая лишь ботулитическому и столбнячному. Под воздействием токсина нарушается синтез белков во внутренних органах больного, что приводит к структурным и функциональным нарушениям, демиелинизация нервных волокон – к параличам и парезам. Способность к токсинообразованию проявляют лишь лизогенные штаммы C.diphtheriae, инфицированные бактериофагом (р-фаг), несущим ген tox, кодирующий структуру токсина дифтерии. Передача бактериофагом гена tox нетоксигенным штаммам C.diphtheriae, обитающим в носоглотке и накопление их в популяции, может сопровождаться развитием вспышки дифтерии.

Наиболее таксономически близкими к виду C.diphtheriae являются C.ulcerans и C.рseudotuberculosis, природные патогены крупного и мелкого рогатого скота, лошадей. Кроме того, на слизистой ротоглотки и носа часто встречается палочка Гофмана (C.pseudodiphtheriticum), не обладающая патогенностью и токсигенностью для человека. Поэтому основной задачей лабораторной диагностики дифтерии является выявление токсигенных штаммов дифтерии и дифференцировка возбудителя дифтерии от других коринебактерий, нормальных обитателей носо- и ротоглотки. Все микроорганизмы рода Corynebacterium – грамположительные полиморфные палочки, не образующие спор, хорошо растущие в аэробных условиях при 37°С. При окраске метиленовым синим в клетках C.diphtheriae отмечается внутриклеточная исчерченность, что объясняется наличием зерен волютина. Окраска по Граму не используется из-за вариабельности окрашивания клеток. По форме колоний и некоторым биохимическим свойствам C.diphtheriae подразделяются на культурально-биохимические варианты – gravis, mitis, intermedius, однако все они обладают способностью вырабатывать дифтерийный токсин. Тяжесть течения заболевания не связана с биохимическим вариантом C.diphtheriae. Токсигенные штаммы дифтерии более чувствительны к антибиотикам, чем не токсигенные.

• Профилактическое обследование – выявление источников инфекции, группы населения с повышенным риском заболевания; наблюдение за циркуляцией токсигенных штаммов в популяции; лица, поступающие в детские дома, школы интернаты, специализированные учреждения для детей и взрослых;
• обследования по эпидемическим показаниям – лица с подтвержденным контактом с больным дифтерией или при эпидемии дифтерии в данной местности;
• диагностические исследования – при подозрении на заболевание дифтерией (тонзиллит, назофарингит или ларингит который протекает с налетами псевдомембранозного характера).

Дифференциальная диагностика. Заболевания, сопровождающиеся тонзиллитом (инфекционный мононуклеоз, ангины стрептококковой, стафилококковой этиологии и др.).

При культуральных исследованиях возбудитель C.diphtheriae дифференцируется от других коринебактерий, в первую очередь C.pseudodiphtheriticum, C.ulcerans, C.pseudotuberculosis.

Материал для исследований

• Мазок из ротоглотки и носа, при подозрении на дифтерию редких локализаций (глаз, рана, ухо и т.д.) – материал с пораженных участков, а также с миндалин и носа – культуральные исследования, обнаружение специфического фрагмента гена tox;
• сыворотка крови – выявление АТ.

Этиологическая лабораторная диагностика включает посев клинического материала с изучением токсигенных свойств на среде для определения токсигенности и биохимической идентификацией возбудителя, обнаружение АГ (дифтерийного токсина), выявление специфических АТ к дифтерийному токсину, обнаружение специфического фрагмента гена tox.

Сравнительная характеристика методов лабораторной диагностики и особенности интерпретации их результатов. Микроскопические исследования выполняют только для идентификации выделенной культуры. Микроскопия биологического материала не проводится.

Для посева используют материал соответствующих локализаций. Изучение токсигенных свойств на среде для определения токсигенности выполняют при использовании метода встречной иммунодиффузии токсина и антитоксических АТ в плотной питательной среде. При отсутствии линий преципитации на среде для определения токсигенности через 48 ч инкубации культура признается не токсигенной. Для биохимической идентификации используется тест с цистиназой (среда Пизу), определение уреазной и сахаролитической (сахароза, глюкоза, крахмал) активности.

• при обнаружении специфических линий преципитации на среде для определения токсигенности через 24–48 ч, положительной пробе на цистиназу, отрицательной пробе на уреазу, характерных культуральных и биохимических свойств дается заключение о выделении токсигенного штамма C.diphtheriae принадлежащего к культурально-биохимическому варианту gravis, mitis;
• при отсутствии специфических линий преципитации на среде для определения токсигенности через 48 ч, положительной пробе на цистиназу, отрицательной пробе на уреазу, характерных культуральных и биохимических свойств дается заключение о выделении не токсигенного штамма C.diphtheriae принадлежащего к соответствующему культурально-биохимическому варианту;
• при наличии линий преципитации на среде для определения токсигенности, идентичных линиям контрольного штамма дифтерии, положительных проб на цистиназу, уреазу, ферментации глюкозы и крахмала, отсутствие ферментации сахарозы, отсутствие редукции нитратов в нитриты, культуру относят к виду C.ulcerans, токсигенный вариант;
• при выделении дифтероидов ответ выдается отрицательный.

При посеве возбудитель C.diphtheriae дифференцируется от других коринебактерий, в первую очередь C.pseudodiphtheriticum, C.ulcerans, C.pseudotuberculosis. Для выявления дифтерийного токсина используют методы РНГА или ИФА. Это исследование не является обязательным в практических бактериологических лабораториях, однако может использоваться как дополнительное для выдачи предварительного ответа. Метод также позволяет определить относительное (условное) количественное содержание токсина в исследуемой пробе.

Для выявления специфических АТ используют методы РПГА и РНГА. Метод РПГА используется для изучения напряженности противодифтерийного иммунитета. Условно-защитным титром АТ принят титр 1:20.

У больных определение титра АТ к АГ дифтерийной палочки в сыворотке крови методом РНГА проводится в двух пробах крови, собранных в начале заболевания и через 7–10 дней. Нарастание титра АТ в 3–4 раза во второй сыворотке относительно первой свидетельствует о перенесенной инфекции. Исследование используется преимущественно для ретроспективной диагностики дифтерии.

Обнаружение гена токсигенности (tox) методом ПЦР – наиболее быстрый и надежный метод лабораторной диагностики, однако он не дает информацию о способности микроорганизма к экспрессии дифтерийного токсина. Описаны случаи нетоксигенных штаммов дифтерии, несущих в себе

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, пользовательских данных (сведения о местоположении; тип и версия ОС; тип и версия Браузера; тип устройства и разрешение его экрана; источник откуда пришел на сайт пользователь; с какого сайта или по какой рекламе; язык ОС и Браузера; какие страницы открывает и на какие кнопки нажимает пользователь; ip-адрес) в целях функционирования сайта, проведения ретаргетинга и проведения статистических исследований и обзоров. Если вы не хотите, чтобы ваши данные обрабатывались, покиньте сайт.

Copyright ФБУН Центральный НИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора, 1998 — 2019

Центральный офис: 111123, Россия, Москва, ул. Новогиреевская, д.3а, метро «Шоссе Энтузиастов», «Перово»
+7 (495) 788-000-1, info@cmd-online.ru

! Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, пользовательских данных (сведения о местоположении; тип и версия ОС; тип и версия Браузера; тип устройства и разрешение его экрана; источник откуда пришел на сайт пользователь; с какого сайта или по какой рекламе; язык ОС и Браузера; какие страницы открывает и на какие кнопки нажимает пользователь; ip-адрес) в целях функционирования сайта, проведения ретаргетинга и проведения статистических исследований и обзоров. Если вы не хотите, чтобы ваши данные обрабатывались, покиньте сайт.

источник

Анализ на дифтерию – это лабораторное исследование, преследующее цель выявления в организме возбудителя дифтерийной инфекции.

Сдать анализ на дифтерию на Кропоткинской и Смоленской в Москве вы можете в клинике «ПЛАТНЫЙ КВД».

Возбудителем болезни является грамоложительная анаэробная коринебактерия (бацилла Леффлера).

Попадая в организм, она вызывает острое воспаление ротоглотки и дыхательных путей.

Оно сопровождается симптомами ангины, тонзиллита, околоминдального абсцесса.

Анализ на дифтерию проводится путем бактериологического посева мазка, взятого из зева или носа.

Культуральное исследование выполняется с целью выявления роста микробного патогена или его отсутствия.

При наличии роста ставится положительный диагноз, при отсутствии – отрицательный.

Рост колоний коринебактерий на питательной среде при отсутствии клинических проявлений инфекции означает ее бессимптомное носительство.

Кроме отсутствия инфекции, рост возбудителя дифтерии может не наблюдаться после , пройденной предварительно антибактериальной терапии.

Антибактериальные препараты искажают достоверность результатов исследования.

Следует учесть, что чувствительность возбудителя к антибиотикам в данном случае не определяется.

В данном случае подбор этиотропных препаратов осуществляется стандартным методом.

После обнаружения растущих штаммов коринебактерий определяют их токсигенные свойства.

Инкубационный период при дифтерии короткий, его длительность приближается к 1-4 дням.

У невакцинированных людей после инфицирования развивается:

• интенсивная интоксикация организма;
• острое фибринозное воспаление слизистой горла;
• миндалин;
• дыхательных путей.

Диагностика инфекции может также проводиться путем анализа на антитела к дифтерии .

Это исследование выполняется с помощью серологической реакции непрямой гемагглютинации (РНГА).

Для этого используется венозная кровь.

В сыворотке крови при положительном анализе находят специфические иммуноглобулиновые белки.

Они вырабатываются иммунной системой организма в ответ на проникновение инфекции.

Выявление в крови антител к дифтерии говорит о перенесенном ранее заболевании или выполненной прежде вакцинации.

При отрицательных результатах анализа делают вывод либо об отсутствии контакта организма с коринебактерий.

Также это может означать слабый иммунный ответ, при котором выработки антител не происходит.

Анализ на дифтерию с помощью мазка назначают с целью оценки эффективности проведенной терапии и контроля излеченности пациента.

Также его делают перед госпитализацией больных на стационарное лечение.

Исследование назначают в тех случаях, когда человек контактировал с больными дифтерией.

Анализ необходим для дифференцирования дифтерийной инфекции от других заболеваний, протекающих со схожими симптомами:

• бронхиальной астмой;
• ангинозным поражением горла;
• гнойно-фибринозным фарингитом;
• абсцессами миндалин.

За 2 часа до забора материала из зева воздерживаются от приема пищи, желательно взятие образца утром натощак.

Забор мазка осуществляют до начала приема этиотропных препаратов и не раньше, чем спустя 3 дня после окончания курса медикаментозной терапии.

Исследование можно пройти в нашем медицинском центре.

Срок выполнения анализа на дифтерию зависит от метода исследования.

При бактериологическом посеве он составляет до 7 дней, при серодиагностике – 1-2 рабочих дня.

источник

Изобретение относится к области медицины, точнее клинической иммунологии бактериальной инфекции, и предназначено для ранней диагностики дифтерии у детей и иммунологического мониторинга в процессе лечения. Способ состоит в том, что дифтерийный токсин определяют в составе циркулирующих иммунных комплексов, затем образцы, диссоциированные нагреванием, наносят на тест-систему с моноклональными антителами к СООН-концевому участку молекулы токсина и при уровне токсина 0,45 Lf/мл и выше диагносцируется дифтерия. Способ обладает высокой специфичностью и чувствительностью. 3 табл., 1 ил.

Данное изобретение относится к области медицины, точнее к клинической иммунологии бактериальных инфекций и предназначено для ранней диагностики дифтерии у детей и иммунологического мониторинга в процессе лечения и может быть использовано в клинической практике.

Значительное ухудшение в 90-е годы эпидемической обстановки заболеваемости дифтерией, увеличение частоты тяжелых токсических форм, приводящих нередко к неблагоприятным исходам, а также регистрация случаев атипичного течения локализованных форм дифтерии среди привитых детей, диктует необходимость совершенствования методов лабораторной диагностики этой инфекции, поиска более информативных методических подходов, создания чувствительных и специфических диагностических препаратов.

Важное значение в этом аспекте приобретает определение дифтерийного токсина /ДТ/, как основного поражающего фактора при дифтерии, в биосубстратах от больных. Известен способ выявления ДТ методом иммуноферментного анализа /ИФА/, для постановки которого применяется набор ингредиентов концерна «Иммуноген», НПО «Биомед», иммуноферментная тест-система для выявления антигенов ДТ /Майкоп/. /Цыганова И.В., Паранук З.Ш., Хшитова Н.С. и др., Клинич. лаб. диагностика N 1 1995, с. 31 — 33/. Учет результатов иммуноферментной реакции проводится визуально. Авторами предложенного метода ДТ определялся в бульонных культурах, получаемых после посева материала из зева и носа больных на среду /кровяно-теллуритовый агар/, а также на содержание ДТ исследовались сыворотки крови больных дифтерией. В результате, из 773 подозрительных на дифтерию бульонных культур только 70 дали положительные результаты ИФА, а из 25 сывороток крови — 5. Это позволяет судить о низкой чувствительности метода и ограниченности его использования для диагностических целей. К тому же, метод требует специального оборудования и больших затрат времени для проведения подготовительных мероприятий перед постановкой ИФА /посев на среду материалов из зева и носа — 24 — 28 часов, отсев на бульон Мартена и выращивание в течение 18 — 20 часов/. Результат лабораторного обследования больных этим методом можно получить только на 3 день после забора материала, что значительно замедляет процесс диагностики дифтерии и не позволяет использовать названный выше метод для экспресс-диагностики этой инфекции.

Для ускорения процедуры лабораторного подтверждения дифтерии определение ДТ проводят в сыворотках крови больных методом ИФА с использованием тест-системы производства НИИ вакцин и сывороток г. Пермь на основе F(ab)₂-фрагментов чистых противодифтерийных антител /Шабалина С.В., Райхер И.И., Райхер Л.И. и др., ЖМЭИ N 8 1987, с. 82 — 85; Никитюк Н.М., Смурова Л. Ю., Шабухова Т.С. и др., ЖМЭИ N 9 1990, с. 67 — 69/. Положительным контролем в иммуноферментной реакции служит ряд разведений очищенного дифтерийного анатоксина. Учет результатов происходит визуально по появлению в лунках коричневого окрашивания различной интенсивности. Исследование сывороток крови 52 больных с различными клиническими формами дифтерии при помощью вышеназванного метода показало, что частота обнаружения ДТ составила 100% только при субтоксических и токсических формах. При локализованных формах ДТ обнаруживается только в 41,3% случаев. В контрольной группе здоровых детей ДТ не выявлялся ни в одном случае, что подчеркивает специфичность используемого метода с одной стороны, но и его недостаточную чувствительность — с другой. Своевременная дифференциальная диагностика локализованных форм дифтерии, как наиболее часто встречающихся среди привитых детей, заболевших дифтерией, основанная только на особенностях клинических проявлений дифтерийной интоксикации, весьма затруднена и требует быстрого лабораторного подтверждения. Это не позволяет достигнуть использование вышеуказанного диагностического теста. В настоящее время, также, остается дискутабельным вопрос циркуляции свободного ДТ в кровяном русле, что заставляет усомниться в информативности данных, получаемых при исследовании сывороток крови на содержание в них свободного ДТ. Поэтому отсутствие или наличие ДТ в сыворотке крови, отмечаемое данным методом, еще не позволяет сделать окончательный вывод о состоянии токсинемии организма больного. К тому же, авторы вышеназванного иммуноферментного набора не исключают возможность наличия ложноположительных реакций за счет присутствия противовидовых иммуноглобулинов в сыворотке крови. Кроме того, во фракции ИГG даже у гипериммунного организма антител определенной специфичности содержится не более 20% /Райхер И.И., 1973/. Таким образом этот способ не отвечает современным представлениям о патогенезе дифтерии и не позволяет провести дифференциальную диагностику локализованных форм дифтерии в 100% случаев, что может отразиться на своевременности проводимых терапевтических мероприятий по специфической детоксикации организма.

Устранить недостатки, характерные для указанных выше диагностических тестов, позволит предлагаемый авторами настоящего изобретения метод количественного определения ДТ в составе циркулирующих иммунных комплексов с помощью иммуноферментного анализа. Проблеме излучения циркулирующих иммунных комплексов /ЦИК/ в современной клинической иммунологии уделяется большое внимание. Определение составляющих компонентов ЦИК — антигена или антитела — является весьма перспективным направлением в дифференциальной диагностике инфекционных заболеваний. Синтез специфических антител против антигенов возбудителя или факторов его патогенности — токсинов, формирование иммунных комплексов является обязательным компонентом нормального иммунного ответа, что приводит к снижению циркулирующих антигенов и может существенно искажать данные традиционных методов исследования, в частности и вышеназванных методов.

Авторами впервые сконструирован диагносический тест, основанный на известных методических приемах, позволяющий определить количественный уровень ДТ в составе ЦИК из сыворотки крови детей, больных разными формами дифтерии ротоглотки, что значительно улучшит не только диагностику дифтерии, но и иммунологический мониторинг в процессе лечения.

В основу предлагаемого способа экспресс-диагностики дифтерии положен следующий принцип обнаружения составляющих компонентов специфических ЦИК: 1. Осаждение ЦИК из сывороток крови больных с помощью ПЭГ 6000; 2. Разрушение /диссоциация/ иммунных комплексов нагреванием на водной бане; 3. Определение антигенов возбудителя с использованием высокоспецифичных диагностикумов. Для работы авторами изобретения использовалась тест-система «Дифтерия-монозим», производства НИИ вакцин и сывороток им. И.И.Мечникова /Москва/, предназначенная для иммуноферментного определения ДТ при помощи моноклональных антител с COOH-концевому участку молекулы токсина.

Разработанный авторами способ диагностики разных форм дифтерии осуществляется следующим образом: из свежей сыворотки крови больного проводят осаждение ЦИК по Digeon с использованием 3,5% ПЭГ 6000 /»Serva»/. Для этого к 0,1 мл исследуемой сыворотки добавляют 4,9 мл охлажденного 3,5% раствора ПЭГ, приготовленного на боратном буфере pH 8,5 — 8,7. Смесь инкубируют при t 4 o C в течение 16 — 18 часов, затем центрифугируют при 5000 об/мин в течение 30 мин. Надосадочную жидкость сливают, а ПЭГ-преципитат растворяют в 0,3 мл Na-фосфатного буфера pH 7,4 0,1 в течение 1 часа при комнатной температуре. Диссоциацию комплектов антиген-антитело /АГ-АТ/ проводятся нагреванием образцов на водяной бане при t + 98 o C в течение 10 минут. Охлажденные опытные образцы вносят в лунки 96-луночного планшета, подготовленного для постановки иммуноферментной реакции согласно инструкции по применению набора «Дифтерия-монозим» /предварительно наносятся на планшет моноклональные антитела к COOH-концевому участку молекулы токсина/. Продолжительным контролем при постановке иммуноферментной реакции служит ряд серийных двукратных разведений очищенного дифтерийного анатоксина с активностью 300 Lf/мл и исходным разведением 1: 4000. Отрицательным контролем реакции служит среда культивирования нетоксигенного штамма дифтерийного микроба. После инкубации нанесенных образцов при t 37 o C в течение 1 часа и трехкратной отмывки планшета 0,9% раствором хлорида натрия с ТВИН-20 антиген /ДТ/ выявляют с помощью очищенных лошадиных антитоксических антител, меченых пероксидазой хрена. Субстратом в реакции служит 5-амино-салициловая кислота с 0,05% раствором H₂O₂. Реакцию оценивают после 30 минут инкубации при комнатной температуре путем измерения величины оптической плотности при длине волны 450 нм на фотометре планшетного типа «Яхонт» /НПО «Проба», С-Петербург/. Используемая тест-система отвечает требованиям чувствительности, если положительная реакция /коричневое окрашивание/, оцененная при помощи фотометра, выявляется в лунке, содержащей анатоксин в разведении не ниже 1: 128000 /концентрация анатоксина 0,002 Lf/мл. Величину оптической плотности, не достигающую порога чувствительности тест-системы или равную ей /меньше 0,002 Lf/мл и 0,002 Lf/мл соответственно/, расценивают как негативный результат реакции. Концентрацию ДТ в опытных образцах устанавливают по калибровочной кривой /в единицах активности Lf/мл/ с учетом разведения сыворотки крови и ПЭГ-преципитата. Положительный результат реакции является основанием для подтверждения или установления диагноза «Дифтерия».

При постановке опыта проводят контроль специфичности сорбции конъюгата и контроль субстрата. В специальном опыте авторы проводили параллельное тестирование ДТ в необработанных нагреванием образцах. Результаты представлены в таблице 1. Как видно из таблицы, в шести опытах из восьми ДТ в составе ЦИК без диссоциации последних не выявлялся, в двух других опытах ДТ выявляется в меньших количествах, чем в образцах, обработанных нагреванием.

Таким образом, процесс определения ДТ в составе ЦИК предлагаемым методом с момента забора крови до последнего этапа ИФА занимает в целом 24 часа.

Предлагаемым методом авторами было обследовано 273 образца сыворотки крови детей, больных различными формами дифтерии ротоглотки: локализованной — 20, распространенной — 7, субтоксической и токсической — 19 человек, группу носителей токсигенных коринебактерий дифтерии /ТКД/ составляли 24 ребенка. В контрольную группу вошли здоровые дети /4 чел./, больные лакунарной ангиной /4 чел. / и вирусным энцефалитом /4 чел./. Уровень ДТ определяли в разных этапах инфекционного процесса: до лечения антитоксической противодифтерийной сывороткой /АПДС/ — 1 — 6 день болезни — и после лечения с недельными интервалами.

При исследовании сывороток крови детей контрольной группы ни в одном случае не был выявлен ДТ, что подтверждает специфичность используемого метода. Результаты исследований сывороток крови детей с разными формами дифтерии представлены в таблице 2. Как видно из таблицы 2, уровень ДТ при разных клинических формах дифтерии варьирует в довольно широком диапазоне концентраций: от 0,45 до 22,3 Lf/мл. В острую фазу инфекционного процесса /1 — 6 сутки болезни/ у 52% детей с локализованными формами дифтерии концентрация ДТ составляет в среднем 1,07 0,2 Lf/мл, у 60% детей с распространенными формами — 0,65 0,15 Lf/мл, у 59% детей с субтоксическими и токсическими формами — 1,25 0,15 Lf/мл. У длительных носителей ТКД ДТ тестировался в концентрации 1,15 0,2 Lf/мл. Динамика содержания ДТ после лечения АПДС и на всех дальнейших этапах инфекционного процесса при трех клинических формах дифтерии представлена на чертеже. Сроки обнаружения ДТ в ЦИК и его уровень коррелируют с длительностью сохранения симптомов интоксикации и развитием осложнений дифтерийного процесса.

Таким образом, применение предлагаемого метода количественного определения ДТ в составе ЦИК в клинической практике позволяет, с одной стороны, провести экспресс-диагностику дифтерии в течение 24 часов, а с другой стороны, прогнозировать тяжесть течения дифтерии и оценивать эффективность проводимых терапевтических мероприятий. Преимущество этого метода перед упомянутыми выше аналогами состоит в том, что за счет выявления ДТ в составе специфических ЦИК увеличивается чувствительность способа диагностики дифтерии как такового и, следовательно, значительно возрастает достоверность получаемых результатов при использовании сывороток крови больных на содержание ДТ.

Способ диагностики дифтерии у детей путем выявления дифтерийного токсина, отличающийся тем, что дифтерийный токсин определяют в составе циркулирующих иммунных комплексов, проводят их диссоциацию нагреванием и полученные образцы затем наносят на тест-систему с моноклональными антителами к СООН-концевому участку молекулы токсина и при уровне токсина 0,45 Lf /мл и выше диагностируется дифтерия.

источник

Анализ посев из зева и носа на дифтерию

Дифтерия относится к достаточно серьезным инфекционным заболеваниям, вызывающим осложнения на жизненно важные, в случае несвоевременного лечения. Как правило, чаще всего данное заболевание встречается у детей. Но случается и так, что дифтерией болеют и взрослые.

Инфекция имеет заразную природу и очень важно её вовремя диагностировать. Обычно, когда доктор подозревает это заболевание, он будет настаивать на изоляции больного, назначит эффективное лечение и выпишет направление на анализ — мазок из зева и носа.

Посев из зева и носа на дифтерию осуществляется путем снятия образца и определения его на различные питательные среды. Таким образом, на протяжении недели микробы, снятые с дыхательных путей пациента растут и размножатся. Далее колонны микробов изучаются в лаборатории под микроскопом, а лаборант исследует их характеристики и определяет, есть ли среди микробов возбудитель заболевания (палочка Леффлера) или нет. В случае позитивного результата, дополнительно лаборантом определяется чувствительность микроорганизмов к антибиотикам.

В момент развития дифтерии у пациента стремительно развивается интоксикация, возникают катаральные симптомы, характеризующиеся сильным кашлем, слезотечением, а так же осиплостью в голосе и т. д. Горло больного отекает, что значительно препятствует дыханию. Имеется риск удушья. Поэтому очень важно начать эффективное лечение как можно раньше, однако без результатов анализа на дифтерию, вряд ли кто его выпишет. Поэтому, если имеется подозрение на дифтерию, целесообразным будет купить результаты анализа посева на дифтерию.

В процедуре сбора посева нет ничего страшного: специальным инструментом с ватным наконечником медсестра берет мазки из носа и ротовой полости. В носовой проход инструмент вводится неглубоко — не далее 2 см, поэтому процедура полностью безопасна, ровно как и взятие мазка из ротовой полости.

После окончания процедуры, взятый образец помещается в специальную среду и транспортируется в лабораторию. На этом этапе действия пациента окончены — ему остается только дождаться итогов.

Как показывает практика, посев на дифтерию весьма надежен, за исключением редких случаев ложных результатов. Как правило, такие инциденты случаются при нарушении правил транспортировки, либо в момент осуществления лечения антибиотиками — когда микроорганизмы на стадии гибели.

Как уже говорилось ранее, ожидание результатов занимает как минимум неделю. Поэтому, Вы можете купить результаты анализа посева на дифтерию у нас, если результаты нужны Вам срочно, либо имеют формальное значение.

В случае формальной необходимости в получении такой корочки, советуем отказаться от бессмысленной траты времени и доверить производство профессионалам. Наша компания хорошо известна, ведь длительное время занимается изготовлением врачебной документации. Предлагаем клиентам ряд серьезных преимуществ.

1. Опыт работы. За время работы выполняли заказы любой сложности, одинаково качественно справлялись, что отразилось в положительных клиентских отзывах.
2. Индивидуальный подход. С каждым оговариваем условия сотрудничества, не предлагаем исключительно типовые варианты.
3. Конфиденциальность обращения. Сведения уничтожаются сразу после подтверждения и оплаты.
4. Удобная форма заказа. Надо уделить около пяти минут, чтобы совершить сделку. Зайти на сайт, заполнить онлайн форму, ввести личные данные и сведения о выбранном медицинском учреждении. Если не знаете чего-то, не понимаете, не можете определиться — не отчаивайтесь, пропустите. Сотрудник вам перезвонит и уточнит все интересующие характеристики.
5. Профессионализм коллектива. Привлекаем к работе компетентных работников, консультируемся со специалистами.
6. Используем современное оборудование, что позволяет гарантировать максимальную скорость изготовления справок.

Можно купить результаты анализа посева на дифтерию и получить их день в день. Выделяемся на фоне конкурентов оптимальным соотношением скорости выполнения заказов и качества документации. Способы отправки различны, могут изменяться. Основной метод на почтовое отделение, это удобно. Еще лучше, когда привозит курьер на указанный адрес, вам не придется никуда идти. Возникли вопросы – звоните нам. Менеджеры в любой момент примут звонок, проконсультируют, помогут оформить заказ. Ждем ваших звонков!

источник

Сайт предоставляет справочную информацию исключительно для ознакомления. Диагностику и лечение заболеваний нужно проходить под наблюдением специалиста. У всех препаратов имеются противопоказания. Консультация специалиста обязательна!

Заподозрить дифтерию можно на основании тщательного опроса пациента, а также основываясь на характерных клинических проявлениях заболевания. На вероятность развития данной патологии может указывать тот факт, что больной не был своевременно вакцинирован против дифтерии либо момент предыдущей вакцинации был давно. В прошлом способствовать постановке диагноза могли эпидемиологические данные (одновременное развитие характерных признаков заболевания у группы лиц в определенном коллективе), однако сегодня дифтерия наблюдается крайне редко и лишь у отдельных лиц. Вот почему при подозрении на дифтерию крайне важно своевременно госпитализировать пациента в инфекционную больницу, назначить необходимые исследования, подтвердить диагноз и начать лечение.

В диагностике дифтерии применяется:

• мазок на дифтерию;
• посев на дифтерию;
• анализ на антитела;
• общий анализ крови.

Мазок на дифтерию берется с целью получения образцов коринебактерий, вызвавших заболевание. Назначать данное исследование следует всем пациентам, у которых выявлены главные признаки заболевания – плотные фибриновые пленки и отек тканей в области глотки или в других участках тела. Сама процедура довольно проста. Врач стерильным тампоном несколько раз проводит по пораженной поверхности, после чего тампон помещается в стерильный футляр и направляется в лабораторию.

В лаборатории производится посев материала на специальные питательные среды, которые содержат все необходимые вещества для активного роста и размножения коринебактерий. Чашки с питательными средами и образцами взятого у пациента материала помещаются в специальный термостат, где в течение суток поддерживается оптимальные для роста возбудителя температура, давление и влажность.

Через 24 часа материал извлекают из термостата и осматривают. Если в образцах имелись коринебактерии, рост их колоний будет заметен невооруженным глазом. В данном случае проводят бактериоскопическое исследование. Часть микроорганизмов из растущих колоний переносят на предметное стекло, окрашивают специальными красителями и исследуют под микроскопом. При микроскопии возбудитель дифтерии имеет вид длинных палочек с характерным утолщением на одном конце. Коринебактерии неподвижны и не образуют спор (спора – это особая форма существования некоторых бактерий, в которой они могут выживать в течение длительного времени даже в неблагоприятных условиях).

Если при микроскопии обнаружены коринебактерии, лаборатория дает предварительный положительный ответ о наличии возбудителя дифтерии у данного пациента. После этого провидится целый ряд посевов на различных питательных средах, что позволяет определить вид возбудителя, его токсигенность (то есть способность вырабатывать токсин), силу токсина и многие другие параметры. Данные исследования требуют определенного времени, ввиду чего окончательный ответ лаборатория выдает только через 2 – 4 дня.

Антитела – это определенные иммунные комплексы, которые образуются клетками иммунной системы для борьбы с проникнувшим в организм чужеродным агентом. Особенность данных антител заключается в том, что они активны только в отношении того возбудителя, против которого они были выработаны. То есть антитела против коринебактерий дифтерии будут поражать только данный микроорганизм, никак не влияя на другие клетки или другие патогенные бактерии, вирусы или грибки. Данная особенность используется в лабораторной диагностике заболевания. Если в крови пациента обнаружены антитела против коринебактерий, концентрация которых увеличивается с течением времени, диагноз можно подтвердить с большой долей вероятности. В то же время, снижение концентрации противодифтерийных антител может свидетельствовать о выздоровлении пациента.

Стоит отметить, что антитела против коринебактерий образуются также после вакцинации и циркулируют в крови в течение многих лет. Вот почему всегда требуется исследование данного показателя в динамике, а постановка диагноза по данным однократного исследования недопустима.

Существует много методов выявления антител в крови пациента. Наиболее распространенной сегодня является реакция непрямой (пассивной) гемагглютинации (РНГА, РПГА). Суть ее заключается в следующем. На поверхности заранее подготовленных эритроцитов (красных клеток крови) крепится анатоксин (то есть обезвреженный токсин коринебактерий дифтерии). После этого к эритроцитам добавляют образцы сыворотки пациента. Если в ней имеются антитела против данного дифтерийного токсина, они начнут взаимодействовать, в результате чего произойдет склеивание эритроцитов. Если же таковых антител в сыворотке пациента нет, никакой реакции не произойдет. В данном случае можно будет с уверенностью сказать, что иммунитета против дифтерии у пациента нет, поэтому в случае контакта с коринебактериями дифтерии он заразится с вероятностью близкой к 99%.

Общий анализ крови (ОАК) не является специфическим исследованием при дифтерии и не позволяет подтвердить или опровергнуть диагноз. В то же время, с помощью ОАК можно определить активность инфекционно-воспалительного процесса, что крайне важно для оценки общего состояния пациента и планирования лечения.

На наличие инфекционно-воспалительного процесса может указывать:

• Увеличение количества лейкоцитов (норма – 9,0 х 10 9 /л).Лейкоциты – это клетки иммунной системы, которые борются с инфекцией. При проникновении чужеродных агентов в организм количество лейкоцитов в крови повышается, а после выздоровления нормализуется.
• Определение скорости оседания эритроцитов (СОЭ). Оседание эритроцитов на дно пробирки происходит с определенной скоростью, что зависит от их количества, а также от наличия посторонних веществ в исследуемой крови. При развитии воспалительного процесса в кровь выделяется большое количество так называемых белков острой фазы воспаления (С-реактивного белка, фибриногена и других). Данные белки способствуют склеиванию эритроцитов друг с другом, в результате чего СОЭ увеличивается (более 10 мм в час у мужчин и более 15 мм в час у женщин).

Дифтерию следует дифференцировать (отличать):

• От стрептококковой ангины.Ангина (острый тонзиллит) – это инфекционное заболевание, для которого характерно воспаление слизистой оболочки глотки и образование гнойного налета на небных миндалинах (гландах). В отличие от дифтерии, при ангине не образуется фибриновых пленок, а отек миндалин выражен менее интенсивно.
• От паратонзиллярного абсцесса. Паратонзиллярный абсцесс является одним из осложнений ангины, при котором инфекция проникает в клетчатку вблизи небной миндалины. При этом в самой клетчатке формируется объемный гнойный очаг, окруженный плотной капсулой. Клинически данное заболевание проявляется выраженными болями в горле (усиливающимися при глотании), выраженными симптомами интоксикации и повышением температуры тела до 40 градусов. Отличить его от ангины помогут данные анамнеза (абсцесс развивается на фоне или после перенесенной ангины), отсутствие фибриновых пленок, преимущественная локализация отека слизистой оболочки глотки с одной стороны и быстрое улучшение общего состояния пациента после вскрытия абсцесса и назначения антибиотиков.
• От инфекционного мононуклеоза. Это вирусное заболевание, которое проявляется повышением температуры, симптомами общей интоксикации, болями в горле, а также поражением лимфатических узлов и печени. Отличить мононуклеоз от дифтерии можно при помощи осмотра глотки (при дифтерии налет плотный и снимается с трудом, в то время как при мононуклеозе отделяется довольно легко). Также на мононуклеоз может указывать генерализованное (по всему телу) увеличение лимфоузлов, а также увеличение селезенки и печени (при дифтерии увеличиваются только шейные лимфоузлы). В крови при мононуклеозе определяется увеличение количества лимфоцитов и моноцитов (относящихся к клеткам иммунной системы), а также выявляются характерные для данной патологии клетки – мононуклеары.

Лечение дифтерии нужно начинать как можно раньше, чтобы предотвратить дальнейшее прогрессирование заболевания и развитие осложнений. Больные с подозрением на дифтерию должны быть немедленно госпитализированы в инфекционную больницу, где будут изолированы на весь период лечения. Всем пациентам при этом показан постельный режим, который длится 3 – 4 недели при токсических формах заболевания и до 2 месяцев при развитии осложнений со стороны внутренних органов.

Основными направлениями в лечении дифтерии являются:

• специфическая противодифтерийная терапия;
• антибактериальная терапия;
• диета.

Суть специфической терапии дифтерии заключается во введении пациентам антитоксической противодифтерийной лошадиной сыворотки. Получают данный препарат путем гиперсенсибилизации лошадей. На протяжении определенного времени им вводят дифтерийный анатоксин, в результате чего их иммунная система активируется и выделяет большое количество специфических антител против токсических веществ. В дальнейшем данные антитела извлекаются из крови лошадей, концентрируются и применяются для лечения дифтерии.

При введении такой сыворотки больному дифтерией человеку антитела быстро распространяются по всему организму, выявляя и нейтрализуя все дифтерийные токсины. Это приводит к быстрому (иногда в течение 6 – 12 часов) улучшению состояния больного и замедлению прогрессирования заболевания.

Важно отметить, что данная сыворотка содержит определенное количество чужеродных для человека белков (в нормальных условиях любое белковое вещество, синтезированное не в организме конкретного человека, расценивается его иммунной системой как чужеродное). Это может стать причиной развития аллергических реакций при использовании препарата, тяжесть которых может варьировать в широких пределах (от простой аллергической сыпи до анафилактического шока и смерти человека). Вот почему применять противодифтерийную сыворотку разрешено только в условиях стационара, под пристальным наблюдением врача, который при необходимости сможет оказать своевременную и адекватную помощь.

Дозировка и длительность лечения противодифтерийной сывороткой определяются формой, тяжестью и длительностью заболевания.

Разовая доза противодифтерийной сыворотки составляет:

• При легких (локализованных) формах – 10 – 20 тысяч Международных Единиц (МЕ).
• При дифтерии гортани и/или дыхательных путей – 40 – 50 тысяч МЕ.
• При токсической дифтерии – 50 – 80 тысяч МЕ.
• При геморрагической или гипертоксической форме – 100 – 120 тысяч МЕ.

При своевременном начале лечения локальной формы дифтерии может быть достаточно однократного введения препарата. В то же время, при обращении за помощью на 3 – 4 день после начала развития токсической формы заболевания сыворотка может оказаться неэффективной даже после длительного применения в высоких дозах.

Также стоит отметить, что ввиду высокого риск развития аллергических реакций, первое введение сыворотки должно проводиться по определенной схеме.

Первый раз противодифтерийную сыворотку нужно вводить следующим образом:

• Внутрикожно вводят 0,1 мл сыворотки в разведении 1:100. Препарат вводят в кожу передней поверхности предплечья. Если через 20 минут в области укола диаметр отека и покраснения не превышает 1 см, пробу считают отрицательной (в данном случае переходят к следующей пробе).
• Подкожно вводят 0,1 мл противодифтерийной сыворотки. Препарат вводят в область средней трети плеча, а результат оценивают по тем же критериям, что при первой пробе. Если через 45 – 60 минут никаких реакций не наблюдается, а самочувствие пациента не ухудшается, проба считается отрицательной.
• Внутримышечно вводят всю дозу сыворотки. После введения пациент должен находиться под наблюдением врача в течение минимум 1 часа.

Если на каком-либо этапе введения препарата была выявлена аллергическая реакция, дальнейшую процедуру прекращают. Вводить противодифтерийную сыворотку таким пациентам можно только по жизненным показаниям (то есть если без сыворотки пациент умрет с большой долей вероятности). Введение препарата в данном случае должно проводиться в отделении реанимации, а врачи должны быть готовы выполнить противошоковые мероприятия.

На эффективность противодифтерийной сыворотки может указывать:

• уменьшение степени отека пораженных слизистых оболочек;
• уменьшение размеров налета;
• истончение налета;
• исчезновение налета;
• снижение температуры тела;
• нормализация общего состояния пациента.

Антибактериальная терапия является одним из обязательных этапов лечения патологии. Применяются антибиотики, которые обладают наибольшей активностью против коринебактерий дифтерии.

Антибактериальное лечение дифтерии

Неотложная помощь больным дифтерией может понадобиться при поражении дыхательных путей и развитии асфиксической стадии дифтерийного крупа (то есть удушья). Если приступ случился на улице (что встречается крайне редко, так как развитию асфиксии предшествует постепенное ухудшение состояния пациента), следует как можно скорее вызвать скорую помощь. Самостоятельно (без специальных медицинских инструментов и препаратов) помочь пациенту невозможно.

Специализированная медицинская помощь при асфиксической стадии дифтерии включает:

• Назначение кислорода. Кислород может подаваться через маску либо через специальные носовые канюли. Увеличение концентрации кислорода во вдыхаемом воздухе способствует более эффективному насыщению им эритроцитов даже при нарушении внешнего дыхания.
• Удаление фибриновых пленок. В данном случае врач вводит в дыхательные пути пациента специальную тонкую трубку, подсоединенную к отсосу, пытаясь таким образом удалить пленки. Данная методика не всегда эффективна, так как при дифтерии пленки плотно прикреплены к поверхности слизистой оболочки и с трудом отделяются от нее.
• Интубацию трахеи. Суть данной процедуры заключается в том, что в трахею пациента вводится специальная трубка, через которую (с помощью специального аппарата) осуществляется вентиляция легких. Сам пациент при этом может находиться в сознании или (при необходимости) в медицинском сне (вызванном с помощью лекарственных препаратов). При дифтерии вводить трубку рекомендуется через нос, так как при введении ее через рот высока вероятность повреждения отечных и увеличенных небных миндалин.
• Трахеостомию. Суть данной манипуляции заключается в следующем. Врач разрезает трахею в области передней ее стенки, а затем через образовавшееся отверстие вводит трубку (трахеостому), через которую в дальнейшем осуществляется вентиляция легких. Трахеостомия показана в том случае, если не удается выполнить интубацию, а также, если фибриновые пленки расположены глубоко в трахее.

Иммунитет при дифтерии обусловлен циркуляцией в крови особых классов иммуноглобулинов – белков плазмы крови, несущих в себе информацию о перенесенной инфекции. Если в крови человека такие иммуноглобулины имеются, проникновение в его организм коринебактерий и их токсинов запустит целый ряд иммунных реакций, в результате чего возбудитель будет довольно быстро уничтожен и удален из организма.

Иммунитет к дифтерии может формироваться у человека после перенесенной инфекции либо после вакцинации (прививки). В обоих случаях он сохраняется лишь в течение ограниченного промежутка времени (в среднем около 10 лет), по истечении которого восприимчивость человека к коринебактериям повышается (то есть возможно повторно заболеть дифтерией).

Стоит отметить, что повторное развитие дифтерии, а также возникновение заболевания на фоне регулярно проводимых прививок характеризуется менее агрессивным течением (преобладают локализованные формы дифтерии глотки, которые легко поддаются лечению и редко приводят к развитию осложнений).

Как было сказано ранее, прививка является наиболее эффективным методом предотвращения развития дифтерии у человека. Механизм действия прививки заключается в следующем. В организм человека вводят дифтерийный анатоксин (то есть экзотоксин коринебактерий дифтерии, обработанный особым образом и полностью лишенный токсических свойств, однако сохранивший свою структуру). После поступления в кровоток анатоксин контактирует с клетками иммунной системы, что приводит к ее активации и синтезу специфических противодифтерийных антител, которые и защищают организм от внедрения живых, опасных дифтерийных коринебактерий.

На сегодняшний день разработан специальный календарь прививок, согласно которому вакцинацию против дифтерии начинают проводить всем детям с трехмесячного возраста.

Прививку против дифтерии выполняют:

• ребенку в 3 месяца;
• ребенку в 4,5 месяца;
• ребенку в 6 месяцев;
• ребенку в полтора года;
• ребенку в 6 лет;
• подростку в 14 лет;
• взрослым через каждые 10 лет после предыдущей вакцинации.

Если по каким-либо причинам дата вакцинации была пропущена, прививку следует выполнить как можно скорее, не дожидаясь следующего календарного срока.

Сама процедура вакцинации не требует предварительной подготовки и практически безболезненна. Детям препарат вводят внутримышечно (обычно в область передней поверхности бедра или в ягодицу), в то время как взрослым можно вводить вакцину подкожно (в подлопаточную область). Используемые для вакцинации препараты хорошо очищаются, поэтому крайне редко вызывают развитие побочных явлений.

Побочные реакции после прививки могут проявляться:

• Умеренным кратковременным повышением температуры тела (до 37 – 37,5 градусов).
• Легким недомоганием и повышенной утомляемостью в течение 1 – 2 дней.
• Изменениями кожи в месте укола (покраснением, умеренным отеком и болезненностью).
• Тяжелыми реакциями (судорогами, анафилактическим шоком, неврологическими расстройствами). Данные явления встречаются исключительно редко и чаще обусловлены имеющимися у пациента недиагностированными заболеваниями, а не качеством вакцины.

Абсолютных противопоказаний к вакцинации против дифтерии нет. Относительным противопоказанием является острое вирусное респираторное заболевание (ОРЗ) или другая инфекция в период обострения. В данном случае прививку следует выполнить через 10 – 14 дней после выздоровления пациента (подтвержденного клинически и лабораторно).

Ввиду широко распространенной иммунопрофилактики вспышки дифтерийной инфекции наблюдаются крайне редко. Объясняется это тем, что у большинства населения (более чем у 95%) имеется противодифтерийный иммунитет. Если даже один человек (не привитый или с ослабленным иммунитетом) заразится дифтерией, крайне мала вероятность того, что он передаст инфекцию окружающим. Тем не менее, при выявлении случая дифтерии следует в полной мере выполнять все противоэпидемические мероприятия, чтобы не допустить распространения инфекции.

Противоэпидемические мероприятия при выявлении дифтерии включают:

• Немедленную госпитализацию больного в инфекционную больницу и его изоляцию. Больной должен оставаться в изоляции до полного выздоровления (подтвержденного клинически и бактериологически). В течение всего периода изоляции пациент должен пользоваться индивидуальной посудой и предметами личной гигиены, которые следует регулярно обрабатывать кипячением.
• Однократное клиническое и бактериологическое (взятие мазка из носа и глотки) обследование всех лиц, контактировавших с больным. Данные люди должны быть проинформированы о длительности инкубационного периода дифтерии и о первых проявлениях данного заболевания. При возникновении болей в горле или недомогания в течение последующих 7 – 10 дней они должны незамедлительно обращаться к врачу.
• Дезинфекцию помещения, в котором больной проживал или находился в течение длительного времени (например, школьный класс). После госпитализации пациента все поверхности (стены, столы, пол) обрабатывают дезинфицирующим раствором (раствором хлорамина, раствором хлорной извести и так далее). Одежда, постельное белье или игрушки больного ребенка должны обеззараживаться кипячением (в течение минимум 10 – 15 минут) или замачиванием в 3% растворе хлорамина.

Осложнения дифтерии связаны с длительным прогрессированием заболевания и токсическим поражением сердечно-сосудистой, нервной и других систем организма. Стоит отметить, что характер и тяжесть осложнений во многом зависят от формы дифтерии (осложнения чаще встречаются и тяжелее протекают при токсической и гипертоксической дифтерии глотки, чем при других видах заболевания).

К осложнениям дифтерии относят:

• Нефротический синдром. Возникает в остром периоде дифтерии и характеризуется поражением почек, которое проявляется протеинурией (появлением большого количества белка в моче). Специфического лечения обычно не требуется, так как симптомы исчезают одновременно с устранением основного заболевания.
• Миокардит (воспаление сердечной мышцы). Может развиваться через 7 – 30 дней после перенесенной инфекции и клинически проявляется нарушением частоты и ритма сердечных сокращений, болями в области сердца. В тяжелых случаях довольно быстро прогрессируют признаки сердечной недостаточности (состояния, при котором сердце не может перекачивать кровь). Кожные покровы больного становятся синюшными, нарастает одышка (чувство нехватки воздуха), появляются отеки на ногах. Такие больные должны госпитализироваться в кардиологическое отделение больницы для лечения и наблюдения.
• Периферические параличи.Паралич – это полная утрата движений в каком-либо участке тела из-за повреждения иннервирующего данный участок двигательного нерва. Признаки поражения черепных нервов могут наблюдаться через 10 – 20 дней после перенесенной инфекции. Проявляется это нарушениями глотания или речи, нарушением зрения (из-за поражения мышц глаза), поражением мышц конечностей или туловища. Больные не могут ходить, ровно сидеть, при поражении мышц шеи не могут удерживать голову в нормальном положении и так далее. Описанные изменения обычно исчезают через 2 – 3 месяца, однако в редких случаях могут сохраняться пожизненно.

Смерть больного дифтерией человека может наступить при поздно начатом и/или неправильно проводимом лечении.

Причиной смерти больных дифтерией может быть:

• Удушье (асфиксия). Наблюдается при дифтерии гортани на 3 – 5 день после начала заболевания.
• Инфекционно-токсический шок. Характерен для токсических и гипертоксических форм заболевания и проявляется критическим снижением артериального давления, в результате чего нарушается кровоснабжение головного мозга и происходит его гибель.
• Миокардит. Развитие тяжелого миокардита с последующей сердечной недостаточностью может стать причиной смерти пациента через 2 – 4 недели после перенесенной инфекции.
• Паралич дыхания. Поражение нервов, иннервирующих диафрагму (основную дыхательную мышцу), может стать причиной смерти пациента через несколько недель после перенесенной дифтерии.

Дифтерии при беременности женщине следует опасаться в том случае, если она никогда не делала прививку против данного заболевания, а также если последняя прививка была сделана более 10 лет назад (в данном случае напряженность иммунитета снижается, и риск инфицирования повышается). Развитие дифтерии при беременности может негативно повлиять на организм матери и развивающегося плода, так как выделяемый коринебактериями токсин может повреждать многие внутренние органы женщины, в том числе и плаценту (отвечающую за обеспечение плода кислородом и другими необходимыми веществами). Вот почему всем женщинам во время планирования беременности рекомендуется вакцинироваться против дифтерии.

Если же до наступления беременности вакцинация не была произведена, а во время вынашивания плода имел место контакт с больным дифтерией или пребывание в эпидемиологически опасной зоне (то есть если риск заражения крайне высок), женщине можно сделать прививку, однако только после 27 недели беременности.

Если прививка не была сделана и дифтерия развилась во время вынашивания плода, прогноз зависит от срока беременности и времени начала лечения. Сразу стоит отметить, что без лечения, а также в далеко зашедших случаях токсической дифтерии шансов выжить у плода практически нет. В то же время, при локализованных формах заболевания возможно спасти ребенка, если своевременно начать антибактериальную терапию (вопрос об использовании тех или иных антибиотиков решается врачом в зависимости от срока беременности). Информации о безопасности и эффективности использования противодифтерийной сыворотки во время беременности нет, так как соответствующие исследования во время тестирования препарата не проводились.

Стоит помнить, что прием любых медикаментов во время беременности может негативно сказаться на плоде, поэтому легче всего заранее подумать о здоровье малыша и своевременно выполнить все необходимые прививки.

источник