Меню Рубрики

Профилактика вирусных гепатитов в кдл

Организация работы клинико-диагностических лаборатории по предупреждению инфицирования пациентов и персонала вирусами гепатитов В и С и иммунодефицита человека

ТРЕБОВАНИЯ К ДОСТАВКЕ КРОВИ И ДРУГИХ БИОЛОГИЧЕСКИХ ЖИДКОСТЕЙ В ЛАБОРАТОРИЮ.

5.1. Правила организации доставки и транспортировки крови и других биологических жидкостей едины для всех лабораторий, независимо от видов исследования. В помещении приёма материала на видном месте размещается информация о правилах доставки его в лабораторию.

5.2. Кровь и другие биологические материалы доставляются в лабораторию медицинскими работниками, либо нарочными, прошедшими соответствующий инструктаж.

5.3. Материал для исследования доставляется в контейнерах, биксах, пеналах, укладках, стерилизационных коробах. Не допускается транспортировка в картонных коробках, деревянных ящиках, пакетах, сумках, портфелях, а также самими пациентами.

5.4. Каждая проба этикетируется.

5.5. Направления на исследования помещают в отдельные палки либо целлофановые пакеты. Не допускается помещение бланков направлений или Другой документации внутрь бикса, контейнера и др.

5.6. Категорически запрещается помещать направления в пробирки с кровью.

5.7. В направлении категорически запрещается вносить поправки, изменения, зачеркивания и т.д.

5.8. При пересылке крови из многопрофильных стационаров в другие лаборатории не рекомендуется составление единого списка вместо направлений (списков) из отделений во избежании ошибок при переписывании.

5.9. Все пробирки должны быть закрыты резиновыми или ватно-марлевыми пробками, целесообразно использование шприц пробирок.

5.10. Пробирки устанавливают в штатив, помещаемый в бикс либо контейнере уплотнителями (вата, поролон). После транспортировки крови уплотнитель, ватно-марлевые пробки подвергают в лаборатории дезинфекции (хлорамин, лресепт и др.) и утилизируются.

5.11. Запрещается возвращать уплотнитель в ЛПУ; не допускается использование пробирок с отбитыми краями.

5.12 Освобождение контейнера проводится работником лаборатории. Контейнеры дезинфицируют 2-х кратным протиранием дезинфицирующим раствором с интервалом 15 минут или погружением в дезинфицирующий раствор.

5.13. Штативы дезинфицируют в лабораториях погружением в дезинфицирующий раствор.

Возврат штативов, ёмкостей из лаборатории осуществляется только после дезинфекции, целесообразно иметь обменный фонд. Возврат пробирок осуществляется только после дезинфекции и стерилизации. Такие же требования предъявляются к доставке стекол с мазками для исследования на гонорею, малярию, гистологию, грибки. Запрещается заворачивать мазки в направления во избежании инфицирования персонала.

В лаборатории должны быть созданы условия для обработки рук лицам, доставившим материал.

6. ТРЕБОВАНИЯ К ОРГАНИЗАЦИИ РАБОЧЕГО МЕСТА ЛАБОРАНТА ДЛЯ ЗАБОРА КРОВИ В ЛАБОРАТОРИИ.

6.1. Взятие крови у пациента в лаборатории проводится в специально отведенном помещении с раковиной для мытья рук.

6.2. Рабочий стол лаборанта должен быть условно разделен на «чистую» и грязную» половины и оснащен:

дезинфицирующими средствами (3%хлорамин, 6% перекись водорода, либо накопительными растворами: 4% перекись водорода с 0,5% моющим средством и другими). Дезинфицирующие растворы должны находиться в емкостях с этикетками и легкооткрывающимися крышками в количестве, достаточном на одну рабочую смену;

70° спиртом в устойчивой подставке;

биксом со стерильными ватными шариками в упаковках (мешочки из двуслойной бязи или крафт-бумаги, указанной в ГОСТе 42-21-2-85) по 15-20 штук в каждой упаковке. Невскрытая упаковка сохраняет стерильность в течение 3-х суток с момента стерилизации или до 20 суток в стерилизационных коробах с фильтром или крепированной бумагой *Стерикинг» (Финляндия). Вскрытая упаковка должна быть использована в течение одной смены;

стерильными капиллярами (по 5-10 штук в упаковках), дата стерилизации указывается на каждой упаковке;

стерильными копьями (копья можно стерилизовать в конических пробирках по 5-10 штук, острием вниз, либо в чашках Петри, по 7-10 штук); предпочтительно использование разовых стерильных копий;

стерильными пинцетами, не менее 2-3 на каждого лаборанта. Во время работы лаборанта пинцет хранится в сухой стерильной пробирке или в растворе дез. средства;

стерильными грушами в расчете на максимальное количество больных;

стерильными предметными часовыми стеклами; либо разовыми и стерильными пробирками или чашками, плашками;

стерильными или чистыми перчатками в количестве, соответствующему числу пациентов;

индивидуальным полотенцем, которое должно меняться ежедневно;

— ёмкостями для сброса отработанного материала с дез. растворами; 6.3. не разрешается выкладывание отработанного материала, инструментов прямо непосредственно на поверхность стола.

На «чистой» половине помещаются упаковки со стерильными капиллярами, грушами, копьями, стеклами, мешочки со стерильными ватными тампонами, стерильные пинцеты, перчатки, 70° спирт; на «грязной» — закрытые емкости с дез.растворами для сбора отработанного материала, пробирка для сбора копий, дез.растворы, емкость или целлофановый мешок для сбора перчаток.

7. ТРЕБОВАНИЯ К ОРГАНИЗАЦИИ ЗАБОРА КРОВИ В ОТДЕЛЕНИЯХ СТАЦИОНАРА.

7.1. Взятие крови в отделении должно проводиться в специально отведенном месте или у постели больного.

7.2. Для забора крови в отделении лаборант должен иметь укладку, которая Должна быть удобной для переноса, легкой, закрытой, изготовленной из материала, подвергающегося дезинфекции.

7.3. Переносная укладка условно делится на чистую и грязную половины. — на чистой половине необходимо иметь упаковки со стерильными капиллярами, грушами (в количестве, превышающем максимальный забор крови), со стерильными копьями, стерильными стеклами, мешочками со стерильными ватными тампонами, упаковки не менее 2-х стерильных пинцетов, перчатки одноразового назначения, предпочтительно стерильные (по количеству пациентов).

— на грязной — закрытые ёмкости для сбора отработанного материала с дезраствором, дезрастворы, мешок для сбора перчаток (любой разового назначения).

8. ТРЕБОВАНИЯ К ОРГАНИЗАЦИИ ЗАБОРА КРОВИ НА ДОМУ

8.1. Для забора крови на дому необходима переносная укладка (предпочтительно бикс), оснащенная стерильными пакетами по числу вызовов на дом. В каждый пакет перед стерилизацией закладываются:

копья, не менее 2-3 штук (в пробирке);

капилляры (2-3 шт. в упаковке);

стекла либо разовые пробирки, чашка Петри;

8.2. К каждому пакету прикладываются стерильные или чистые перчатки, упаковка со стерильными ватными шариками, спирт 70°, чистое полотенце в пакете, полиэтиленовый мешок для сбора отработанного материала и грязных перчаток. Извлекать копья (скарификаторы), стерильные ватные тампоны следует только стерильным пинцетом. Стерильные лабораторные инструменты следует хранить в той же упаковке, в которой проводилась их стерилизация. Отработанные копья сбрасываются в ту же пробирку, в которой они находились.

9. ТРЕБОВАНИЯ К РЕЖИМУ ПРИ ВЗЯТИИ И ИССЛЕДОВАНИИ КРОВИ.

При взятии крови место прокола обрабатывается тампонами, смоченными в 70° этиловом спирте двукратно. Первую каплю крови следует удалить.

Не допускается повторное взятие крови тем же капилляром в случае, если он имел контакте плашкой.

Не разрешается выпуск крови из капилляра (доведение ее до метки) на палец (только на стерильный тампон или вату).

Не допускается очистка от крови кончика капилляра о ветошь, марлю, полотенце, выложенные непосредственно на поверхность стола, а только в ёмкость (чашка Петри, лоток и др.).

источник

ВИЧ-инфекция и гемоконтактные (парентеральные) вирусные гепатиты В и С относятся к категории преимущественно хронических инфекционных заболеваний, завершающихся развитием синдрома приобретенного иммунодефицита (СПИДа), а при гепатитах цирротической стадии с возможным развитием гепатоцеллюлярной карциномы.

Заражение медицинского работника чаще всего происходит при загрязнении кожи и слизистых оболочек биологическими жидкостями больного (кровью, сывороткой, ликвором, спермой и др.) и при травматизации их во время выполнения медицинских манипуляция (порез, укол, повреждение кожи мелкими обломками кости и др.).

Следует отметить, что заражение вирусами гепатитов В и С, в отличии от ВИЧ происходит значительно легче и чаще в связи с их меньшей инфицирующей дозой и высокой устойчивостью вируса во внешней среде.

Риску профессионального инфицирования чаще всего подвержены медицинские работники, которые соприкасаются с кровью и её компонентами.

В первую очередь, это сотрудники гематологических, реанимационных, стоматологических, гинекологических, хирургических и гемодиализа отделений, процедурных кабинетов, лаборанты и т. д., а также лица, работающие на производстве по заготовке крови, ее компонентов и ее препаратов.

Учитывая возможную инфицированность крови и биологического материала человека вирусами СПИДа, гепатитов, цитомегаловирусами, рядом онкогенных вирусов правила профилактики про­фессионального заражения распространяются на все лечебно-про­филактические учреждения, независимо от профиля. Эти правила сводятся к максимальному предотвращению возможности загрязне­ния кожи и слизистых.

Для профилактики профессионального инфицирования необ­ходимо:

— при выполнении манипуляций медицинский работник должен быть одет в халат, шапочку, сменную обувь, выходить в которой за пределы лабораторий, отделений запрещается;

— все манипуляции, при которых может произойти загрязнение рук кровью, сывороткой или др. биологическими жидкостями, проводить в перчатках. Резиновые перчатки, снятые единожды, повторно не используются из-за возможности загрязнения рук. В процессе работы перчатки обрабатываются 70% спиртом, 3% хлорамином, спиртовым раствором хлоргексидина и др.

— мед. работники должны соблюдать меры предосторожности при выполнении манипуляций с режущими и колющими инструментами (иглы, скальпели, ножницы); открывая бутылки, флаконы, пробирки с кровью или сывороткой, следует избегать уколов, порезов-перчаток и рук;

— при повреждении кожных покровов необходимо немедленно обработать и снять перчатки, выдавить кровь из ранки, затем под проточной водой тщательно вымыть руки с мылом, обработать их 70% спиртом и смазать ранку 5% раствором йода. При загрязнении рук кровью следует немедленно обработать их тампоном, смоченным 3% раствором хлорамина или 70% спиртом, вымыть их двукратно теплой проточной водой с мылом и насухо вытереть индивидуаль­ным полотенцем;

— если кровь попала на слизистые оболочки глаз, их следует сразу же промыть водой или 1% раствором борной кислоты. При попадании на слизистую оболочку — обработать 1% раствора протарго­ла, на слизистую оболочку рта — полоскать 70% раствором спирта или 0,05% раствором марганцево-кислого калия, или 1% раствором борной кислоты;

— при угрозе разбрызгивания крови и сыворотки, обломков костей следует применять средства защиты глаз и лица: защитную маску, очки, защитные щитки;

— разборку, мойку, ополаскивание медицинского инструмента, пипеток, лабораторной посуды, приборов или аппаратов, которые соприкасались с кровью или сывороткой, надо проводить только в резиновых перчатках после предварительной дезинфекции (обеззараживания);

— мед. работники, имеющие раны на руках, эксудативные пора­жения кожи или мокнущий дерматит, на время заболевания отстраняются от ухода за пациентами и контакта с предметами для ухода. При необходимости выполнения работы все повреждения должны быть закрыты напальчниками, лейкопластырем;

— бланки направлений в клинико-диагностическую лабораторию категорически запрещается помещать в пробирки с кровью;

— поверхность рабочих столов в конце рабочего дня (а в случае загрязнения кровью — немедленно) обрабатываются 3% раствором хлорамина или 6% раствором перекиси водорода с 0,5% моющего средства. Причем, если поверхность загрязнена кровью или сыво­роткой, процедуры выполняют дважды: немедленно и с интервалом в 15 минут;

— заполнение учетной и отчетной документации должно вестись на чистом столе;

— запрещается принимать пищу, курить и пользоваться космети­кой на рабочих столах;

— не стоит проводить никаких парентеральных и лечебно-диаг­ностических процедур мед.персоналу в тех помещениях, которые предназначены для обслуживания больных.

Для надежной защиты медицинских работников от гепатита В проводится 3-кратная иммунизация по схеме 0-1-6, т.е. через 1 и 6 месяцев после первой прививки (вакцины компании «Мерк, Шарп & Доум», либо «Смят Клейн Бичен», либо «Комбиотек»).

В тех случаях, когда произошла травматизация рук и других час­тей тела с загрязнением кожи и слизистых биологическими жидко­стями, мед. работнику, не привитому ранее против гепатита В, прово­дится иммунизация по эпидимическим показаниям так же 3-кратно в более короткие сроки (по схеме 0-1-2) с ревакцинацией через 12 ме­сяцев (тел.: 277-5671). Прививка в этих случаях должна проводится как можно скорее — не позднее 1-2 суток после травмы. Травмы мед.работников должны учитываться в каждом лечебно профилактическом учреждении. Пострадавшие должны наблюдаться не менее 6-12 месяцев у врача-инфекциониста. Медицинское наблюдение прово­дится с обязательным обследованием на маркеры вирусных гепати­тов В, С и ВИЧ-инфекции.

Хотя первейшей мерой профилактики заражения медицинского персонала вирусом СПИДа является предотвращение непосредственного контакта с кровью и жидкостями инфицированного организма, но, если вследствие повреждения кожи или слизистых оболочек медработни­ка такой контакт все же случается, необходимо прибегнуть к посттрав­матической профилактике (ПТП) с помощью таких антиретровирусных средств, как азидотимидин (ретровир), индинавир (криксиван), эпивир (ламивудин) и некоторые другие. /CDC, MMMWR; 1996; 45:468-72: JAMA, 1996 July 10; 276(2).

Контрольными исследованиями установлено, что азидотимидин эффективен в посттравматической ВИЧ-профилактике. Азидотими­дин примерно на 79% уменьшает риск ВИЧ-сероконверсии после посттравматического ВИЧ-инфицирования. Перспективные иссле­дования применения азидотимидина для ВИЧ-инфицированных женщин и их детей показывают, что непосредственный профилак­тический эффект азидотимидин на плод и/или новорожденного выражается в 67%-ном уменьшении перинатальной ВИЧ-транмиссии, защитный эффект изидотимидииа лишь частично объясняется уменьшением титра ВИЧ в материнской крови.

Посттравматичес­кая профилактика (ПТП) точно так же снижает ретровирусную активность. В среднем риск ВИЧ-инфекции при чрезкожном проник­новении крови от ВИЧ-пациента составляет 0,3%. Наиболее высо­кий риск инфицирования отмечается при глубоких поражениях кож­ных покровов, подвергшихся воздействию видимой крови на медицинском инструментарии, при соприкосновении с инструмен­том, находившимся в вене или артерии пациента (например, с иглой при флеботомии); или в организме больного (следовательно, имев­шего высокий титр ВИЧ).

Чем больший объем крови был задейство­ван, тем выше риск. При поверхностных повреждениях крови риск инфицирования уменьшается и составляет 0,1% и менее в зависи­мости от объема крови и титра ВИЧ. Пока данные об эффективнос­ти и токсичности ПТП, а также риске ВИЧ-инфицирования при тех или иных повреждениях кожи ограничены. Однако, в большинстве случаев подобные травмы не приводят к ВИЧ-инфецированию. Поэтому при назначении ПТП следует принимать в расчет ее потен­циальную токсичность. Если есть такая возможность, лучше обра­титься за рекомендациями к экспертам в области антиретровирусной терапии и ВИЧ-трансмиссии.

Известно, что сочетание азидотимидина (ретровира) и ламивудина (эпивира) увеличивает антиретровирусную активность и пре­одолевает формирование резистентных штаммов. Добавление протеазы (индинавир, саквинавир) особенно показано при случаях, свя­занных с высоким риском инфицирования. Однако, учитывая вероят­ность возникновения резистентных штаммов, добавление ингибиторов протеазы целесообразно и при ситуациях меньшего риска.

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском:

источник

Вирусный гепатит — это воспаление печени, которое вызвано одним из пяти вирусов: А, В, С, D и E. Пути передачи различны:

  1. гепатиты А и Е — как правило, попадают в организм через пищу и воду (вирусный гепатит А (болезнь Боткина) — это типичная болезнь грязных рук);
  2. гепатит В — через кровь и другие жидкости организма;
  3. гепатит С – в первую очередь через зараженную кровь;
  4. гепатит D чаще является дополнительной инфекцией при гепатите В.

Возбудитель гепатита А сохраняется во внешней среде месяцами. Выделяется он только в кишечнике. Для возникновения заболевания необходимо, чтобы возбудитель от больного человека попал через рот в кишечник здорового. Происходит это при попадании фекалий в:

  1. питьевую воду,
  2. места плавания,
  3. пищевые продукты,
  4. на руки,
  5. игрушки,
  6. жевательные резинки,
  7. карандаши, ручки,
  8. посуду, белье,
  9. возможен перенос вируса и мухами.

Заболевает человек не сразу, а через 2-3 недели после заражения (инкубационный, или скрытый, период от 7 до 50 дней). Начинается заболевание внезапно с повышения температуры тела, слабости, снижения аппетита. Затем может присоединиться тошнота, рвота, дискомфорт или боль в правой верхней половине живота, понос или запор. В конце недели моча приобретает цвет пива, а кал — белой глины, желтеют склеры глаз, а затем кожа. В связи с особенностями болезни и снижением иммунитета типичны теперь безжелтушные и бессимптомные формы болезни, которые остаются неопознанными, чаще приводят к осложнениям и могут быть опасными для окружающих.

Заразным больной становится уже за 1-2 недели до начала заболевания и перестает быть опасным через 3 дня после появления желтухи. Поэтому при появлении первых признаков заболевания необходимо сразу обратиться к врачу для своевременной изоляции или госпитализации и лечения и строго соблюдать правила личной гигиены:

  • мыть руки после туалета,
  • не пользоваться общим полотенцем, носовым платком, посудой, жевательной резинкой и т.п.
Читайте также:  Хронические вирусные гепатиты осложнения и исходы

Профилактика распространения вирусного гепатита А — употребление доброкачественной питьевой воды и мытья рук не менее чем с двукратным намыливанием перед приготовлением и употреблением пищи, после туалета и различных мест общего пользования и соблюдение других требований личной гигиены. Переболевшие гепатитом А дети подлежат медицинскому обследованию в течение 6 месяцев, а взрослые — трех месяцев. Для предупреждения возникновения воспаления желчного пузыря или желчных протоков (холецистит, ангиохолит) необходимо соблюдать режим поведения и питания:

  1. физически и психически не переутомляться;
  2. не перегреваться на солнце;
  3. не переедать и не голодать;
  4. пищу принимать в теплом виде 4-6 раз в день, исключив жирные, копченые и жареные продукты;
  5. употреблять преимущественно кисломолочные продукты, творог, каши, фрукты, овощи, отварное мясо;
  6. проводить месячными курсами профилактическое лечение настоем желчегонных трав, отваром овса, арбузами и минеральной водой под наблюдением врача.

Вирусные гепатиты В, С, D — инфекционные заболевания всего организма с преимущественным поражением печени и тяжелыми осложнениями. Это различные болезни, вызываемые различными возбудителями (вирусы В, С, D) с соответствующим пожизненным иммунитетом. Общим для них является механизм заражения и наличие желтухи при манифестных формах.

Механизм заражения гепатитами В, С, D — только парентерально, то есть кровь больного должна попасть в кровяное русло здорового человека через поврежденную кожу или слизистые оболочки. Возбудители парентеральных гепатитов очень устойчивые, выдерживают кипячение и могут сохраняться во внешней среде годами. Источником инфицирования являются преимущественно вирусоносители, а также больные и те, кто переболел желтушными и бессимптомными острыми или хроническими формами гепатитов В, С, D. Заразным больной становится за 2-3 мес. до начала заболевания и при формировании вирусоносительства может оставаться опасным всю жизнь. Заболевание развивается не сразу, а после скрытого, или инкубационного, периода через 1,5-6 мес. после заражения вирусом В, через 1-4 мес. — вирусом С. Начинается болезнь медленно, с постепенным ухудшением самочувствия:

  1. слабость,
  2. ломота в суставах,
  3. головная боль,
  4. появление тошноты,
  5. дискомфорт или боли в верхней правой половине живота,
  6. а иногда зуд и высыпания на коже.

С нарастанием интоксикации через 1,5-4 недели темнеет моча, светлеет кал, желтеют склеры и кожа. Типичным для современных гепатитов является их протекание без желтухи и даже без каких-либо признаков болезни.

Тяжелые хронические осложнения могут возникнуть неожиданно через несколько лет, а то и десятилетий после заражения и формируются чаще после бессимптомного переноса болезни и инфицирования в детском возрасте (хронический гепатит, цирроз и первичный рак печени). Гепатит D чаще сопровождается тяжелым течением и желтушными формами. Это всегда спаренная с гепатитом В двойная инфекция с частыми осложнениями и высокой смертностью. Поэтому при появлении каких-либо признаков заболевания вирусными гепатитами нужно немедленно обратиться к врачу. Передаются гепатиты В, С, D через кровь или инфицированные ею слюну, лимфу, вагинальные выделения, сперму, материнское молоко, слезы, пот, другие секреты и загрязненные ими шприцы, медицинские инструменты и предметы быта (общие лезвия для бритья, ножницы, маникюрные и педикюрные наборы и т.д.).

Инфицирование чаще всего происходит не в лечебных учреждениях. Также опасен СПИД: парентеральное введение наркотиков загрязненными чужой кровью шприцами и беспорядочные половые сношения без презервативов со многими партнерами, особенно из групп риска (наркоманы, гомосексуалисты, проститутки, алкоголики). В быту заражения гепатитами происходят скрыто, когда ультрамикроскопическое количество вирусов попадает в организм через микротрещины ротовой полости, кожи или слизистых оболочек половых органов. Возможно заражение при прокалывании ушей, татуировке.

источник

При повреждении кожных покровов необходимо немедленно обработать: снять перчатки, выдавить кровь из ранки, затем проточной водой тщательно вымыть руки с мылом, обработать 70% спиртом и смазать ранку 5% раствором йодом.

При загрязнении рук кровью следует немедленно обработать их тампоном, смоченным 3% раствором хлорамином или 70% спиртом, вымыть двукратно теплой проточной водой с мылом и насухо вытереть индивидуальным полотенцем.

Если кровь попала на слизистую глаз, их следует сразу же промыть водой или 1% раствором борной кислоты. При попадании на слизистую носа – обработать 1 раствором протаргола. При попадании на слизистую рта – полоскать 70% спиртом или 0,05% раствором марганцево-кислого калия, или 1% раствором борной кислоты.

При угрозе разбрызгивания крови и сыворотки, обломков костей следует применять средства защиты глаз и лица: защитную маску, очки, защитные щитки.

Пипетки (2 шт.) или одноразовые шприцы

1% раствор борной кислоты (нос)

На слизистую рта – прополоскать рот 70% спиртом или 0,05% раствором марганца

На слизистую носа – закапать 1% раствором борной кислоты

На кожу рук – обработать 5% раствором йода (можно спиртом или антисептиком)

На слизистую глаз – закапать 1% раствором борной кислоты

Пипетки или одноразовые шприцы обеззараживаются и выбрасываются

Основные приказы и рекомендации по санитарно-противоэпидемическому режиму лечебно-профилактических учреждений

Приказ от 31 июля 1978 г. «Об улучшении медицинской помощи больным гнойными хирургическими заболеваниями и усилении мероприятий по борьбе с внутрибольничной инфекцией» № 720

Приказ от 12 июля 1989 г. «О мерах по снижению заболеваемости вирусным гепатитом в стране» № 408

Отраслевой стандарт 42-21-2-85, определяющий методы, средства и режим дезинфекции и стерилизации изделий медицинского назначения (шприцев, игл, инструментария)

Использование ультрафиолетового бактерицидного излучения для обеззараживания воздуха и поверхностей в помещениях. Руководство РЗ.1.683-98 от 1998 г.

Санитарные правила устройства, оборудования и эксплуатации больниц, родильных домов и других лечебных стационаров СанПиН 5179-90 от 1991 г.

Новый СанПиН от 22 января 1999 г. об утилизации отходов ЛПУ №2. Правила сбора, хранения и удаления отходов лечебно-профилактических учреждений СанПиН 2.1.7.728-99 г. правила и нормы

Приказ от 16 августа 1994 г. О мерах по совершенствованию профилактики и лечения ВИЧ-инфекции в Российской Федерации» № 170

Санитарно-эпидемические правила СП 3.1.958-99. Профилактика вирусных гепатитов. Общие требования к эпидемическому надзору за вирусными гепатитами

Методические рекомендации по повышению надежности стерилизационных мероприятий в ЛПУ по системе «Чистый инструмент» 1994 г.

Приказ от 04 августа 1983 г. «Об утверждении инструкции по санитарно-противоэпидемическому режиму и охране труда персонала инфекционных больниц» № 916

Приказ от 21 марта 2003 г. «О совершенствовании противотуберкулезных мероприятий в Российской Федерации» № 109

Профилактика возникновения педикулеза, сыпного тифа № 540/242, № 342

Приказ № 288 «СЭР в ЛПУ соматического профиля»

Приказ № 448 «О мерах борьбы со СПИДом у детей»

Приказ № 279/162 1995 г. «СПИД в ЛПУ», Санкт-Петербург.

Необходимы для избежания воздушно-капельного переноса микроорганизмов, а также при наличии вероятности попадания в рот и нос жидких субстанций организма.

Маски следует заменять, когда они станут влажными. Нельзя опускать их на шею, использовать повторно. Все маски должны полностью закрывать рот и нос.

Высококачественные одноразовые маски намного эффективнее, чем обычные марлевые или бумажные, для предотвращения распространения переносчиков воздушной или капельной инфекции.

Защитные барьеры для глаз и лица необходимы, чтобы предохранить глаза от брызг крови или жидких выделений организма.

За исключением операционных или изоляторов, где стерильные халаты надеваются для защиты пациента, основная цель халатов и полиэтиленовых фартуков – исключить попадание распространителей инфекции на одежду и кожу персонала. Халаты и фартуки необходимы только при вероятности того, что влажные выделения организма загрязнят одежду или кожу.

Ни в коем случае нельзя допускать, чтобы персонал уносил стирать халаты домой.

универсальные меры безопасности медицинского персонала от инфекции

Всех пациентов необходимо рассматривать как потенциально инфицированных ВИЧ и другими передаваемыми с кровью инфекциями

Мыть руки до и после любого контакта с пациентом

Рассматривать кровь и жидкие выделения всех пациентов как потенциально инфицированные и работать с ними только в перчатках

Сразу после применения помещать использованные шприцы и катетеры в специальный контейнер для утилизации острых предметов, никогда не снимать со шприцев иглодержатели с иглами и не производить никаких манипуляций с использованными иглами

Пользоваться средствами защиты глаз и масками для предотвращения возможного попадания брызг крови или жидких выделений в лицо (во время хирургических операций, манипуляций, катетеризаций и лечебных процедур в полости рта)

Использовать специальную влагонепроницаемую одежду для защиты тела от возможного попадания брызг крови и жидких выделений

Рассматривать все белье, запачканное кровью или жидкими выделениями, как потенциально инфицированное

Рассматривать все образцы лабораторных анализов как потенциально инфицированные

источник

Письмо Центра государственного санитарно-эпидемиологического надзора в Санкт-Петербурге от 05.01.2001 N 13-10-3-1

«О направлении Методических рекомендаций «Организация работы клинико-диагностических лабораторий по предупреждению инфицирования пациентов и персонала вирусами гепатитов в и с и иммунодефицита человека»

Документ по состоянию на август 2014 г.

Направляю для внедрения в работу лечебно-профилактических учреждений Методические рекомендации «Организация работы клинико-диагностических лабораторий по предупреждению инфицирования пациентов и персонала вирусами гепатитов B и C и иммунодефицита человека».

Главный государственный
санитарный врач по Санкт-Петербургу
В.И.Курчанов

УТВЕРЖДАЮ
Главный государственный
санитарный врач по Санкт-Петербургу
Курчанов В.И.
29 декабря 2000 г.

1. ТРЕБОВАНИЯ К ПОМЕЩЕНИЯМ ЛАБОРАТОРИЙ

1.1. Клинико-диагностическая лаборатория может находиться либо в составе лечебно-профилактического учреждения или быть самостоятельной структурной единицей.

1.2. Расположение помещений лаборатории должно обеспечить поточность поступающего на исследование материала и условий для выполнения правил противоэпидемического режима. Работу в лаборатории необходимо организовать так, чтобы движение всего поступающего в лабораторию материала и чистой посуды было раздельным, а стерилизация и дезинфекция проводилась в разных помещениях.

1.3. Лаборатория должна иметь:

— «чистые» помещения для персонала: кабинет заведующего, ординаторская, места для хранения личной одежды, запасов чистой лабораторной посуды, реактивов, комнаты для приема пищи, отдыха, туалет и др.;

— помещения для работы с биологическим материалом: приема, регистрации, разбора, рабочие помещения для исследования материала, для его обеззараживания (автоклавную, экспозиционную), моечную, туалет.

1.4. Лаборатория может функционировать только при исправных водо-канализационных системах. При аварийных ситуациях, временном отключении от водоснабжения работа лаборатории приостанавливается, о чем ставятся в известность руководители данного учреждения и территориальных центров санэпиднадзора.

1.5. Лаборатория должна быть обеспечена достаточным количеством раковин при строгом их разделении — для производственного назначения и для мытья рук и посуды персонала.

1.6. Помещения для работы с биологическим материалом необходимо оснастить бактерицидными лампами (стационарными или переносными).

2. ТРЕБОВАНИЯ К ОРГАНИЗАЦИИ РАБОЧЕГО МЕСТА

2.1. Лаборатория должна быть оснащена современной лабораторной мебелью, вытяжными шкафами.

2.2. Поверхность производственных столов для работы с биологическим материалом должна быть из водонепроницаемого, кислото-щелочеустойчивого и индифферентного к действию дезинфектантов материала.

2.3. Рабочее место должно иметь дополнительное искусственное освещение.

3. ТРЕБОВАНИЯ К ПЕРСОНАЛУ ЛАБОРАТОРИЙ

3.1. Ответственность за организацию и соблюдение противоэпидемического режима возлагается на руководителя, который обязан организовать обучение персонала лаборатории правилам и мерам профилактики внутрилабораторного и внутрибольничного заражения инфекционными заболеваниями.

3.2. В каждой лаборатории приказом по учреждению назначается лицо, осуществляющее контроль за соблюдением противоэпидемического режима.

3.3. На каждого сотрудника лаборатории разрабатываются функциональные обязанности.

3.4. Вновь поступающий персонал не допускается до работы без вводного инструктажа о действующих директивных документах по соблюдению санэпидрежима для профилактики инфекционных болезней;

— в дальнейшем инструктаж проводится не реже 1 раза в год под расписку каждого сотрудника с принятием зачета;

— перемещение сотрудника на другой вид деятельности должно сопровождаться дополнительным инструктажем;

— при выявлении нарушений санэпидрежима организуется внеочередное принятие зачетов.

3.5. При приеме на работу поступающий персонал подлежит обязательному обследованию на HBs-антиген и анти-ВГС и в дальнейшем ежегодно. Лица с выявленными маркерами вирусных гепатитов (НВs-антигеном, анти-ВГС) направляются к инфекционисту территориальной поликлиники для уточнения и регистрации диагноза;

— такие лица допускаются к работе после дополнительного инструктажа под расписку.

3.6. Персонал скрининговых ВИЧ-лабораторий обследуется дополнительно на анти-ВИЧ при поступлении и в дальнейшем при диспансеризации — 1 раз в год.

Сотрудники лаборатории обязаны ежегодно проходить диспансеризацию;

— результаты диспансеризации должны находиться у администрации учреждения;

— заболевшие сотрудники лаборатории при обращении за медицинской помощью обязаны сообщать об особенностях своей работы;

— сотрудники, у которых имеется подозрение на инфекционное заболевание или на носительство маркеров, обязаны поставить в известность об этом заведующего лабораторией.

3.8. Персонал лаборатории подлежит обязательной вакцинации против гепатита В как группа высокого риска. Вновь принимаемый персонал следует допускать к работе после проведения вакцинации. В ряде случаев может быть допущен после двух прививок с интервалом в 1 месяц и проведения серологического контроля на титр антител с ВГВ.

4. ОБЕСПЕЧЕНИЕ САНИТАРНО-ПРОТИВОЭПИДЕМИЧЕСКОГО РЕЖИМА

4.1. Кровь, костный мозг, мокроту, сперму, слюну, кал, мочу и другие секреты и экскременты человека следует считать потенциально инфицированными вирусами гепатитов В, С, Д, А, ВИЧ, онкогенными и др., а также этиологическими агентами сифилиса, туберкулеза, хламидиоза, трихомониаза и прочими возбудителями. Поэтому в лабораториях, исследующих биологический материал, должно быть обеспечено соблюдение режима, предусмотренного для работы в микробиологических или вирусологических лабораториях.

4.2. Все помещения лаборатории, оборудование, инвентарь должны содержаться в идеальной чистоте.

4.3. Ежедневная влажная уборка должна осуществляться с применением моющих и дезинфицирующих средств не менее 1 раза в сутки, а при необходимости — чаще.

4.4. Один раз в месяц в помещениях, где проводится работа с кровью, сывороткой и другими биологическими жидкостями по утвержденному графику делается генеральная уборка с использованием 3% раствора хлорамина, хлорной извести или другими дезинфицирующими средствами. Во время генеральной уборки тщательно моют стены и оборудование.

5. ТРЕБОВАНИЯ К ДОСТАВКЕ КРОВИ И ДРУГИХ БИОЛОГИЧЕСКИХ ЖИДКОСТЕЙ В ЛАБОРАТОРИЮ

5.1. Правила организации доставки и транспортировки крови и других биологических жидкостей едины для всех лабораторий независимо от видов исследования. В помещении приема материала на видном месте размещается информация о правилах доставки его в лабораторию.

5.2. Кровь и другие биологические материалы доставляются в лабораторию медицинскими работниками либо нарочными, прошедшими соответствующий инструктаж.

5.3. Материал для исследования доставляется в контейнерах, биксах, пеналах, укладках, стерилизационных коробах. Не допускается транспортировка в картонных коробках, деревянных ящиках, пакетах, сумках, портфелях, а также самими пациентами.

5.4. Каждая проба этикетируется.

5.5. Направления на исследования помещают в отдельные папки либо целлофановые пакеты. Не допускается помещение бланков направлений или другой документации внутрь бикса, контейнера и др.

5.6. Категорически запрещается помещать направления в пробирки с кровью.

5.7. В направлении категорически запрещается вносить поправки, изменения, зачеркивания и т.д.

5.8. При пересылке крови из многопрофильных стационаров в другие лаборатории не рекомендуется составление единого списка вместо направлений (списков) из отделений во избежание ошибок при переписывании.

5.9. Все пробирки должны быть закрыты резиновыми или ватно-марлевыми пробками, целесообразно использование шприц-пробирок.

5.10. Пробирки устанавливают в штатив, помещаемый в бикс либо контейнер с уплотнителями (вата, поролон).

После транспортировки крови уплотнитель, ватно-марлевые пробки подвергают в лаборатории дезинфекции (хлорамин, пресепт и др.) и утилизируются.

5.11. Запрещается возвращать уплотнитель в ЛПУ; не допускается использование пробирок с отбитыми краями.

5.12. Освобождение контейнера проводится работником лаборатории. Контейнеры дезинфицируют 2-кратным протиранием дезинфицирующим раствором с интервалом 15 минут или погружением в дезинфицирующий раствор.

5.13. Штативы дезинфицируют в лабораториях погружением в дезинфицирующий раствор.

5.14. Возврат штативов, емкостей из лаборатории осуществляется только после дезинфекции, целесообразно иметь обменный фонд. Возврат пробирок осуществляется только после дезинфекции и стерилизации. Такие же требования предъявляются к доставке стекол с мазками для исследования на гонорею, малярию, гистологию, грибки. Запрещается заворачивать мазки в направления во избежание инфицирования персонала.

Читайте также:  Метод лабораторной диагностики вирусных гепатитов

5.15. В лаборатории должны быть созданы условия для обработки рук лицам, доставившим материал.

6. ТРЕБОВАНИЯ К ОРГАНИЗАЦИИ РАБОЧЕГО МЕСТА ЛАБОРАНТА ДЛЯ ЗАБОРА КРОВИ В ЛАБОРАТОРИИ

6.1. Взятие крови у пациента в лаборатории проводится в специально отведенном помещении с раковиной для мытья рук.

6.2. Рабочий стол лаборанта должен быть условно разделен на «чистую» и «грязную» половины и оснащен:

6.2.1. Дезинфицирующими средствами (3% хлорамин, 6% перекись водорода либо накопительными растворами: 4% перекись водорода с 0,5% моющим средством и другими). Дезинфицирующие растворы должны находиться в емкостях с этикетками и легко открывающимися крышками, в количестве, достаточном на одну рабочую смену;

6.2.2. 70-градусным спиртом в устойчивой подставке;

6.2.3. Биксом со стерильными ватными шариками в упаковках (мешочки из двуслойной бязи или крафт-бумаги, указанной в ОСТе 42-21-2-85) по 15-20 штук в каждой упаковке. Невскрытая упаковка сохраняет стерильность в течение 3 суток с момента стерилизации или до 20 суток в стерилизационных коробах с фильтром или крепированной бумаги «Стерикинг» (Финляндия). Вскрытая упаковка должна быть использована в течение 1-й смены;

6.2.4. Стерильными капиллярами (по 5-10 штук в упаковках) — дата стерилизации указывается на каждой упаковке;

6.2.5. Стерильными копьями (копья можно стерилизовать в конических пробирках по 5-10 штук, острием вниз, либо в чашках Петри по 7-10 штук); предпочтительно использование разовых стерильных копий;

6.2.6. Стерильными пинцетами не менее 2-3 на каждого лаборанта. Во время работы лаборанта пинцет хранится в сухой стерильной пробирке или в растворе дез. средства;

6.2.7. Стерильными грушами в расчете на максимальное количество больных;

6.2.8. Стерильными предметными часовыми стеклами; либо разовыми и стерильными пробирками или чашками, плашками;

6.2.9. Стерильными или чистыми перчатками в количестве, соответствующем числу пациентов;

6.2.10. Индивидуальным полотенцем, которое должно меняться ежедневно;

6.2.11. Емкостями для сброса отработанного материала с дез. растворами;

6.3. Не разрешается выкладывание отработанного материала, инструментов прямо непосредственно на поверхность стола.

На «чистой» половине помещаются упаковки со стерильными капиллярами, грушами, копьями, стеклами, мешочки со стерильными ватными тампонами, стерильные пинцеты, перчатки, 70-градусный спирт; на «грязной» — закрытые емкости с дез. растворами для сбора отработанного материала, пробирка для сбора копий, дез. растворы, емкость или целлофановый мешок для сбора перчаток.

7. ТРЕБОВАНИЯ К ОРГАНИЗАЦИИ ЗАБОРА КРОВИ НА ОТДЕЛЕНИЯХ СТАЦИОНАРА

7.1. Взятие крови на отделении должно проводиться в специально отведенном месте или у постели больного.

7.2. Для забора крови на отделении лаборант должен иметь укладку, которая должна быть удобной для переноса, легкой, закрытой, изготовленной из материала, подвергающегося дезинфекции.

7.3. «Переносная» укладка условно делится на «чистую» и «грязную» половины:

— на «чистой» половине необходимо иметь упаковки со стерильными капиллярами, грушами (в количестве, превышающем максимальный забор крови), со стерильными копьями, со стерильными стеклами, мешочками со стерильными ватными тампонами, упаковки не менее 2 стерильных пинцетов, перчатки одноразового назначения, предпочтительно стерильные (по количеству пациентов);

— на «грязной» — закрытые емкости для сбора отработанного материала с дез. раствором, дез. растворы, мешок для сбора перчаток (любой, разового назначения).

8. ТРЕБОВАНИЯ К ОРГАНИЗАЦИИ ЗАБОРА КРОВИ НА ДОМУ

8.1. Для забора крови на дому необходима «переносная» укладка (предпочтительно бикс), оснащенная стерильными пакетами по числу вызовов на дом. В каждый пакет перед стерилизацией закладываются:

— копья, не менее 2-3 штук (в пробирке);

— капилляры (2-3 шт. в упаковке);

— стекла либо разовые пробирки, чашка Петри;

8.2. К каждому пакету прикладываются стерильные или чистые перчатки, упаковка со стерильными ватными шариками, спирт 70-градусный, чистое полотенце в пакете, полиэтиленовый мешок для сбора отработанного материала и грязных перчаток. Извлекать копья (скарификаторы), стерильные ватные тампоны следует только стерильным пинцетом. Стерильные лабораторные инструменты следует хранить в той же упаковке, в которой проводилась их стерилизация. Отработанные копья сбрасываются в ту же пробирку, в которой они находились.

9. ТРЕБОВАНИЯ К РЕЖИМУ ПРИ ВЗЯТИИ И ИССЛЕДОВАНИИ КРОВИ

9.1. При взятии крови место прокола обрабатывается тампонами, смоченными в 70-градусном этиловом спирте, двукратно. Первую каплю крови следует удалить.

9.2. Не допускается повторное взятие крови тем же капилляром в случае, если он имел контакт с плашкой.

9.3. Не разрешается выпуск крови из капилляра (доведение ее до метки), на палец (только на стерильный тампон или вату).

9.4. Не допускается очистка от крови кончика капилляра о ветошь, марлю, полотенце, выложенные непосредственно на поверхность стола, а только в емкость (чашка Петри, лоток и др.).

10. ПРОФИЛАКТИКА ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ИНФИЦИРОВАНИЯ

10.1. Медицинскому персоналу лаборатории следует избегать контакта кожи и слизистых оболочек с кровью и другими биологическими жидкостями.

10.2. Сотрудники лаборатории должны работать в медицинской одежде: халате, шапочке, сменной обуви.

10.3. Медицинская одежда хранится отдельно от верхней в индивидуальных шкафах. Смена ее должна осуществляться не менее 2 раз в неделю. Стирка спецодежды на дому категорически запрещается. При загрязнении медицинской одежды кровью или другими секретами ее немедленно снимают, предварительно обработав участок загрязнения дезинфицирующим раствором, а затем замачивают в нем.

10.4. При угрозе разбрызгивания крови и других биологических жидкостей (работа в центрифужной, моечной и др.) работать следует в масках, очках (щитках), клеенчатых фартуках.

10.5. Все манипуляции, при которых может произойти загрязнение рук кровью, сывороткой или другими биологическими жидкостями, следует проводить в резиновых перчатках; резиновые перчатки, снятые единожды, повторно, без предварительной дезинфекции, не используются из-за возможности загрязнения рук.

10.6. Все повреждения кожи на руках должны быть закрыты лейкопластырем или напальчником.

10.7. Медработники должны соблюдать меры предосторожности при выполнении манипуляций, дез. обработке, очистке режущего, колющего инструментария (иглы, копья, ножницы и др.). Открывая бутылки, флаконы, пробирки с кровью или сывороткой, следует избегать уколов и порезов перчаток.

10.8. Все манипуляции с кровью выполняются при помощи автоматических пипеток, дозаторов, а при их отсутствии — резиновыми грушами.

10.9. Запрещается пипетирование ртом.

10.10. В каждой лаборатории должны быть укомплектованы аптечки на случай аварии для оказания первой медицинской помощи:

— при загрязнении рук кровью их немедленно моют двукратно теплой проточной водой с мылом, обрабатывают тампоном, смоченным 3% раствором хлорамина, 70-градусным спиртом не менее 2 минут или другими средствами и насухо вытирают индивидуальным полотенцем;

— при повреждении рук в перчатках их обрабатывают и снимают, тщательно моют под проточной водой с мылом, выдавливают кровь из ранки и обрабатывают их 70-градусным спиртом, смазав ранку йодом.

10.11. При попадании крови на слизистую глаз их следует сразу же промыть водой и закапать 1% раствор альбуцида; при попадании на слизистую носа — 1% протаргола, на слизистую рта — прополоскать 70-градусным спиртом или слабым раствором перманганата калия.

10.12. Обо всех случаях повреждения кожи и слизистых (укол, порез) немедленно извещается заведующий лабораторией для учета в специальном журнале и принятия срочных мер (в том числе вакцинация по эпидпоказаниям против гепатита В, экстренная химиопрофилактика ВИЧ-инфекции и др.).

10.13. Разборку, мойку, прополаскивания медицинского инструментария, пипеток, груш, лабораторной посуды, приборов и аппаратов, которые соприкасались с кровью или сывороткой, необходимо проводить после предварительной дезинфекции только в резиновых перчатках и прорезиненном фартуке.

10.14. Категорически запрещается пользоваться пробирками с отбитыми краями.

10.15. Поверхность рабочих столов в конце рабочего дня, а в случае загрязнения кровью — немедленно обрабатывается 3% раствором хлорамина или 6% раствором перекиси водорода с 0,5% моющего средства:

— если поверхность загрязнена кровью или сывороткой, процедура выполняется дважды: немедленно и с интервалом 15 минут, с последующим мытьем.

10.16. При аварии (разбрызгивании биоматериала) помещение, где произошла авария, тщательно дезинфицируют;

— объем и вид дезинфекции определяет руководитель лаборатории или лицо, ответственное за соблюдение противоэпидемического режима;

— если авария произошла на центрифуге, то дезинфекционные мероприятия начинают проводить не ранее чем через 30-40 минут после осаждения аэрозоля;

— после дезинфекции проводится внеочередная генеральная уборка;

— продолжение работы возможно только после смены медицинской одежды, полотенец, ветоши;

— все случаи аварий и принятые в связи с этим меры подлежат обязательной регистрации во внутрилабораторном журнале по технике безопасности;

— берут на учет сотрудников, работающих в помещении в момент аварии и в период ее устранения;

— при привлечении технического и другого немедицинского персонала для наладки аппаратуры или устранения поломок, сбоев в технологическом процессе заведующий лабораторией или старший лаборант проводит инструктаж по профилактике профессионального инфицирования и обеспечивает немедицинский персонал необходимой медицинской одеждой.

10.17. Не следует проводить никаких парентеральных и лечебно-диагностических процедур медицинскому персоналу в тех помещениях, которые предназначены для обслуживания больных.

10.17. Заполнение учетной и отчетной документации должно вестись на чистом столе.

10.18. Нельзя принимать пищу, курить и пользоваться косметикой на рабочих местах. Запрещается хранение в карманах медицинских халатов ваты, бинтов, лейкопластыря, предметов личной гигиены (помады, пудры, сигарет и т.д.).

11. ТРЕБОВАНИЯ К ДЕЗИНФЕКЦИИ ЛАБОРАТОРНОГО ИНСТРУМЕНТАРИЯ, ПОСУДЫ, СПЕЦОДЕЖДЫ, БИОМАТЕРИАЛА, ОБОРУДОВАНИЯ

11.1. Лабораторные инструменты, иглы, капилляры, предметные стекла, меланжеры, счетные камеры, резиновые груши, баллоны, лабораторная посуда и т.д. после каждого использования должны подвергаться дезинфекции в соответствии с режимами, приведенными в таблице 1. Поверхности в помещениях лаборатории обрабатывают в соответствии с режимами, приведенными в таблице 2. В качестве средств и методов дезинфекции, предстерилизационной очистки и стерилизации используют только разрешенные в установленном порядке в Российской Федерации.

11.2. Выбранные методы и дезинфицирующие средства, предназначенные для дезинфекции лабораторного инструментария, должны обладать активностью в отношении вирусов (включая ВИЧ и возбудителей парентеральных вирусных гепатитов), если не требуется применение режимов обеззараживания в отношении более устойчивых во внешней среде микроорганизмов. При выборе средств следует учитывать рекомендации изготовителей изделий, касающиеся воздействия конкретных средств (из числа разрешенных в нашей стране для данной цели) на материалы этих изделий. При проведении дезинфекции, предстерилизационной очистки и стерилизации допускается использование только того оборудования (установки, моечные машины, стерилизаторы и др.), которое разрешено в установленном порядке к промышленному выпуску и применению (в случае импортного оборудования — разрешенного к применению) в Российской Федерации.

11.3. Емкости с растворами дезинфицирующих, моющих и стерилизующих средств должны быть снабжены крышками, иметь четкие надписи с указанием названия средства, его концентрации, назначения, даты приготовления (для готовых к применению средств, разрешенных для многократного использования, указывают дату начала использования средства).

11.4. Одноразовый лабораторный инструментарий после использования подвергается обеззараживанию с последующей утилизацией в установленном порядке. Повторное использование одноразовых инструментов категорически запрещается.

11.5. Все виды лабораторного инструментария, которые непосредственно не соприкасаются с исследуемым лабораторным материалом, также подлежат обеззараживанию по окончании рабочей смены.

11.6. При применении физических методов дезинфекции: кипячением, горячим воздухом, а также при обеззараживании дезинфицирующими средствами, способными фиксировать органические загрязнения на поверхности и в каналах изделий, перед дезинфекцией требуется первичная очистка инструментария водопроводной водой либо раствором моющего средства с соблюдением противоэпидемических мер.

11.7. Промывные воды, образовавшиеся при первичной очистке изделий, обеззараживаются по следующим режимам:

— кипячением в течение 30 минут;

— добавлением одним из следующих дезинфицирующих средств: сухая хлорная известь из расчета 200 г на 1 литр — экспозиция 1 час, гипохлорит кальция 100 г на 1 литр — экспозиция 1 час, нейтральный гипохлорит кальция (НГК) 200 г на 1 литр — 60 минут.

11.8. По окончании дезинфекционной выдержки все лабораторные изделия промываются проточной водой. Оставшиеся загрязнения тщательно отмывают с помощью ершей, щеток, салфеток марлевых или бязевых и др.

11.9. После дезинфекции лабораторные изделия, посуда используются по назначению или (при наличии показаний) подвергаются дальнейшей предстерилизационной очистке и стерилизации.

12. ТРЕБОВАНИЯ К ПРЕДСТЕРИЛИЗАЦИОННОЙ ОЧИСТКЕ И СТЕРИЛИЗАЦИИ

12.1. Стерилизации подлежат все изделия, применяемые в лабораторной практике, если они соприкасаются с раневой поверхностью, контактируют с кровью в организме пациента или вводимой в него, инъекционными препаратами, а также изделия, которые в процессе эксплуатации контактируют со слизистой оболочкой и могут вызвать ее повреждение.

12.2. Изделия многократного применения, подлежащие стерилизации, перед стерилизацией подвергают предстерилизационной очистке. Предстерилизационную очистку проводят с целью удаления с изделий белковых, жировых и механических загрязнений, а также остатков лекарственных препаратов.

12.3. Лабораторные инструменты подвергаются предстерилизационной очистке и стерилизации перед применением в соответствии с режимами, приведенными в таблицах 3-5.

1. Объект обеззараживания — изделия медицинского назначения из металла, стекла, резины, полимеров.

2. При применении дезинфицирующих средств, отмеченных знаком , процесс дезинфекции изделий медицинского назначения может быть совмещен с их предстерилизационной очисткой при условии мытья изделий в моюще-дезинфицирующем растворе после экспозиционной выдержки с помощью ерша, щетки, тампона. При применении средства «Виркон» замачивание изделий в его 2% рабочем растворе проводят после предварительной очистки изделий от видимых загрязнений в 0,5% растворе этого же средства.

3. При применении дезинфицирующих средств, отмеченных знаком , перед дезинфекцией, при наличии на изделиях видимых загрязнений, их удаляют с наружной поверхности с помощью тканевых салфеток, изделия промывают в емкости с водой. Промывные воды, использованные салфетки и емкости для промывания дезинфицируют кипячением или одним из дезинфицирующих средств по режимам, рекомендованным при вирусных гепатитах.

1. Дезинфицирующие средства со знаком обладают дополнительно моющими свойствами.

2. Посуда из-под выделений обеззараживается дезинфицирующими средствами по режимам, указанным в таблице 1.

3. Генеральная уборка (санитарный день) проводится 1 раз в месяц дезинфицирующими средствами по режимам согласно таблице 2 и другими дезинфицирующими препаратами, разрешенными для этих целей в установленном порядке.

1. Для приготовления моющего комплекса с перекисью водорода может использоваться технический пергидроль марки «А» и «Б».

2. Температура моющих растворов в процессе мойки не поддерживается.

3. Моющие растворы, содержащие СМС «Лотос», а также натрий двууглекислый (питьевую соду), могут использоваться до 6 раз в течение рабочей смены.

4. При применении растворов моющих средств («Лотос», «Лотос-автомат»), а также натрия двууглекислого (питьевой соды) мойку изделий после кипячения осуществляют в процессе их споласкивания проточной питьевой водой.

5. При применении моющих растворов, отмеченных знаком , процесс предстерилизационной очистки может быть совмещен с дезинфекцией.

Время стерилизационной выдержки, соответствующее значению температуры стерилизации с учетом предельных отклонений температуры в загруженной стерилизационной камере, указано в паспорте на конкретную модель стерилизатора.

Приведено время стерилизационной выдержки, которое рекомендовано в паровых стерилизаторах нового поколения с предельным отклонением температуры в стерилизационной камере +/-1°С от номинального значения.

Конкретные виды зарубежных упаковочных материалов однократного применения, рекомендованные для стерилизации паровым методом, указаны в методических документах по их применению. Сроки сохранения стерильности изделий, простерилизованных в различных видах упаковки, приведены в таблице 7. Кратность использования пергамента, бумаги мешочной непропитанной, бумаги мешочной влагопрочной и бумаги крепированной — 2 раза, бумаги упаковочной высокопрочной — 3 раза.

Приведено время стерилизационной выдержки для воздушных стерилизаторов нового поколения с предельными отклонениями температуры в стерилизационной камере +/-3°С от номинального значения.

Конкретные виды зарубежных упаковочных материалов однократного применения, рекомендованные для стерилизации воздушным методом, указаны в методических документах по применению упаковок. Сроки сохранения стерильности изделий, простерилизованных в различных видах упаковочных материалов, приведены в таблице 7. Кратность использования бумаги мешочной влагопрочной, бумаги крепированной — 2 раза, бумаги упаковочной высокопрочной — 3 раза. Изделия, простерилизованные без упаковки, помещают на стерильный стол и используют в течение одной рабочей смены.

Читайте также:  Национальные рекомендации по хроническим вирусным гепатитам

Концентрация растворов средств Бианол, Лизоформин 3000, Колд Спор, Гигасепт ФФ приведена по препарату, растворов остальных средств — по действующему веществу.

Допускается использование только медицинской перекиси водорода.

Температура раствора в момент погружения в него изделий; в процессе стерилизации указанную температуру не поддерживают.

Электрохимически активированные растворы с рН от 2,0 до 8,4 в зависимости от типа анолита («кислый анолит», «нейтральный анолит», «нейтральный анолит АНК»), вырабатываемые в установках ЭХА-30, СТЭЛ-МТ-1, СТЭЛ-МТ-2, СТЭЛ-4Н-60-01, СТЭЛ-4Н-60-02, СТЭЛ-10АК-120-01, СТЭЛ-1ОН-120-01. Анолиты используют без разведения. Конкретные режимы стерилизации приведены в методических указаниях по применению растворов, вырабатываемых конкретными установками.

13. ПЕРЕЧЕНЬ ИНСТРУКТИВНО-МЕТОДИЧЕСКИХ ДОКУМЕНТОВ, ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ПРИ СОСТАВЛЕНИИ ДАННЫХ ПРАВИЛ

1. Закон РФ «О санитарно-эпидемиологическом благополучии населения» от 30.03.1999.

2. ОСТ 42-21-2-85 «Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения. Методы, средства и режимы».

3. Санитарные правила по безопасности работы с микроорганизмами 1-1V групп патогенности (СП 1.2 006.-93).

4. Приказ МЗ СССР N 408 от 1989 г. «О мерах по снижению заболеваемости вирусными гепатитами в стране».

5. Инструкция «По мерам профилактики распространения инфекционных заболеваний при работе в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений», утвержденная 17.01.1991 МЗ СССР.

6. Санитарные нормы и правила устройства, оборудования и эксплуатации больниц, родильных домов и других лечебных стационаров N 5179.90.

7. Приказ МЗ и МП РФ и ГК СЭН РФ N 226/79 от 03.06.1996 «О введении профилактических прививок против гепатита».

8. Методические указания по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации изделий медицинского назначения (МЗ РФ N МУ-287-113 от 30.12.1998).

9. Методические указания по применению медицинских упаковочных материалов «СТЕРИКИНГ» фирмы «Випак Медикал» (Финляндия) (N МУ-157-113 от 10.08.1998).

10. Инструкция по применению индикаторов стерилизации одноразового применения ИС-120, ИС-132, ИС-160, ИС-180 (154.004.98ИП от 18.02.1998).

11. Правила сбора, хранения и удаления отходов лечебно-профилактических учреждений. СанПиН 2.1.7.728-99 МЗ РФ.

12. Распоряжение Комитета по здравоохранению Администрации Санкт-Петербурга и Центра госсанэпиднадзора в Санкт-Петербурге N 149-р/15 от 27.04.2000 «О мерах по усилению борьбы с распространением ВИЧ-инфекции в Санкт-Петербурге».

источник

Профилактика профессионального инфицирования медицинских работников вирусным гепатитом и ВИЧ-инфекцией

Рубрика: 11. Прочие отрасли медицины и здравоохранения

Статья просмотрена: 21409 раз

Акимова Г. М. Профилактика профессионального инфицирования медицинских работников вирусным гепатитом и ВИЧ-инфекцией [Текст] // Медицина и здравоохранение: материалы II Междунар. науч. конф. (г. Уфа, май 2014 г.). — Уфа: Лето, 2014. — С. 70-72. — URL https://moluch.ru/conf/med/archive/119/5513/ (дата обращения: 29.07.2019).

Цель исследований: определить риск инфицирования медицинских работников вирусным гепатитом и ВИЧ-инфекцией.

Риск инфицирования многократно возрастает при несоблюдении персоналом мер индивидуальной защиты, в связи с этим в сознании медицинских работников необходимо формировать эпидемическую настороженность ко всем пациентам, как к возможным источникам гемоконтактных инфекций.

Особенность эпидемиологической ситуации современного мира — болезни, возбудители которых передаются через кровь.

Персонал должен знать свои права на безопасные условия труда, на необходимость иммунизации против гепатита В до начала медицинской практики в учреждении. Необходимо избегать любых манипуляций с использованными шприцами и иглами после проведения инъекций (например, не накрывать иглу колпачком, удаление иглы из шприца, ополаскивание, замачивание).

Заражение вирусными гепатитами, ВИЧ-инфекцией возможно при элементарных манипуляциях (взятие крови, инъекции), при более сложных (венесекция и катетеризация сосудов) и ответственных процедурах (биопсия и трансплантация тканей, органов, костного мозга). Опасность заражения существует при трансфузиях крови и ее компонентов, поскольку в современных условиях кровь проверяется лишь на ограниченное число инфекций (ВИЧ-инфекция, гепатиты B, C, сифилис). Обеззараживание рук медицинского персонала (гигиеническое мытье, гигиеническая обработка, хирургическая обработка) и кожных покровов пациентов (обработка операционного, инъекционного полей, локтевых сгибов доноров) являются важнейшими мероприятиями в системе профилактики инфицирования медицинского персонала и пациентов. Обработка рук медицинского персонала обеспечивает удаление грязи, уничтожение транзиторной микрофлоры и снижение численности резидентной микрофлоры. Цель обработки кожных покровов пациентов — предотвращение проникновения резидентной и транзиторной микрофлоры с поверхности кожных покровов в низлежащие слои кожи, ткани, внутренние полости организма, периферический и магистральный кровоток.

Задачи исследований: определить меры предосторожности при работе с инфицированным материалом.

1. Для предупреждения травм иглами и другим острым инструментарием:

— не сгибайте, не ломайте и не надевайте на иглы колпачки, выбрасывайте сразу со шприцом в пластмассовый контейнер

— кладите одноразовый и колющие инструменты в контейнер сразу, после использования.

— избегайте ненужных манипуляций с зараженными инструментами.

2. Для предупреждения контакта открытых ран и слизистых оболочек:

— закрывайте поврежденные участки кожи и открытые раны непромокаемыми повязками;

— мойте руки после контакта с кровью или жидкими выделениями организма;

— образцы крови и жидкие среды организма помещайте в контейнеры;

— надевайте защитные очки при работе с образцом крови;

— испачканное кровью белье следует транспортировать в герметичных мешках или же в свернутом виде — грязной стороной внутрь;

— надевайте защитные очки, если возможен контакт с брызгами крови (во время больших хирургических операциях или стоматологических процедурах);

— всасывание ртом должно быть заменено механическими пипетками во всех лабораторных, имеющих дело с кровью и жидкими выделениями человека.

3. Передача через зараженные инструменты:

— используемые инструменты, после каждого использования должны пройти дезинфекцию, предстерилизационную очистку и стерилизацию;

— заменяйте инъекции пероральным (через рот) путем лекарственных средств;

Переливание инфицированной крови:

— любая кровь для переливания не должна содержать антител ВИЧ. В тех случаях, когда тестирование невозможно, переливание крови следует производить только в случае крайней необходимости;

— по возможности, заменяйте переливание крови переливанием других подходящих для внутривенного введения жидкостей;

— у пациентов, страдающих анемией, следует выяснить причину и лечить ее. Нахождение крови и жидких сред организма на поверхности предметов (стола, пола):

— удаляйте кровь или жидкие среды организма с помощью бумажных или тканевых полотенец, не испачкав руки;

— мойте загрязненные поверхности предметов горячим моющим раствором;

— продезинфицируйте поверхности этих предметов.

— жидкости (кровь) утилизируют в канализацию или выгребную яму только после дезинфекции (замачивают в 3 % растворе хлорамина в течение 60 минут);

— твердые отходы, такие как пропитанные кровью перевязочный материал, санитарные подстилки и прокладки, плацента или взятые для биопсии образцы различных тканей, должны сжигаться или закапываться с соблюдением мер предосторожности;

Опасность инфицирования вирусным гепатитом и ВИЧ — инфекцией зависит от степени нарушения целостности кожных и слизистых покровов. Риск заражения тем больше, чем обширнее и глубже кожный контакт (уколы и порезы). При нарушении целостности тканей опасность заражения медперсонала составляет около 0,3 %; при попадании крови, инфицированной ВИЧ, на слизистые оболочки риск ещё ниже — 0,09 %, а при контакте неповреждённой кожи с кровью риск практически равен нулю. Укол иглой после взятия крови из вены больного опаснее укола, чем после внутримышечной инъекции. Риск также зависит от стадии болезни: в острой стадии ВИЧ-инфекции, а также на поздних стадиях (СПИД), когда уровень вирусемии высок, опасность наибольшая. Если больной получает антиретровирусную терапию, то важна её длительность, так как на фоне лечения идёт постепенное уменьшение вирусной нагрузки (содержание вируса в крови); риск заражения от такого пациента снижается. В отдельных случаях для проведения постконтактной профилактики важно наличие у больного резистентных штаммов ВИЧ. Факторы, от которых зависит риск заражения медицинского персонала ВИЧ-инфекцией:

— степень нарушения целостности тканей;

— степень контаминации инструмента;

— стадия ВИЧ-инфекции у пациента;

— получение больным антиретровирусной терапии;

— наличие у больного резистентных штаммов ВИЧ.

Самарская область на протяжении последних десяти лет является одним из двух регионов России (наряду с Иркутской областью), имеющих самые высокие показатели пораженности населения ВИЧ-инфекцией.

По данным ГБУЗ «Самарский областной центр по профилактике и борьбе со СПИД» в 2012 году были поставлены на диспансерный учет 89 медицинских работников, пострадавших в аварийных ситуациях при оказании медицинской помощи ВИЧ — инфицированным пациентам (в 2011году — 62).Аварийные ситуации были зарегистрированы в 49 медицинских организациях Самарской области, в том числе в ГКБ № 5 г.о.Тольятти — 15, Станции скорой помощи г. о. Самара — 7, ГБ№ 8 г.о. Самара — 6,Клиниках Сам ГМУ -4, ГКБ№ 1 им. Н. И. Пирогова -4, Станции скорой помощи г. о.Тольятти-4,ГКБ№ 2 им. Н. А. Семашко -4, ГДКБ-4. Среди пострадавших 40,4 % врачей (акушеры — гинекологи — 19,4 %,хирурги-44,4 %, стоматологи -16,6 %, анестезиологи — реаниматологи — 11,1 %) и 51,7 % средних медицинских работников (95,6 % медицинских сестер и 4,4 % лаборантов).В 28,1 % случаев аварийные ситуации произошли при оказании медицинской помощи в хирургических отделениях стационаров, 13,5 % — в роддомах, 12,4 % — в отделениях реанимации и интенсивной терапии, по 6,7 % — в инфекционных отделениях, противотуберкулезных диспансерах, стоматологических кабинетах, 4,5 % — в детских отделениях больниц. Стаж работы до 10 лет имели 46 % пострадавших медицинских работников, 30,3 % от 11 до 20 лет, 23,6 % — более 20 лет. Следует отметить, что 41,6 % аварийных ситуаций возникли при выполнении инъекций, катетеризации вен, заборе крови из вены, 25,8 % — при оперативных вмешательствах, 8,8 % — при разборке и мойке медицинского инструментария. Таким образом, причинами травм в 49,4 % случаев стали укол инъекционной иглой, 16,8 % — попадание биоматериала на слизистые, 8,9 % — попадание биоматериала на неповрежденную кожу, 11,2 % — укол шовной иглой. Постконтактную профилактику антиретровирусными препаратами получили 75 человек (84,3 %), в 12 случаях (13,5 %) таковая не проводилась, в том числе по причине отказа медработников — 2, позднего обращения — 2

В 2013 году был доказан путь передачи ВИЧ — инфицирования медработнику в хирургическом отделении по Самарской области.

В ГБУЗ СПО «БЦРБ» были зарегистрированы 3 случая заражения ВИЧ — инфекцией: один в хирургическом отделении, один в инфекционном отделении и в педиатрии.

Выводы: основными причинами аварийных ситуаций являются отсутствие должной настороженности к пациенту как к вероятному источнику инфекции, не достаточная обеспеченность современными медицинскими инструментами, средствами защиты, контейнерами для сбора использованного медицинского инструментария, а так же неиспользование средств индивидуальной защиты. В медицинских организациях не в полном объеме выполняется комплекс мероприятий, предписанный СП 3.1.5.2826 -10 «Профилактика ВИЧ — инфекции» при аварийных ситуациях: постконтактная профилактика начинается более чем через два часа из-за отсутствия антиретровирусных препаратов; не проводится обследование на ВИЧ — инфекцию пациентов с неизвестным ВИЧ — статусом при наличии экспресс — тестов, что не позволяет оперативно решать вопрос о необходимости назначения антиретровирусных препаратов, образцы крови пациента — потенциального источника инфекции и пострадавшего медработника для стандартного тестирования на ВИЧ в ИФА и их хранения в течение 12 месяцев после аварийной ситуации в ГБУЗ «Самарский областной центр по профилактике и борьбе со СПИД» не направляются, акты заполняются не брежно, без указания медицинских организаций, отделения, из акта неясна причинно — следственная связь между выполнением профессиональных обязанностей и возникшей аварийной ситуацией, отсутствуют сведения о пациенте.

Предложения: медицинские работники нуждаются в проведении более тщательных профосмотров с использованием расширенного спектра маркеров вирусного гепатита В. Направлять медицинских работников, получивших травму при оказании медицинской помощи ВИЧ — инфицированным пациентам в территориальные центры СПИД в обязательном порядке для достоверного учета аварийных ситуаций и обеспечения диспансерного наблюдения. Для уменьшения опасности заражения медицинского персонала в лечебно-профилактических учреждениях рекомендовано:

— регулярное информирование и обучение медицинских работников методам профилактики при контакте с потенциально инфицированным материалом;

— недопущение к работе с больными любого профиля, биоматериалами и загрязненными ими предметами медицинских и технических работников, имеющих повреждения кожи (раны, трещины, мокнущие дерматиты);

— обеспечение всех рабочих мест дезинфицирующими растворами и стандартной аптечкой для экстренной профилактики;

— правильный забор и обработка инфицированного материала, включая различные биологические жидкости, использованные инструменты и грязное бельё;

— использование индивидуальных средств защиты: перчаток, очков, масок, фартуков и другой защитной одежды;

— проведение вакцинации от гепатита В всех медицинских работников, в первую очередь относящихся к группе профессионального риска;

— регулярный скрининг всего персонала на вирусы гепатита и ВИЧ (до начала работы и в её процессе);

— строгий административный контроль над выполнением профилактической программы.

Заключение: в настоящее время наиболее важное значение имеет тот факт, что заболевания профессиональным вирусным гепатитом и ВИЧ — инфекцией можно предотвратить. Улучшение организации труда за последние 10–15 лет и особенно внедрение вакцинации привели к тому, что вирусный гепатит превратился в инфекцию, которой заболевают не только по причине непреодолимого профессионального риска, но и из-за собственной неосторожности или недостаточной защиты работников. Работы по разработке вакцины против вирусного гепатита С ведутся, но они еще далеки от завершения.

  1. О мерах по совершенствованию профилактики парентеральных вирусных гепатитах // Фармацевтический вестник. 2000. — № 5 — С. 14–16.
  2. Парентеральные гепатиты // Журнал «Медицина». 1991. — № 4 — С.17
  3. Профилактика парентеральных гепатитов // Бюллетень «Вакцинация». 1997. — № 10 — С.15
  4. Письмо Заместителя министра Самарской области от 09.94.2013.№ 30.-05/304 «О профилактике профессионального инфицирования ВИЧ медицинских работников Самарской области»
  5. http://medi.ru/doc/8591113.htm. Профилактика ВИЧ-инфекции, гепатитов В и С у медицинских работников (MEDI.RU
  6. http://ilive.com.ua/health/profilaktika-vich-infektsii-i-gepatita-s_24318i160.htm.

Для медицинских работников и пациентов, в отношении которых осуществляются инвазивные процедуры с нарушением целостности кожных покровов и

Рис. 2. Инфицированность вирусным гепатитом С медсестер различных отделений медицинских учреждений г. Бишкек.

Цель исследований: определить риск инфицирования медицинских работников вирусным гепатитом и ВИЧ-инфекцией. Акушерские и перинатальные исходы у женщин с вирусным. Вопрос — ответ.

Профилактика профессионального инфицирования медицинских работников вирусным гепатитом и ВИЧ-инфекцией. — всасывание ртом должно быть заменено механическими пипетками во всех лабораторных, имеющих дело с кровью и жидкими выделениями человека.

Профилактика профессионального инфицирования медицинских работников вирусным гепатитом и ВИЧ-инфекцией. В 2013 году был доказан путь передачи ВИЧ — инфицирования медработнику в хирургическом отделении по Самарской области.

Однако, известно, что именно эти доноры крови подвержены риску заражения

Антитела к вирусу гепатита С выявлены у 63/2500 (2,6 %) доноров крови.

Гемоконтактные вирусные инфекции у доноров крови в Российской Федерации и Свердловской области.

Профилактика профессионального инфицирования медицинских работников вирусным гепатитом и ВИЧ-инфекцией. Особенность эпидемиологической ситуации современного мира — болезни, возбудители которых передаются через кровь.

Группу контроля составили пациентки без вирусного гепатита.

[12], резкое увеличение концентрации Э3 есть результат стрессовой реакции организма матери и плода на вирусную инфекцию.

Хронический вирусный гепатит С у ВИЧ-инфицированных протекает в стертой форме, так как

Одна из особенностей НСV-инфекции – высокий риск развития ее хронической формы, а при

Характеризуя клинические проявления ХГ С у ко-инфицированных пациентов в таб.1.

Медицинские работники и лаборанты могут заразиться при выполнении служебных

при попадании на неповрежденную кожу инфицированных биологических жидкостей (например, крови).

Гемоконтактные вирусные инфекции у доноров крови в Российской.

источник