Описторхоз метод компрессорного исследования

1.1 Описторхоз рыб и его распространение на территории Республики Казахстан

1.3 Возбудитель описторхоза рыб и его устойчивость к ряду физических и химических факторов

2 Собственные исследования

2.1 Объекты, методы и материалы

2.1.1 Методы паразитологических исследований

2.1.2 Органолептические методы исследования

2.1.3 Физико-химические методы исследования

2.1.4 Методы определения химического состава мяса рыбы

2.1.5 Санитарно-микробиологические методы исследования

2.2 Методы обезвреживания рыбы, пораженной описторхозом

3. Исследования по сравнительной оценке методов индикации, определения жизнеспособности и дифференциальной диагностики метацеркарий o. felineus

Список использованной литературы

Рыба, являясь ценным пищевым продуктом, может стать причиной заболевания человека серьезными гельминтозами. На территории Казахстана регистрируется целый ряд паразитарных болезней, возбудители которых передаются человеку через рыбу. Наиболее тяжелым гельминтозом из числа трематодозов, распространенных на территории Казахстана, является описторхоз.

Описторхоз — природно-очаговое, тяжелое гельминтозное заболевание человека и плотоядных животных. Половозрелые описторхисы паразитируют в желчных ходах, желчном пузыре и поджелудочной железе, вызывая тяжелое поражение печени.

Заражение человека и плотоядных происходит только при употреблении в пищу сырой (талой, мороженой, слабопросоленной) и недожаренной или непроваренной рыбы.

Метацеркарии описторхиса встречаются в мышечной ткани озерно-карповых. Озерные (карась, озерный гольян и др.), а также речные (сырть, усач и др.) карповые не заражаются даже в условиях эксперимента.

описторхоз рыба ветеринарная экспертиза

1.1 Описторхоз рыб и его распространение на территории Республики Казахстан

Своеобразие природных условий Республики Казахстан, особенности гидрологического режима обеспечивают стойкое функционирование очагов описторхоза [1]. Это обусловлено значительной заражённостью рыб личинками возбудителя, большим удельным весом рыб семейства карповых (карп, лещ, карась, язь, чебак, плотва, линь, сазан) в рационе питания населения Северного и Центрального Казахстана, низким уровнем знаний мер профилактики данного гельминтоза. Хотя ещё в 1929 году исследованиями экспедиции под руководством К.И. Скрябина было выявлено широкое распространение описторхоза в бассейне Иртыша, до настоящего времени сохраняется высокий уровень заражённости рыб (80,0 — 90,0%) личинками Opisthorchis felineus [2].

Высокая интенсивность распространения описторхозной инвазии в природном очаге и механизмы передачи описторхид человеку определяют для большинства жителей эндемичных регионов высокий риск и практически неизбежность неоднократных заражений паразитом с раннего детского возраста. Учитывая природно-очаговый характер инвазии с высокой степенью взаимоадаптации хозяина и паразита, заражение описторхисами чаще проходит клинически скрыто, а инвазия принимает персистирующий характер [3]. Многообразие и неспецифичность симптоматики описторхоза, трудности лабораторной диагностики приводят к тому, что больные безуспешно лечатся у пульмонологов, аллергологов и других специалистов [4]. Широкое распространение инвазии, продолжительность жизненного цикла паразитов (более 20 лет) в организме хозяина, многообразие вызываемых ими клинических проявлений, серьёзность осложнений и исходов (первичный рак печени), определяют актуальность изучения данной проблемы, необходимость поиска путей её решения [5].

В связи с бурной хозяйственной деятельностью человека, связанной с использованием водных ресурсов, загрязнением водоёмов органо-минеральными удобрениями, стоками животноводческих ферм, промышленных и коммунально-бытовых предприятий, пестицидами обработанных полей происходят заметные качественные и количественные изменения биоценозов, ихтиоценозов, неизбежно возникают паразитарные болезни рыб и гидробионтов, снижается численность ценных рыб и ухудшается эпизоотическая ситуация водоёмов. Причём именно речная рыба, наиболее часто употребляемая в пищу жителями континентальных стран, какой является Казахстан, бывает заражена личиночными формами паразитов, дефинитивным хозяином которых является человек. В этой связи необходимо провести районирование территории Республики Казахстан по уровням заболеваемости людей и заражённости рыб описторхозом с учётом видов и групп видов последних по эколого-географическому принципу.

В XXI веке назрела необходимость разработки методологии мониторинга для количественной оценки эпидемиологической значимости различных объектов окружающей среды в передаче инвазионного материала, распространения инвазий и для проведения чётко смоделированных профилактических мероприятий [3]. В то же время эпидемический процесс описторхоза не рассматривался с позиции соцэкологической концепции Б.Л. Черкасского (2004), который рассматривает его как сложную, многоуровневую систему, обеспечивающую сосуществование, воспроизведение и распространение паразитов среди населения. Исследования в этом направлении будут способствовать рационализации эпидемиологического надзора [1].

Развитие описторхоза происходит с обязательной сменой трех хозяев: окончательного, промежуточного и дополнительного. Окончательным хозяином, то есть организмом, в котором паразит достигает половой зрелости, для описторхоза является человек и некоторые виды домашних и диких плотоядных (кошка, собака, лисица, песец и др.).

Зрелый описторх — это плоский червь длиной от 0,2 до 1,2 см и шириной до 0,3 см. Местом его обитания в организме хозяина являются желчные ходы печени, желчный пузырь и протоки поджелудочной железы.

Взрослые особи паразита выделяют яйца, которые попадают вместе с испражнениями окончательного хозяина во внешнюю среду. Дальнейшее развитие паразит совершает последовательно в моллюсках (промежуточный хозяин) и карповых рыбах (дополнительный хозяин). Паразитирующая в рыбах личиночная форма гельминта (метацеркарий) инвазионна для окончательного хозяина. Зрелый метацеркарий имеет вид овальной, реже круглой цисты, внутри которой находится личинка. В Обь-Иртышском бассейне метацеркариями описторхов заражены следующие виды рыб: язь, елец (мегдым), плотва сибирская (чебак, сорога), линь, лещ, пескарь, гольян [6].

1.3 Возбудитель описторхоза рыб и его устойчивость к ряду физических и химических факторов

Метацеркарии в живой рыбе сохраняют свою жизнеспособность и инвазионность 5 — 8 лет. Весьма устойчивы они к воздействию низких температур. В замороженной рыбе личинки утрачивают жизнеспособность при — 40°C до 7 ч, при — 35°C до 14 ч, при — 28°C — 32 ч. Замораживание рыбы при более высокой температуре не гарантирует ее полного обеззараживания. Метацеркарии чувствительны к высоким температурам. После выделения из рыбы они погибают при 55°C в течение 5 мин. При засолке, если доля соли в рыбе равна 14%, а плотность тузлука составляет 1,2, метацеркарии выживают в мелкой рыбе от 10 до 21 суток (в зависимости от вида рыбы), а в крупной, длиной свыше 25 см (язи, лещи, лини), — до 40 суток.

Высокая устойчивость метацеркарий к воздействию факторов окружающей среды требует соблюдения режимов обеззараживания материала и объектов внешней среды (поверхностей, лабораторной посуды и пр.) в испытательных лабораториях, проводящих исследование рыбы и готовой рыбной продукции на паразитарную чистоту [5].

2 Собственные исследования

2.1 Объекты, методы и материалы

Объектами исследования являлись возбудитель Opisthorhis felineus, рыбы из семейства карповых — карась.

В озере Большое Узынкольского района было обнаружено шесть видов рыб (карп, ротан, гольян, карась, щука, окунь). Для исследования было отобрано два карася, три карпа. Для исследования были применены паразитологические, органолептические, физико-химические, санитарно-микробиологические методы.

2.1.1 Методы паразитологических исследований

Для обнаружения метацеркариев в тканях рыбы использовался компрессионный. Более точные результаты были получены при исследовании всей поверхностной мышечной ткани рыбы, которая тщательно отделялась вместе с подкожно-жировой клетчаткой от кожи и плавников.

Компрессионный метод. Для компрессионного исследования с целью экономии времени исследовали по 5 проб мышц с подкожной клетчаткой с обеих сторон рыбы: по 3 пробы из спинной и 2 из брюшной части мышц с каждой стороны. Каждая проба мышц бралась с площади 1 — 2 кв. см на глубине 2 — 3 мм.

Мышечную ткань, подлежащую исследованию, измельчали и порциями по 1 — 1,5 г раскладывали между двумя стеклами размером 6 — 8 х 12 — 15 см.

Готовые компрессионные препараты просматривали под бинокуляром при увеличении в 16 раз. Было найдено 4 метацеркария.

2.1.2 Органолептические методы исследования

У рыб пораженных метацеркариями описторхоза, внешние изменения отсутствовали.

2.1.3 Физико-химические методы исследования

Определение аммиака. Метод основан на взаимодействии аммиака, образующегося при порче рыбы, с соляной кислотой и появлении при этом облачка хлористого аммония.

Проведение анализа. В широкую пробирку наливали 2-3 см3 смеси Эбера, закрывали пробкой и встряхивали 2-3 раза. Вынимали пробку из пробирки и сразу же закрывали ее другой пробкой, через которую продета тонкая стеклянная палочка с загнутым концом. На конец палочки прикрепляли кусочек исследуемого мяса рыбы с температурой близкой к температуре воздуха в лаборатории в момент проведения анализа. Мясо вводили в пробирку так, чтобы не запачкать стенок пробирки и чтобы оно находилось на расстоянии 1-2 см от уровня жидкости.

Обработка результатов. Через несколько секунд в результате реакции аммиака с соляной кислотой должно образовываться облачко хлористого аммония. Интенсивность реакции оценивали следующим образом: — реакция отрицательная; + реакция слабоположительная (быстро исчезающее расплывчатое облачко); ++ реакция положительная (устойчивое облачко, проявляющееся через несколько секунд после внесения мяса в пробирку с реактивом); — Н-+ реакция резко положительная (облачко появляется сразу после внесения мяса в пробирку с реактивом).

Определение сероводорода. Метод основан на взаимодействии сероводорода, образующегося при порче рыбы, со свинцовой солью с появлением темного окрашивания вследствие образования сернистого свинца.

Проведение анализа. 15-25 г исследуемого фарша из спинной мускулатуры рыб помещали рыхлым слоем в бюксу вместимостью 40-50 см3. В бюксу подвешивали горизонтально над фаршем полоску плотной фильтровальной бумаги, на поверхность которой, обращенной к фаршу, нанесены 3-4 капли раствора свинцовой соли диаметром 2-3 мм. Расстояние между бумагой и поверхностью фарша 1 см. Бюксу закрывали сверху крышкой, зажимая фильтровальную бумагу между крышкой и корпусом бюксы, и оставляли стоять при комнатной температуре. Параллельно проводили контрольный анализ без навески продукта. По истечении 15 мин бумагу снимали и сравнивали ее окраску с окраской бумаги, смоченной тем же раствором свинцовой соли (контрольный анализ). При наличии в исследуемом образце свободного сероводорода происходит побурение или почернение участков бумаги, смоченных раствором свинцовой соли.

Интенсивность реакции обозначали следующим образом: — реакция отрицательная; ± следы окрашивания капли; + реакция слабоположительная; ++ реакция положительная (бурое окрашивание всей капли, более интенсивное по краям); +++ реакция резко положительная (интенсивное темно-бурое окрашивание всей капли).

Определение рН. К 5 г фарша мяса рыбы добавляли 50 мл дистиллированной воды и настаивали в течение 30 мин при периодическом перемешивании, затем пропускали через бумажный фильтр. Фильтрат использовали для исследования. Определяли рН рН-метром (Hanna рН 211). Учитывали, что у рыбы свежей фильтрат слегка опалесцирует (рН до 6,9); у рыбы сомнительной свежести фильтрат слегка мутноватый (рН 7,0-7,2); у рыбы несвежей фильтрат мутный, запах неприятный (рН 7,3 и выше).

Реакция на пероксидазу. В бактериологическую пробирку вносили 2 мл водной вытяжки (1: 100) из жаберной ткани и добавляли 5 капель 0,2% -ного спиртового раствора бензидина. Содержимое пробирки встряхивали, после чего вносили две капли 1% -ного раствора перекиси водорода.

2.1.4 Методы определения химического состава мяса рыбы

Для определения химического состава мяса рыб использовали пробы свежей снулой рыбы (из спинной мускулатуры карасей двухлеток), выловленных из озера Большое в районе Узынколь.

Определение массовой доли воды высушиванием при 100-105 С. Метод основан на испарении воды из продукта при тепловой обработке и определении изменении массы его взвешиванием.

Навеску спинной мускулатуры от 1,5 до 2 г, взвешенную с абсолютной погрешностью не более 0,001 г, помещали в чистую высушенную и тарированную бюксу со стеклянной палочкой, при помощи которой распределяли навеску продукта в бюксе ровным тонким слоем. Бюксу закрывали притертой крышкой, взвешивали на аналитических весах и высушивали в сушильном шкафу при 100-105 градусах до постоянной массы. Первое взвешивание проводили через З ч после начала сушки, последующие — через 30-40 мин. Постоянная масса считалась достигнутой, если разница между двумя взвешиваниями не превышала 0,001 г. В бюксу предварительно вносили 5-10 г песка и навеску продукта тщательно перемешивали.

Массовую долю Х3 в процентах вычисляли по формуле Х3 = (mrm2) 100/mi-m, где m — масса бюксы с песком г, т\ — масса бюксы с навеской и песком до высушивания, г; т2 — масса бюксы с навеской и песком после высушивания, г.

За окончательный результат принимали среднее арифметическое результатов двух параллельных определений, допускаемые расхождения между которыми не превышало 0,5%.

Определение массовой доли белка по Къельдалю. Метод основан на окислении органического вещества при сжигании его в серной кислоте в присутствии катализатора, отгонке образующегося аммиака паром, улавливании его раствором серной кислоты и определении содержания азота методом титрования.

Навеску мышечной ткани массой 0,6-1 г взвешивали с абсолютной погрешностью не более 0,0005 г, помещали в колбу для сжигания вместимостью 100 см, добавляли несколько мелких кристаллов медного купороса и приливали 10-20 см3 серной кислоты плотностью 1840 кг/м. Колбу осторожно нагревали в вытяжном шкафу, не допуская разбрызгивания жидкости. Когда содержимое колбы становилось однородным, прекращали нагревание, давали остыть, добавляли 0,5 г сернокислого калия и продолжали нагревание до тех пор, пока жидкость в колбе не становилась прозрачной, зеленовато-голубой окраски без бурого оттенка. По окончании сжигания содержимое колбы охлаждали и количественно переносили в отгонную колбу вместимостью 500-750 см. Приемником служила коническая колба вместимостью 250-300 см, с 25-30 см серной кислоты 0,05 моль/дм. Конец трубки холодильника погружали в раствор серной кислоты. В отгонную колбу осторожно, по стенкам, избегая смешивания жидкостей, приливали 50-70 см раствора гидроокиси натрия 330 г/дм, бросали кусочек лакмусовой бумаги и быстро закрывали ее пробкой, соединенной посредством каплеуловителя с холодильником, осторожно перемешивали содержимое и нагревали. Реакция жидкости в колбе должна быть резко щелочной. После закипания жидкости в колбе приемник опускали так, чтобы конец трубки холодильника находился на некотором расстоянии от поверхности раствора и продолжали отгонку до тех пор, пока не отгонится не менее 2/3 жидкости. Конец отгонки определяли по лакмусовой бумаги. Если отгонка закончена, капля дистиллята не должна вызывать посинения красной лакмусовой бумаги. По окончании отгонки конец трубки холодильника обмывали водой в приемную колбу и содержащийся в ней избыток серной кислоты оттитровывали раствором гидроокиси натрия 0,1 моль/дм в присутствии метилового красного. Одновременно проводили контрольный анализ без навески исследуемого образца.

2.1.5 Санитарно-микробиологические методы исследования

Использовали окрашивание раствором розоловой кислоты (аурина).

Кусочки мышц с личинками освобождали от жира. На ткань наносили капли розоловой кислоты, а через 2 мин — 0,1 н раствор гидроксида калия, равномерно распределяя его по ткани. Избыток жидкости с препарата снимали фильтровальной бумагой. Накрывали покровньм стеклом и микроскопировали. В этих опытах ткань рыбы окрашивалась в розовый цвет, живые личинки совершенно не окрашивались; мертвые личинки становились розовыми.

Определяли также путем высевания на мясопептонный агар в 2 параллельные чашки, определяли путем посева на среду Кесслер и последующим пересевом положительных проб на плотную дифференциальную среду Эндо; S. Aureus определяли путем посева на солевой рыбопептонный бульон и последующим пересевом на элективную среду — желточно-солевой агар; бактерии рода Salmonella определяли при посеве на среду обогащения (селенитовый бульон) с последующим пересевом в чашки Петри на плотную дифференциально-диагностическую среду — висмут-сульфит агар; бактерии L. monocytogenes определяли путем посева на селективную среду для предварительного обогащения (бульон Фразера) и последующего пересева на селективно-диагностическую среду ПАЛ.

Изучение микробиологических показателей показало, что из мяса рыбы с ИИ более 51 экз. выделена культура кишечной палочки серотипа О19 в одной пробе, а также отмечено превышение КМА-ФАнМ в одной пробе, что превышает допустимую норму по СанПиН 2.3.2.1078-01. Выделение условно-патогенных микроорганизмов из опытных проб рыб, пораженных описторхозом, по-видимому, можно объяснить их проникновением вместе с личинками во время их проникновения через кожный покров рыб, их миграции и в связи с этим ослаблением общей резистентности организма рыб.

2.2 Методы обезвреживания рыбы, пораженной описторхозом

Тепловые обработки являются самыми надежными:

варить рыбу в течение 15-20 минут с момента закипания воды, кусками не более 150г. (крупные экземпляры разрезать на куски);

жарить небольшими кусками весом не более 100 г. в распластанном виде кожицей вниз под крышкой на слабом огне в течение 20-25 минут с каждой стороны в обильном количестве масла;

солить мелкую рыбу в течение 14 дней, крупную (свыше 25 см) в течение 40 суток с добавлением 2 кг соли на 10 кг рыбы, или 200 г соли на 1 кг рыбы, а при плюсовой температуре из расчета 3,5 кг соли на 10 кг рыбы, но вялить 2-3 недели в зависимости от климатических условий (если дождливая погода — то вялить более 3-х недель) с последующим вымачиванием;

вялить по вкусу с предварительным посолом — в течение 2-х недель (вяление рыбы не является способом обезвреживания, если не выдержана технология засола);

горячее копчение при температуре 70-80 о в течение 2,5 ч, не рекомендуется солить и вялить язя в домашних условиях,

использованный разделочный инвентарь прокипятить в течение 3-5 минут и хорошо промыть с использованием моющих средств,

Личинки описторхид погибают при низкой температуре (минус 40 градусов в толще рыбы) в течение 7 часов; замораживание рыбы весом до 1 кг при температуре минус 28 градусов в течение 41 часа, при температуре минус 35 градусов в течение 10 часов. Поэтому домашний холодильник (минус 15 градусов — температура в морозильной камере) не убивает личинки паразита, поэтому не рекомендуется использовать камеры бытовых холодильников для обезвреживания даже мелкой рыбы.

Стоить отметить также, что большинство из исследованных нами рыб были инвазированы другими метацеркариями трематод, а именно: Paracaenogonimus ovatus (сем. Prohemistomidae), Bolbophoras confiisus (сем. Posthodiplostomidae).

Видовую принадлежность метацеркарий определяли по Сударикову В.Е. (2002). Их нужно дифференцировать исходя из анатомо-морфологических признаков, имея в виду, что до наших исследований не указывалось на наличие этих трематод. Принцип дифференциации указанных видов трематод основан на строении метацеркарий, размеру и форме цист, размеру и форме метацеркарий, освобожденных из цисты.

При обнаружении личинок в рыбе, в том числе при оценке эффективности ее обеззараживания, необходимо определять их жизнеспособность. Нами проведена сравнительная оценка ряда методов определения жизнеспособности личинок описторхисов.

По морфологическим признакам. Метацеркарий трематод, выделенных из тканей рыбы с помощью препаровальной иглы, помещали в каплю теплой воды или физраствора (37-40 градусов) на предметное стекло, накрывали покровным стеклом и исследовали под малым и большим увеличением микроскопа. Явное нарушение целости оболочек цист, грубые изменения внутреннего строения личинки, распад ее содержимого, разрушение экскреторного пузыря являются признаками гибели метацеркарий. Отсутствие указанных показателей свидетельствует о наличии живых личинок.

Метод механического воздействия. Как известно, метацеркарий обладают способностью совершать движения, находясь в цисте. Наличие даже самых слабых самостоятельных движений личинки свидетельствует о ее жизнеспособности. В этой связи движение личинок стимулировали слабым придавливанием метацеркарий покровным стеклом.

Метод химического воздействия. Вызвать движение личинок можно желчью животных или трипсином. На выделенных метацеркарий наносили несколько капель химического реагента так, чтобы полностью покрыть личинок. Для ускорения эксцистирования предметное (часовое) стекло с личинками слегка подогревали над пламенем спиртовки. Через несколько секунд под воздействием химического раздражителя начинался выход личинок из цист и их активное движение, что служило показателем жизнеспособности. Процесс эксцистирования личинок контролировали под микроскопом. При отсутствии в течение 30 мин всякой двигательной реакции следует учитывать как гибель личинок.

Проведенными исследованиями определено, что процент обнаружения метацеркарий в разных группах мышц неодинаков и составляет в среднеспинных мышцах — 51,52%, переднеспинных — 28,84%, верхнехвостовых 15,94%, грудных — 1,52%, брюшных — 1,33% и нижнехвостовых — 0,85%.

Установлено, что описторхоз рыб может протекать как моноинвазия, так и в смешанной форме (в большинстве случаев) с поражением метацеркариями других трематод, что необходимо учитывать при постановке диагноза на описторхоз.

При внешнем осмотре и патологоанатомическом исследовании рыб, пораженных описторхозом, клинических симптомов болезни и видимых патологических изменений в органах и тканях не отмечается, за исключением отставания в росте на 7,4% и уменьшении массы тела на 1,5% у рыб с высокой интенсивностью инвазии в сравнении со здоровой, а также наличия дегенеративных изменений в виде зернистой дистрофии небольших участков мышечной ткани с утраченной поперечной исчерченностью и разрастанием соединительной ткани вокруг метацеркарий.

Установлено, что по органолептическим и физико-химическим показателям мясо рыб, пораженных описторхозом, находится в пределах требований к доброкачественной рыбе и не зависит от ее интенсивности инвазии.

По результатам санитарно-микробиологического исследования мясо рыб с низкой и средней интенсивностью инвазии соответствуют требованиям существующих нормативов содержания микрофлоры, а при высокой интенсивности отмечено превышение уровня содержания кишечной палочки.

При изучении химического состава мяса рыб, пораженных описторхозом, выявлена зависимость, что чем выше интенсивность инвазии, тем больше содержание влаги в нем и тем меньше белка, жира, золы, кальция и фосфора и ниже калорийность, что указывает на более низкую энергетическую ценность, особенно мяса рыб с высокой ИИ (87,17 ккал) в сравнении со здоровой рыбой.

Проведенными исследованиями определена тенденция достоверного снижения относительной биологической ценности (на 2,7%) мяса рыб, пораженных описторхозом, при высокой степени инвазии.

Список использованной литературы

1. Акбаев М.Ш. и др. Паразитология и инвазионные болезни. М.: Колос, 2002 г. — 251 с.;

. Артемьева С.А. и др. Микробиологический контроль мяса животных, птицы, яиц и продуктов их переработки. М.: Колос, — 2003 г. — 288 с.;

. Архипов И.А. и др. Состояние по основным гельминтозам животных и перспективы их профилактики. Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями. М.: — вып.5., — 2004г. — 40 с.;

. Белоусов В.И. Надзор за безопасностью в ветеринарном отношении продуктов аквакультуры. Сборник «Эпизоотический мониторинг в аквакультуре: состояние и перспективы». — М.: — 2005 г. — 100 с.;

. Беляева М.И., Катин A.A., Пустовалова В.Я. Видовой состав и зараженность вторых промежуточных хозяев. Проблемы современной паразитологии. — СПб. — 2003г. — 75 с.;

. Беэр С.А. Биология возбудителя описторхоза. М. — КМК. — 2005г. — 336с.;

Наши специалисты проконсультируют или окажут репетиторские услуги по интересующей вас тематике.
Отправь заявку с указанием темы прямо сейчас, чтобы узнать о возможности получения консультации.

источник

Анализ на описторхоз – непростая задача для изучения болезни, так как его симптомы неспецифичны и разнообразны. Как сдавать анализ и как себя подготовить заранее к нему? При том, что само слово «анализ» в данном случае означает не разовую процедуру, а целый комплекс обследований крови, каловых масс, мочи и анализ желчи двенадцатиперстной кишки.

Лабораторные исследования болезни связаны с решением тяжёлых задач, так как его симптомы неспецифичны и разнообразны. Как сдавать кровь, кал, желчь для проведения анализ на описторхоз? Во время диагностирования недуга нужно обращать внимание на целый ряд вопросов, касающихся эпидемиологического анамнеза:

Проживание человека в эндемическом очаге (местность, где на протяжении большого промежутка времени отмечалось стабильное заражение какой-либо болезнью).
Употребление некачественных продуктов рыбной продукции (в основном это касается карповых пород).
Нахождение пациента в группе риска.

Изучение симптомов описторхоза включает в себя помимо сбора анамнеза лабораторные способы исследования. Какие анализы нужно сдать на описторхоз:

Клиническое и биохимическое лабораторное исследование состава крови.
Общий анализ урины.
Копрология.
Эндоскопический метод изучения органов пищеварительной системы органов.
Ультразвуковое исследование органов брюшной полости.
Иммуноферментный анализ крови.
Рентген, КТ, эндоскопия и многие другие.

Чтобы увидеть наиболее достоверную картину заболевания, лечащий доктор должен назначить пациенту разнообразные анализы на описторхоз.

Забор фекалий при описторхозе является важнейшим этапом диагностики. Существует и другой способ – изучение желчи на описторхоз из двенадцатиперстной кишки, в котором можно обнаружить источник заражения. Лечащий врач обязан учитывать тот факт, что данное исследование не даст никаких результатов, если проводить его на начальном уровне развития инфекции.

Анализ кала на описторхоз считается самым целесообразным при хронической форме заболевания. Материал изучают на наличие яиц паразитов, количество которых позволяет их обнаружить под микроскопом. Рекомендуется сдавать фекалии не менее трёх раз на протяжении нескольких дней. Но даже это обстоятельство не позволяет полностью исключить получение ложноотрицательного результата. Самая высокая эффективность проводимого анализа отмечается в том случае, если материал для лабораторного изучения был взят спустя месяц, полтора с момента инфицирования.

Для проведения анализа необходима маленькая частичка кала, которую смешивают с глицерином и переносят на стекло. Затем производят осмотр под микроскопом. Паразитные яйца достаточно маленькие в размерах, что усложняет процесс их идентификации. Для определения уровня цист применяется методика Горячева или Фюлленборна. Суть обоих способов заключается в смешивании фекалий с нитратом натрия или физиологическим раствором хлорида натрия. Благодаря взаимодействию раствора с молекулами пробы происходит выпадение яиц в осадок.

Выполняя ту же задачу, проводят дуоденальное зондирование — лабораторное исследование желчи на присутствие в ней паразитов или их продуктов жизнедеятельности. Наиболее популярными методами являются:

Толстый мазок по Като.
Эфир-уксусного или формалинового осаждения яиц.

Перед тем, как сдать кал на описторхоз необходимо за пару суток исключить из рациона питания продукты, оказывающие влияние на физические свойства кала (горох, фасоль, морковь, свекла, чечевица).

Эффективность способов обнаружения описторхоза находится в прямой зависимости к описторхисам, а точнее к их количеству на единицу кала. Отсутствие паразитических продуктов жизнедеятельности в фекалиях имеет следующие объяснения:

Неспособностью идентифицировать паразитов на начальном этапе развития описторхоза.
Цикл развития гельминтов.
Разброс описторхальных яиц по толстой кишке в разной количественной пропорции.
Низкие шансы обнаружения паразитов при слабой интенсивности инвазии.

Расшифровка исследования по калу:

при содержании 100 яиц на 1 гм фекалий диагностируется лёгкая степень описторхоза,
тяжёлая степень заболевания ставится, если количество яиц превышает 3000 на 1 гм каловых масс.

Отсюда следует лишь один вывод – чтобы достоверно исключить описторхоз необходимо провести целый ряд разных анализов и не ограничиваться сдачей каловых масс. Сразу весь комплекс лабораторных исследований производит медицинская клиника «Инвитро», работающая без посредников в собственной лаборатории.

Изучая общий анализ крови на описторхоз, обращают внимание на лейкоциты, эозинофилы, гемоглобин. Отклонение от нормы показателей лейкоцитов и эозинофилов в большую сторону свидетельствуют об остром периоде заболевания. Пониженный уровень гемоглобина также сигнализирует о незамедлительном начале лечения. Но во время перехода описторхоза из острого периода в хронический показатели крови приходят в норму.

Биохимическое исследование крови помогает увидеть уровень содержания ферментов. Если норма превышена, то это является первым признаком инвазии.

Анализ крови поможет узнать вид гельминта, ведь помимо сибирской двуустки, являющейся источником описторхоза, существуют и другие паразиты. Но как показывает практика, анализ крови не всегда может гарантировать достоверность. Поэтому доктора дополнительно прибегают к иммуноферментному анализу крови (ИФА).

ИФА даёт возможность диагностировать поражение гельминтами на самых ранних этапах. При инвазии у человека повышается концентрация иммуноглобулинов M и G. Наличие img свидетельствует об остром развитии болезни на начальном этапе. Присутствие igg информирует о поздней стадии описторхоза. Во время острой стадии описторхоза метод ИФА эффективен практически 100%, но при переходе в хроническую стадию информативность снижается до 70%, а затем и вовсе этот метод исследования становится лишь вспомогательным.

Диагноз легко устанавливается, если в крови находят антитела к антигенам описторхисов. Присутствие в организме igm информирует о том, что больной уже «встречался» с печеночными сосальщиками либо о ранней стадии развития описторхоза.

Также получить нужные результаты можно таким образом:

Забранный натощак материал отправляется в окошечко планшета.
Для определения повышенного уровня антител в пробу добавляют специальный фермент, смешивая его с прозрачным веществом, придающим цвет реагенту.
Исходя из насыщенности цвета фермента медики видят антитела к описторхам.

Расшифровка анализа крови на описторхоз (титры):

если на каждый миллилитр плазмы приходится меньше 100 яиц гельминтов, то анализ отрицательный,
коэффициент позитивности означает превышение уровня содержания паразитов,
если концентрация находится в точном соотношении один к ста – сомнительный.

Циркулирующие иммунные комплексы в составе крови указывают на развитие воспалительных процессов в организме. Изучение циркулирующих иммунных комплексов информирует о степени инфицирования.

Необходимо помнить, что сдав кровь на описторхоз, чрезвычайно важно сдавать анализ кала спустя месяц после инвазии. Оба лабораторных исследования можно пройти в любой клинике «Инвитро».

Суть метода сконцентрирована в изучении двенадцатиперстной кишки. Главным отличием от анализа кала состоит в том, что шансы обнаружить глистов на ранней стадии развития болезни гораздо выше.

Чтобы проверяться с помощью зондирования, необходимо подготовить себя заранее. До начала процедуры необходимо отказаться от приёма пищи на протяжении 10 часов. Также за 48 часов до сдачи анализа запрещается применять желчегонные медицинские средства и слабительные. На исследование отправляться стоит только после приёма у доктора.

Забор материала для проведения лабораторного исследования производят при помощи специального зонда, который вводится через анальное отверстие в кишечник. Пробу получают с применением медикаментозного возбуждения кишки – желчный пузырь сокращается, после чего происходит выброс желчи с паразитами. Затем собранный материал отправляется в лабораторию для более пристального изучения на клеточном уровне.

В настоящее время для определения возбудителя описторхоза используется полимеразная цепная реакция. Благодаря данному методу исследования крови можно изучить генетическую составляющую паразита. Данный способ является прямым для нахождения источника инфекции. Помимо этого существует оценивание количества специфических антител, которые производит организм пациента, проявляя реакцию на внедренные заражённые клетки.

Помимо описторхоза благодаря полимеразной цепной реакции можно найти лямблиоз (ещё один вид инфекционного заражения). Анализ крови сдаётся обязательно на голодный желудок. Как правило, результаты исследования становятся известны уже на вторые сутки после забора материала. Положительный коэффициент говорит о наличии инфекционного заражения.

Какие анализы выявляют глисты.

источник

Многие годы пытаетесь избавиться от ПАРАЗИТОВ?

Глава Института: «Вы будете поражены, насколько просто можно избавиться от паразитов принимая каждый день.

Описторхоз вызывает паразит, относящийся к виду плоских червей. Называются такие возбудители трематодами. Это довольно опасное заболевание, возбудитель описторхоза после научных исследований определен в группу канцерогенов, вызывающих злокачественные онкологические заболевания. Анализ на описторхоз позволяет выявить возбудителя в организме человека и принять соответствующие меры.

Специалист может направить на анализы на описторхоз при следующих жалобах пациента:

Для избавления от паразитов наши читатели успешно используют Intoxic. Видя, такую популярность этого средства мы решили предложить его и вашему вниманию.
Подробнее здесь…

Частая тошнота.
Регулярные боли в эпигастральной области, тяжесть.
Изжога .
Частые боли и дискомфорт в правом подреберье.
Быстрая утомляемость и слабость.
Повышение температуры до 37,5–38 градусов.
Аллергические высыпания на коже в виде небольших пузырьков, зуд в местах высыпаний.
Значительное увеличение печени.

Врача-инфекциониста может особенно насторожить факт недавнего употребления пациентом речной рыбы, ведь именно она является промежуточным хозяином возбудителя описторхоза.

Обычно в первую очередь доктор дает направление на общий анализ крови. Данное исследование при наличии возбудителя описторхоза в организме может показать анемию (значительное понижение гемоглобина в крови) и эозинофилию (признак воспаления и бактериальной инфекции в организме).

Инструментальные методы исследования:

Дуоденальное зондирование – исследование желчи на наличие личинок трематод.
Ультразвуковое исследование органов брюшной полости.

Эти два метода информативны при обширном заражении организма трематодами или при высокой активности данного гельминта.

Лабораторные методы исследования:

Анализ крови на описторхоз.

Данный вид исследования является довольно точной диагностикой описторхоза. Анализ не показывает наличие яиц трематоды, а выявляет антитела. Существует две основные методики, по которым чаще всего сдается кровь на антитела при описторхозе.

РНГА (точность до 84%);
РЭМА (точность до 92%).

Существует также метод иммуноферментного анализа (ИФА). Он весьма информативен, так как выявляет возбудителя, независимо от стадии заболевания. Данный вид диагностики является дорогостоящим и делается не в каждой клинике.

Диагностировать описторхоз по анализу кала можно только при хронической форме заболевания, когда яйца трематод выходят вместе с калом и их видно при исследовании.

Данное лабораторное исследование обычно требует многократного повтора, минимум 4 раза, с интервалом в 5–7 дней.

Часто случается, что результаты нескольких проведенных анализов и исследований противоречивы, и расшифровка при этом требует внимательности и времени.

К примеру, иммуноферментный анализ показал наличие возбудителя в организме, а анализ кала и дуоденальное зондирование не выявили личинок трематод. В таком случае есть несколько предположений:

Ошибка по халатности лаборанта.
Начальная стадия заболевания, когда паразит еще не начал плодиться в органе.
Описторхоз уже излечен.

Обычно специалисты сразу же предлагают повторить анализ, назначают еще одно дуоденальное зондирование и ИФА. Особенно серьезно относятся к повтору исследования в том случае, когда симптоматика описторхоза сохранена либо прогрессирует.

Наиболее правильным подходом к исследованию организма на описторхоз является направление на дуоденальное зондирование, а затем на анализ кала, проводимый трижды.

Чаще трематоды локализуются в порции желчи, взятой при зондировании. Но необходимо помнить, что личинки паразита бывают не во всех порциях, поэтому нередко дуоденальное зондирование дает неправильный результат.

В кале также не всегда можно обнаружить яйца возбудителя, а половозрелые особи трематод попадаются еще реже, именно поэтому исследование кала мало провести всего один раз. В некоторых клинических лабораториях анализ кала проводится не только микроскопически, но и с применением специальных эфиров и реагентов.

Как сдавать анализы, и что перед этим нужно делать? Анализ на описторхоз не требует специфической подготовки.

Все виды анализов крови сдаются натощак с утра. Производится венозный забор крови.
Кал желательно сдавать в ближайшее время после дефекации. Если такой возможности нет, то материал можно хранить в холодильнике, но не более 8 часов.
Перед дуоденальным зондированием необходимо полностью исключить употребление пищи за 20 часов до начала исследования. А за три дня до зондирования нельзя есть продукты, вызывающие образование чрезмерного количества газов в кишечнике: капусту, мучные изделия, сладости, бобовые, черный хлеб, газировку и т. д. Если же метеоризм все равно есть, то специалист назначает энтеросорбенты – Смекту, Полисорб, Фосфалюгель и др. Бывает, что доктор считает нужным назначить спазмолитические и желчегонные препараты перед зондированием. Это делается для того, чтобы яйца паразитов выбрасывались вместе с желчью – так их легче обнаружить при первом же дуоденальном зондировании.

Перед ультразвуковым исследованием брюшной полости также необходимо исключить из рациона газообразующие продукты. Диеты необходимо придерживаться на протяжении 3-4 дней перед УЗИ, а на само исследование нужно приходить натощак. Если не соблюсти данные требования, информативность такого исследования будет под сомнением.
Перед всеми видами лабораторных и инструментальных исследований нужно полностью исключить употребление алкоголя и курение.

Если после всех проведенных исследований диагноз все-таки подтвердился, не стоит паниковать. Решение данной проблемы нужно целиком и полностью доверить врачу-инфекционисту, и ни в коем случае не заниматься самолечением.

Откладывать на потом лечение описторхоза нельзя, не стоит забывать, с какой скоростью размножаются гельминты. Каждый день промедления может нанести большой урон организму.

Описторхоз, диагностика которого дала положительные результаты, нуждается в следующем лечении:

Симптоматическая терапия – спазмолитики (Но-шпа, Папаверин) для купирования болевых ощущений.
Антигистаминные препараты – Супрастин, Тавегил
Энтеросорбенты – для выведения токсинов из организма (активированный уголь, Смекта)
Гепатопротекторы – для защиты печени от воздействия паразитов (Уролесан, Силимарин).

Это только один из этапов лечения, вся консервативная терапия зависит от тяжести заболевания и степени поражения того или иного органа паразитами.

Лабораторные исследования играют огромную роль при постановке окончательного диагноза. Нередко в медицинской практике проводится анализ на описторхоз. Данное заболевание относится к паразитарным инфекциям и вызывается гельминтами. Распространенность описторхоза довольно велика. Болеть могут как взрослые лица, так и дети. Что представляет собой данная патология и какие анализы проводятся?

Возбудителем этой болезни является кошачья двуустка. Она относится к семейству трематод (плоских червей). Двуустка является сосальщиком и часто обнаруживается в печеночных желчных протоках человека. Паразит имеет удлиненное тело (1-2 см). Двуустка относится к биогельминтам. Это означает, что для жизнедеятельности этого организма требуется хозяин, он не может жить и размножаться в окружающей внешней среде. Наиболее высокий показатель заболеваемости в нашей стране наблюдается на территориях, прилегающих к крупным рекам (Оби, Иртышу, Волге, Каме, Уралу). Территорией риска является Алтай, Пермский край, Ханты-Мансийский округ.

Человек является окончательным хозяином этого паразита. Хозяевами также могут быть кошки, лисы, собаки. Что же касается промежуточных хозяев, то их 2: пресноводные моллюски и карповые рыбы. Заболевание развивается после проникновения паразита при употреблении в пищу рыбы. Это может быть карп, язь, плотва, некоторые другие. Фактором риска является плохая термическая обработка рыбы. Больной человек способен выделять в окружающую среду яйца двуустки в большом количестве. Они попадают в воду, затем заглатываются моллюсками. Развившиеся личинки поступают в воду и внедряются в кожные покровы рыбы, поступая затем с пищей уже к другому хозяину. Так повторяется цикл развития этого паразита.

Клинические симптомы появляются спустя 2-4 недели с момента заражения. В острый период болезни больные могут предъявлять жалобы на:

боль в правом подреберье;
слабость;
боль в мышцах;
сыпь;
нарушение стула;
повышение температуры;
диспепсические расстройства;
изменение цвета кожи.

При хроническом течении признаки выражены слабее. В этот период могут обостряться различные хронические заболевания желудочно-кишечного тракта. В ряде случаев какие-либо признаки инфекции отсутствуют.

Анализ на описторхоз — наиболее ценный метод диагностики. Лечащий врач может назначить больному следующие анализы: исследование каловых масс на наличие яиц гельминта, общий и биохимический анализ крови, ПЦР-диагностику, исследование антител к возбудителю инфекции, анализ мочи. Сдать анализы на исследование кала больной человек должен несколько раз. Это требуется для того, чтобы получить точный результат. Все дело в том, что выделение яиц может быть нерегулярным. Кроме того, непосредственно после лечения проводится контрольное исследование.

В последнее время для обнаружения возбудителя инфекции стала широко применяться полимеразная цепная реакция. С помощью ее удается выявить генетический аппарат паразита. Это прямой метод обнаружения возбудителя. Существуют и косвенные. Они предполагают оценку уровня специфических антител, которые вырабатываются в организме человека в ответ на внедрение паразита. С этой целью проводится РИФ и ИФА.

Взятие кала на описторхоз является обязательным этапом диагностики. Альтернативный метод — исследование сока двенадцатиперстной кишки. В нем также можно найти яйца кошачьей двуустки. Врач должен учесть тот факт, что проводить этот анализ нецелесообразно в первые дни заболевания. Яйца выделяются только через 4-6 недель. Их отсутствие в биоматериале может объясняться несколькими причинами. Во-первых, за этот период попавшие в организм личинки превращаются в половозрелых червей. Во-вторых, кладка яиц осуществляется периодически. В-третьих, яиц может быть слишком мало и они распределены неравномерно в кале. В-четвертых, количество яиц во многом зависит от тяжести инвазии. Чем больше в организме зрелых гельминтов, тем выше вероятность выделения яиц.

Технология проведения анализа проста. Врач забирает дуоденальное содержимое, либо пациент сдает кал. Дуоденальный сок затем центрифугируют, в результате чего выпадает осадок. Последний вместе с плавающими в емкости хлопьями исследуют под микроскопом. Если для анализа берется кал, то делается нативный мазок. Для этого используется небольшое количество кала, который смешивают с глицерином. На следующем этапе материал накрывают стеклом. Предпочтительнее делать сразу 2 мазка. Предварительно обязательно проводится флотация. Расшифровка такова: если в 1 г кала определяется более 100 яиц, то это свидетельствует о легкой степени заболевания. Тяжелая степень инвазии наблюдается при наличии более 30000 яиц.

Для оценки количества яиц применяется способ Горячева. Он основан на смешивании разбавленного в дистиллированной воде кала с раствором нитрата калия. При этом исследованию подлежит осадок. Существуют и другие способы исследования каловых масс. Может применяться методика Фюллеборна. При этом кал перемешивается с солевым раствором. Всплывающие частицы убирают. В таком состоянии кал в емкости оставляется на 1-1,5 часа. Для последующей микроскопии берут пленку, делая сразу несколько препаратов.

На сегодняшний день иммунодиагностика используется очень часто при подозрении на описторхоз. В большинстве случаев проводится иммуноферментный анализ. С его помощью можно обнаружить повышение концентрации иммуноглобулинов класса G и M.

IgM появляются непосредственно после первого контакта организма человека с паразитом.

Рекомендуется проводить ИФА через 1-2 недели с момента возможного заражения, так как именно в это время концентрация антител максимальна. IgG появляются несколько позже: на 3-4 неделе болезни.

У здорового человека, никогда не болевшего описторхозом, антитела отсутствуют. Чувствительность этого анализа определяется течением заболевания. Если имеет место острый период, то чувствительность равна 100%. Если же болезнь протекает в хронической форме, то данный показатель составляет около 70%. По мере развития заболевания титр антител снижается. Это наблюдается по причине образования циркулирующих иммунных комплексов. Иногда при проведении ИФА наблюдаются ложноположительные результаты. Способствовать этому может наличие у человека заболеваний печени, аллергических болезней. Интересен тот факт, что у жителей неблагополучных по описторхозу территорий имеется врожденный иммунитет. Чувствительность к возбудителю инфекции при этом снижается.

Дополнительным методом диагностики является проведение общего и биохимического анализа крови. Общий анализ может выявить эозинофилию, анемию, лейкоцитоз. Нередко организуется биохимическое исследование. При этом оценивается уровень печеночных ферментов (АЛТ и АСТ, щелочной фосфатазы). У многих больных описторхозом повышается уровень билирубина в крови. Это наблюдается в результате застоя желчи в протоках. Дополнительно определяется содержание общего белка и отдельных его фракций (альбуминов и глобулинов). Кроме того, определяется уровень амилазы и холестерина.

Все вышеперечисленные анализы занимают много времени, тогда как лечение должно быть своевременным. Оно включает в себя использование противогельминтных средств («Празиквантела», «Альбендазола»). После лечения проводится диспансерное наблюдение за переболевшими. Таким образом, анализы при описторхозе играют решающую роль в процессе постановки диагноза. Не нужно забывать и про инструментальные методы. К ним относится УЗИ, панкреатохолангиография, КТ, МРТ. Меры профилактики описторхоза предполагают достаточную термическую обработку рыбы, кипячение воды, охрану источников от фекального загрязнения.

Анализ на описторхоз играет большую роль при постановке и определения вида глистной инвазии, так как от этого зависит эффективность лечения. Описторхоз считается паразитарной инфекцией, вызывает которую кошачья (сибирская) двуустка. Она принадлежит к трематодам — плоским червям. Данное заболевание весьма распространено среди взрослых и детей. Чем же представляет из себя этот недуг, и какие анализы существуют для его выявления?

Кошачью двуустку часто можно обнаружить в печеночных желчных протоках людей. Двуустку относят к сосальщикам, длина ее не превышает двух сантиметров. Этот вид паразитов относят к биогельминтам. Это означает, что выжить сами паразиты в окружающей мире не могут, для его нормальной жизнедеятельности нужен живой организм- хозяин.

Чаще всего таких гельминтов можно встретить возле крупных рек. Этот паразит может поражать организм как людей (взрослых и детей), так и животных: лис, собак, кошек. Человек и животные выступают для кошачьей двуустки окончательным хозяином. Промежуточным звеном в этой цепочке может выступать карповая рыба, к которым относят карп, плотву, либо моллюски.

Основным путем заражения взрослых и детей, является употребление в пищу неправильно обработанной рыбы.

Неправильная термическая обработка рыбного деликатеса может негативным образом сказаться на органах человека, и он встретиться нос к носу с паразитом.

Попадая к человеку, двуустка размножается и усиленно откладывает яйца, которые зараженный человек в большом количестве выделяет в окружающую среду. После чего они могут попадать в водную среду и заглатываться моллюсками. Личинки развиваются и потом попадают к рыбам, которую после употребляет человек.

Этот процесс непрерывен и только от человека зависит — сможет он противостоять двуустке или нет — будет ли он придерживаться правил приготовления рыбных блюд или нет.

Признаки двуустки у детей и взрослых могут дать о себе знать уже спустя две недели после инвазии. Острую стадию недуга могут сопровождать такие признаки:

высыпания;
общая слабость;
диарея либо запор;
боли в мышцах и правом подреберье;
изменения цвета кожного покрова;
повышение температуры тела.

Если болезнь перешла у человека в хроническую стадию, то признаки могут быть стертыми и слабо — выраженными. Иногда инфекция вообще никак себя не проявляет, и определить ее достаточно сложно. Для хронической стадии характерно обострение заболеваний, связанных с желудочно-кишечным трактом.

Анализ на описторхоз считается одним из ценных методов диагностирования. Диагностика данного заболевания может быть такая:

кал на выявление описторхоза;
кровь на выявления описторхоза (общий и биохимический анализ);
ПЦР — диагностика (полимеразная цепная реакция);
исследование появившихся антител к гельминтам;
анализ мочи.

Чаще всего используются такая диагностика заболевания у человека как кал и кровь. Очень популярен в последнее время иммуноферментный анализ крови. Кал, как правило, пациенту требуется сдавать несколько раз подряд, так выделение яиц паразитов может быть непостоянным. После лечения требуется повторное обследование больного.

Современная медицина не стоит на месте и стали использоваться методы диагностирования инвитро. Инвитро- это тесты – исследования, которые проводятся вне живых организмов. Для выявления описторхоза стала использоваться полимеразная цепная реакция. Эта диагностика позволяет напрямую выявить паразита.

Также может проводиться такая диагностика, как РИФ (реакция иммунофлюоресценции) и ИФА (иммуноферментный анализ), которые позволяют обнаружить антитела на возбудителя в организме человека.

Взятие кала при исследовании пациента, у которого подозревают описторхоз, является первоочередным методом диагностики. Как правило, исследование кала не проводят в первые дни инвазии, так как обнаружить паразита на ранней стадии невозможно. Диагностика целесообразна по истечению 2-6 недель – только тогда можно обнаружить яйца двуустки в кале. С первого раза обнаружить яйца гельминта не всегда возможно, это зависит от нескольких факторов:

яйца в организме превратились во взрослых особей;
яйца паразиты откладывают не каждый день, а определенными периодами, которые предугадать сложно;
яиц в каловых массах настолько мало, что обнаружить их в материале не представляется возможным.

Чем ярче выражены симптомы и тяжелее состояние пациента, тем легче обнаружить яйца — значит, гельминтов в организме расплодилось много, и они соответственно откладывают больше яиц.

Технология сдачи кала довольно простая. Пациент сдает кал либо врач берет на анализ дуоденальную жидкость, которая включает смесь желудочного сока, желчи, секрета поджелудочной железы и двенадцатиперстной кишки. Если исследуется кал, то делается специальный нативный мазок с использованием глицерина. Если берется дуоденальное содержимое, то его центрифугируют и исследуют содержимое под микроскопом.

Расшифровка анализа проводится следующим образом: если в кале в одном грамме найдено больше ста яиц, то говорят о легкой степени гельминтоза. Если же в одном грамме кала найдено около 30 000 яиц, то говорят уже о тяжелой степени.

Иммуноферментный анализ используется достаточно часто в современной медицине для выявления описторхоза. В этом случае обнаруживают повышенную концентрацию иммуноглобулинов класса G и M.

Показатели IgM могут быть повышены уже на ранней стадии инвазии. Их можно увидеть уже через неделю после заражения. IgG можно обнаружить только с третьей недели заселения паразитов.

Если человек здоров и никогда не сталкивался с описторхозом, то антитела полностью отсутствуют. В остром периоде чувствительность будет составлять 100 %. Хроническая форма недуга может выдать не более 70%.

Когда заболевание развивается, то количество антител снижается. В некоторых случаях возможны ложноположительный результат, который может возникнуть по причине других заболеваний в организме (болезни печени, аллергия).

На тех территориях, где описторхоз встречается чаще всего — у многих людей обнаруживали иммунитет к этому недугу, который относился к врожденному, а не приобретенному иммунитету.

Общий и биохимический анализ крови, как правило, для выявления описторхоза применяют как дополнительные методы исследования. В общем анализе специалисты могут обнаружить повышенные показатели эозинофилов, лейкоцитоз и пониженный гемоглобин.

При биохимическом исследовании можно обнаружить повышенный билирубин в крови, уровень холестерина и амилазы. Также могут быть использованы такие исследования как УЗИ, КТ, МРТ.

На какое исследование отправить пациента с подозрением на описторхоз принимает лечащий врач! Чтобы избежать походов в лабораторию для сдачи анализов — стоит всего лишь соблюдать правила гигиены и правила приготовления пищи!

источник

Во внешних водах, а также внутренних речных бассейнах, озерах и других водоемах стран бывшего Советского Союза обитает около 250 видов рыб, имеющих промысловое значение.

Перед тем как рыба попападает на стол к потребителю для употребления в пищу она проходит несколько этапов ветеринарно-санитарной экспертизы. Ветеринарно-санитарная экспертиза рыбы включает в себя изучение органолептических свойства, химического состава, наличия инфицирование. Важным моментом ветеринарно-санитарной экспертизы является исследование рыбы на наличие инвазионных болезней. Возбудители этой патологии у рыб могут стать причиной глистных заболеваний и у человека.

Описторхоз рыб — болезнь карповых (язя, плотвы, лета, сазана, линя, чебака и др.), вызываемая личиночной стадией трематоды Opisthorchus felineus, именуемой еще кошачьей, или сибирской двуусткой. Болезнь распространена в Обь-Иртышском бассейне, в водоемах, впадающих в Азовское, Черное и Каспийское моря, а также в водоемах Татарии. Эндемичными по описторхозу являются также определенные районы и нашего края. Дефинитивные хозяева — человек, сосана, кошка и путные звери; первый промежуточный хозяин — моллюск бнтиния лючи, а второй — вышеназванные рыбы семейства карповых. Половозрелый паразит (сосальщик) обитает в печени, желчном пузыре и протоках поджелудочной железы дефинитивных хозяев. Яйца гельминта вместе с фекалиями попадают в воду, дальнейшее развитие до стадии церкариев проходит в моллюске. Церкарии после выхода из организма моллюска проникают в подкожные слои мышц рыб и превращаются в метацеркарии — личинки. Метацеркарии неразличимы невооруженным глазом, 0,2—0,3 мм. Это свернутая личинка в овальной или круглой цисте с толстой оболочкой.

В местностях, неблагополучных по описторхозу, рыб необходимо выборочно исследовать на наличие личинок этого паразита. Метацеркарии обнаруживают в мышечной ткани рыб, в основном — в спинной и хвостовой частях, а иногда — и в толще чешуи. Чаще всего метацеркарии поселяются в поверхностных слоях мышц на глубине до 2 мм и в подкожной клетчатке.

При компрессорном исследовании скальпелем удаляют чешую с одного бока под спинным плавником рыбы, затем надрезают кожу в двух направлениях. Первый разрез делают впереди спинного плавника перпендикулярно продольной оси тела до боковой линии, второй — от конца первого надреза по направлению к хвостовому плавнику вдоль боковой линии. Пинцетом поднимают край кожи и отпрепаровывают ее на площадки до 25 см 2 так, чтобы подкожная клетчатка осталась на поверхности мышц. После этого срезают поверхностный слой мышц толщиной 0.2—0,5 см, нарезают мелкими кусочками и размещают по всей поверхности нижнего стекла компрессора, покрывают верхним стеклом и сжимают винтами. Под малым увеличением микроскопа или под трихинелдоскопом просматривают все кусочки, взятые от одной рыбы. Личинки легко обнаруживаются.

Характерная особенность личинки описторхис — наличие внутри цисты червячка адолескария с двумя присосками и большого черного зернистого пятна (пигментированный мочевой пузырь).

При исследовании вяленой, копченой и соленой рыбы ее предварительно вымачивают.

Жизнеспособность метацеркариев определяют следующим образом. Их изолируют от ткани, помещают в каплю физиологического раствора на предметном стекле, покрывают покровным и микроскопируют вначале под малым, а затем большим увеличением микроскопа. У погибших метацеркариев нарушена целостность оболочки, содержимое в состоянии зернистого распада, экскреторный пузырь разрушен, присоски слабо выражены. Живые метацеркарии в цисте подвижны. Подвижность вызывают механическим воздействием или подогреванием личинки (не выше 40 0 С).

Неподвижность личинки не свидетельствует о ее гибели. При исследовании, свежевыловленной рыбы, а также при комнатной температуре живые личинки бывают неподвижными. Поэтому исследуют большое количество личинок с применением тепла, а также учитывают степень выраженности присосок и экскреторного пузыря.

Санитарная оценка. При сильной степени поражения мыши живыми или мертвыми метацеркариями рыбу направляют на техническую переработку — утилизацию, при слабой степени — ее обезвреживают проваркой — не менее 30 мин, замораживанием (температура не выше —15 0 С) в течение 14 суток, крепким посолом (концентрация рассола не ниже 14%) не менее 14 суток.

Рыбу, зараженную метацеркариями в сильней степени, после промораживания разрешается использовать на корм пушным зверям. На рынках неблагополучной по описторхозу местности вывешивают объявления о необходимости обезвреживания пресноводной рыбы с указанием режимов и сроков обработки.

источник