Алгоритм при брюшном тифе

Инкубационный период от 7 до 25 дней

Начальный период:

• Симптомы общей интоксикации (головная боль, слабость, головокружение), нарастающая гипертермия;
• Задержка стула (диарея редко), возможны: диспепсический синдром (метеоризм, тошнота, рвота), абдоминальные боли;
• К концу первой недели гепатоспленомегалия.

Период разгара (1-2 неделя):

• Экзантема (розеолы о 3-6 мм, с четкими границами, возвышающиеся над уровнем кожи) на коже верхних отделов живота и нижних отделов грудной клетки;
• Выраженные симптомы общей интоксикации, гипертермия;
• Язык сухой, потрескавшийся, покрыт плотным грязно-бурым или коричневым налетом, с отпечатками зубов, края и кончик языка свободны от налета;

• Стул характерный для энтеритов (жидкий, кашицеобразный, или водянистый, обильный, с непереваренными комочками, небольшим количеством прозрачной слизи, зеленью и резким кислым запахом), аускультативно: «урчание» кишечника, пальпаторно: болезненность при пальпации в илеоцекальной области;

• Гепатоспленомегалия;
• Артериальная гипотензия, возможна брадикардия;
• Нарастающее качественное (до делирия) и количественное расстройство сознания до сопора или комы;
• Возможно развитие перфорации кишечных язв и кишечного кровотечения.

1. Сбор анамнеза (одновременно с проведением диагностических и лечебных мероприятий);
2. Осмотр врачом (фельдшером) скорой медицинской помощи или врачом специалистом выездной бригады скорой медицинской помощи соответствующего профиля;
3. Пульсоксиметрия;
4. Термометрия общая;
5. Исследование уровня глюкозы в крови с помощью анализатора.
6. Регистрация электрокардиограммы, расшифровка, описание и интерпретация электрокардиографических данных;
7. Контроль диуреза.

Дополнительно, в период разгара:

• Мониторирование электрокардиографических данных;

Для врачей анестезиологов-реаниматологов:

• Контроль ЦВД (при наличии центрального венозного доступа).

Начальный период:

1. Обеспечение лечебно-охранительного режима;
2. Горизонтальное положение;
3. Катетеризация кубитальной или, и других периферических вен;
4. Кристаллоиды (полиионные растворы + Натрия хлорид 0,9%) — 500-1000 мл в/в со скоростью от 10 мл/кг/час, под аускультативным контролем легких, на месте и во время медицинской эвакуации;
5. При гипертермии (t° тела > 38,5°С):

• Анальгин 50% — 2 мл в/м +
• Димедрол 1% — 1мл в/м +
• Папаверин 2% — 2 мл в/м;

1. Медицинская эвакуация (см. «Общие тактические мероприятия»).

Период разгара:

1. Обеспечение лечебно-охранительного режима;
2. Положение пациента в зависимости от показателей гемодинамики;
3. Ингаляторное введение 100% О2 на постоянном потоке ч/з маску (носовые катетеры);

1. Катетеризация кубитальной или, и других периферических вен или установка внутрикостного доступа или, и для врачей анестезиологов-реаниматологов — катетеризация подключичной или, и других центральных вен (по показаниям);

5. Кристаллоиды (полиионные калийсодержащие растворы + Натрия хлорид 0,9%) — до 1000 мл в/в (внутрикостно) со скоростью от 10 мл/кг/час, под аускультативным контролем легких, на месте и во время медицинской эвакуации;

6. При брадикардии (ЧСС 38,5°С):

• Анальгин 50% — 2 мл в/м (в/в (внутрикостно) болюсом медленно);

8. При сохраняющейся гипотензии (САД 12 баллов по шкале ком Глазго, САД > 90 мм рт.ст., SpО2 > 90% на фоне оксигенации 100% О2:

• Проводить терапию;
• Выполнить медицинскую эвакуацию.

источник

Учебно-целевая задача: используя диагностические алгоритмы, уметь установить диагноз брюшного тифа, определить клиническую форму, степень тяжести, осложнения и назначить адекватное лечение.

Задание для самостоятельного изучения темы.

Пользуясь учебником и лекционным материалом для приобретения необходимых базисных знаний, усвойте к практическому занятию следующие разделы:

2) ранняя клиническая диагностика;

3) клинико-лабораторные критерии диагностики брюшного тифа и паратифов А и В;

4) принципы этиотропной и патогенетической терапии брюшного тифа.

Проверьте свои знания путем ответов на следующие вопросы:

— определение брюшного тифа и паратифов А и В;

— основные звенья патогенеза брюшного тифа;

— клинико-лабораторные показатели, на основании которых можно поставить диагноз брюшного тифа, паратифов А и В;

— клинические признаки осложнений брюшного тифа;

— значение эпидемиологического анамнеза в расшифровке тифо-паратифозного заболевания;

— содержание основных принципов комплексной терапии больного брюшным тифом;

— правила выписки из госпиталя и содержание диспансерного наблюдения;

— реабилитация больных брюшным тифом и паратифами А и В.

Решение ситуационных клинических задач № 1, 2, 15, 21, 22.

Материалы для самостоятельной подготовки к практическому занятию по этапам диагностики и лечения. С целью уяснения ориентировочной основы действий при обследовании больных брюшным тифом (паратифом А, паратифом В) проанализируйте алгоритмы, схемы и таблицы, расположенные в соответствии с поэтапным лечебно-диагностическим поиском.

Алгоритм по диагностике брюшного тифа (паратифа А, паратифа В)

среднетяжелой формы (типичный вариант)

Примечание: окончательный диагноз брюшного тифа, паратифа А или В может быть подтвержден выделением возбудителя брюшного тифа, паратифа А или В из крови, кала, мочи, желчи или результатами положительных серологических исследований (реакции Видаля, РНГА, ИФА, реакции ко-агглютинации).

— лабораторные исследования, которые могут быть выполнены в медицинском пункте части у больного при подозрении на брюшной тиф;

— изменения гемограммы, характерные для брюшного тифа;

— диагностическое значение динамики нарастания титров с О- и Н-антигенами в реакции Видаля, возможности использования ИФА, РКоА;

— возможность диагностики брюшного тифа (паратифа А или В) при отрицательных результатах реакции Видаля;

— клиническая оценка результатов лабораторных методов исследования.

Дифференциально-диагностическая таблица признаков брюшного тифа

(паратифа А и В) и сыпного тифа

Алгоритм по определению тяжести состояния больного брюшным тифом (паратифом А и В)

— период болезни, в котором следует ожидать наиболее тяжелого состояния больного;

— возможность рецидивов болезни;

— генез сыпи при брюшном тифе;

— объяснение слова «тиф» (латинское thypus), кто ввел термин.

Алгоритм по определению основных осложнений

— период болезни, когда следует ожидать перфорации кишечника, кишечного кровотечения;

— экспресс-методы лабораторных исследований при кишечном кровотечении;

— факторы, способствующие перфорации кишечника;

— другие осложнения брюшного тифа;

— категория лиц, у которых при заболевании брюшным тифом чаще всего возникают инфекционные психозы;

— основная цель вакцинотерапии; сроки начала вакцинотерапии; схемы внутрикожного введения;

— показания и противопоказания к лечению больных брюшным тифом кортикостероидными гормонами; суточные и курсовые дозы препаратов.

Схема неотложной помощи больным брюшным тифом (паратифом А и В) в пункте медицинской помощи части

— другие, кроме вышеуказанных основных, неотложных сосотяний, которые могут развиваться у больного брюшным тифом;

— лекарственные препараты, применяемые для купирования психомоторного возбуждения при инфекционном психозе;

— меры предупреждения инфекционно-токсического шока при антибактериальной терапии (особенно при использовании препаратов бактерицидного действия в больших дозах);

— неотложная помощь больным брюшным тифом (паратифом А и В) на этапах медицинской эвакуации.

Схема лечения больных брюшным тифом (паратифом А и паратифом В)

— период болезни, когда больной брюшным тифом должен соблюдать постельный режим;

— средства уменьшения (устранения) интоксикации, дозы и методы их применения больным брюшным тифом;

— дозы поливитаминов в различные периоды болезни;

— целесообразность назначения занятий лечебной физкультурой больным брюшным тифом; в какие периоды болезни; каково их назначение; объем и содержание лечебной физкультуры;

— показания и противопоказания для назначения больным брюшным тифом гормональных препаратов;

— лечение рецидивов при брюшном тифе.

Правила выписки реконвалесцентов, медицинское освидетельствование перенесших брюшной тиф (паратиф А и В), реабилитация и диспансерное наблюдение.

— сроки выписки реконвалесцентов, перенесшие брюшной тиф (паратифы А и В);

— объем обследования при выписке;

— порядок освидетельствования военнослужащих военно-врачебной комиссией;

— сроки медицинской реабилитации военнослужащих, перенесших брюшной тиф (паратиф А и В);

— организация медицинской реабилитации.

Задания для самоконтроля по клинической оценке лабораторных исследований

Дайте оценку лабораторному анализу: при посеве крови на желчный бульон выделена сальмонелла группы Д, имеющая О-антиген – IX, XII, Vi, H-антиген d.

Расшифруйте результаты троекратного серологического исследования крови лихорадящего больного.

Выделите особенности лейкограммы больного брюшным тифом:

Выпишите рецепты: внутрь – левомицетин, ампициллин, ципрофлоксацин, офлоксацин, витамины.

источник

Брюшной тиф и паратифы А и В — это острые инфекционные заболевания, вызываемые сальмонеллами, которые оказывают свое патогенное действие благодаря наличию эндотоксина.

Возбудитель — salmonella typhi, аэробная, не образующая спор, хорошо подвижная (наличие жгутиков) грам-отрицательная палочка.

Особенности Salmonella typhi:

· Обладает нейротропным действием

· При распаде выделяет эндотоксин

О – встречается только у больных

V – Встречается только у выздоравливающих

Н – встречается у переболевших и привитых

Источник инфекции — больной человек и бактерионоситель.

Механизм передачи – фекально – оральный.

Путипередачи — водный (основной), пищевой, контактно — бытовой.

Факторы — передачи — вода, пища, предметы обихода, мухи.

Инкубационный период – 2 недели. Начинается постепенно, с повышения температуры, общей слабости, головной боли. Продромальный период 4-5 дней ( слабость, температура от 37 до 40).

В период основ проявлений:

· Постоянная лихорадка. Постепенно нарастает температура, которая к концу 1-й недели достигает 39—40° и держится на этом уровне 2—3 недели

· Розеолёзная сыпь . На 8—10-й день болезни на коже груди и живота появляется розеолезная сыпь, обычно необильная ( рис), которая держится 4—5 дней, а иногда (в тяжелых случаях) — сыпь петехиальная. Свежие высыпания наблюдаются в течение всего лихорадочного периода.

· нарушение сознания

· снижение слуха

Результаты сестринского осмотра:

· Язык – густо обложен налётом с отпечатками зубов по краям

· Живот – вздут

· Стул – задержан, в тяжёлых случаях – понос- жидкие выделения, напоминающие гороховый суп

· Сердце – тоны приглушены, АД снижено.

· Нервная система – кошмарные сны, галлюцинации.

· Паратиф А.По развитию и клиническому течению несколько отличается от клиники брюшного тифа. При паратифозной А инфекции заболевание, начавшись остро, нередко сопровождается гиперемией лица, инъекцией сосудов склер, легким конъюнктивитом, насморком, кашлем, герпесом на губах и крыльях носа, реже носовым кровотечением. Повышение температуры сопровождается ознобом, а снижение — потливостью. Тифозный статус выражен только при очень тяжелом течении заболевания. Розеолезная сыпь, появляется в более ранние сроки заболевания и отличается полиморфностью.

· Паратиф В.Характеризуется выраженными желудочно-кишечными нарушениями. Заболевание нередко начинается остро, с выраженного озноба, мышечных болей, потливости в сочетании с острыми желудочно-кишечными нарушениями (понос, боли в животе, рвота); нередко отмечаются катаральные явления верхних дыхательных путей — гиперемия зева, сухой кашель, осиплый голос.. Высыпание розеолезной сыпи наблюдается в ранние сроки (на 3-5-й день), она нередко бывает обильной и полиморфной.

Особенности сестринского ухода:

1.Обеспечение строгого постельного режима и покоя в течение всего периода заболевания. Расширение режима проводят постепенно. Больному разрешается садиться на 9— 10-й день установления нормальной температуры и ходить с 14—15-го дня. Быстрое расширение режима, диеты может привести к кровотечению или перфорации кишечника и рецидиву заболевания.

2. Обеспечение тщательного ухода за кожей и слизистыми оболочками полости рта, так как у тяжелых больных нередко образуются пролежни и стоматит. Несколько раз в день проводится туалет полости рта: слизистые оболочки щек, зубы и язык протираются ватными тампонами, смоченными 2 % раствором борной кислоты или другим слабым антисептическим средством.

3.Контроль за кормлением больного теплой пищей 4—б раз в день небольшими порциями. Тяжелобольных кормит обязательно палатная сестра.

4.Проведение профилактики обезвоживания: чаще поить — за сутки вводится 1,5—2 л жидкости в виде чая, настоя шиповника, клюквенного морса.

5.Вызов врача при признаках инфекционно – токсического шока: резкий озноб, высокая лихорадка, психическое возбуждение, двигательное беспокойство больного, тенденция к повышению артериального давления, тахикардия, бледность кожных покровов.

6. Применение пузыря со льдом над областью живота и вызов врача при признаках кишечного кровотечения: бледность кожных покровов и слизистых оболочек, снижение температуры, учащение пульса, головокружение, резкая слабость, падение кровяного давления. В кале у больного часто обнаруживается примесь темной крови, или появляется дегтеобразный стул.

7. Ежедневное сестринское обследование, выявление проблем пациента и решение их путём выполнения независимых сестринских вмешательств.

Дата добавления: 2017-02-25 ; просмотров: 4411 | Нарушение авторских прав

источник

Уход при брюшном тифе и паратифах

Правила ухода за пациентами с брюшным тифом и паратифами такие же, как и при уходе за любыми инфекционными больными с ярко выраженной лихорадочной реакцией. К специфическим особенностям таких больных относится вероятность развития у них острого инфекционного психоза, возникновения кишечного кровотечения и перфорации кишечника. Данные особенности в любой момент могут потребовать оказания неотложной помощи.

Инфекционный психоз, как правило, развивается в самом разгаре заболевания. Ранними симптомами психоза на фоне инфекционной интоксикации являются тревога, нарушения сна (вплоть до бессонницы) и выраженное двигательное возбуждение. У больного может наблюдаться делирий (бред), протекающий с яркими зрительными и слуховыми галлюцинациями, как правило, пугающими. Пациент, страдающий галлюцинациями, нередко стремится убежать от мнимой опасности, может покинуть палату и даже выпрыгнуть из окна. Если возникает самое минимальное подозрение на развитие подобного состояния, у постели пациента необходимо установить круглосуточный индивидуальный пост. При ярко выраженном возбуждении пациенту вводят медикаментозные средства: 2 мл 2,5%-ного раствора аминазина, 1 мл 2%-ного раствора димедрола и 10 мл 25%-ного раствора сульфата магния.

Пожалуй, наиболее грозным осложнением брюшного тифа и паратифов является перфорация (прободение) кишечника, приводящая к развитию перитонита и сепсиса. Максимальный риск перфорации кишечника существует на 3 – 4-ой неделях заболевания. Огромное значение в данном случае имеет ранняя диагностика – при своевременном выявлении данного осложнения и проведении неотложного хирургического лечения угроза жизни больного, как правило, сводится к минимуму. В противном случае у пациента наблюдается разлитой перитонит (воспаление брюшины) и прогноз становится весьма серьезным.

Кишечное кровотечение также может развиться на 3 – 4-ой неделях заболевания. Симптомами данного осложнения являются развитие резкой общей слабости, падение артериального давления и температуры, учащение пульса, появление примеси крови в фекалиях. При подозрении на возникновение кишечного кровотечения активность пациента следует резко ограничить и запретить что-либо есть и пить. К низу живота прикладывают холод, проводят гемотрансфузию и внутривенно вводят 10%-ный раствор кальция хлорида. Первые 12 ч после появления признаков кишечного кровотечения пациенту не разрешают принимать пищу и позволяют выпить только немного подкисленной воды или натурального сока. Далее, если не отмечается повторного кровотечения, разрешается прием небольшого количества мягкой пищи (яйцо всмятку, желе или кисель). Новые продукты следует включать в рацион с осторожностью. Лишь спустя 4 – 5 дней пациента переводят на обычное питание.

У больных брюшным тифом и паратифами следует контролировать соблюдение постельного режима и назначенной врачом диеты. Принимать в постели сидячее положение пациенту позволяется только на 9 – 10-й день с момента нормализации общей температуры тела, а вставать с постели и самостоятельно передвигаться ему можно только с 14 – 15-го дней, но при условии отсутствия симптомов осложнения заболевания.

Особенно пристальное внимание уделяют больным пожилого возраста и пациентам с хроническими заболеваниями сердечнососудистой системы в анамнезе.

Для этих групп пациентов время пребывания на постельном режиме должно быть увеличено в зависимости от общего состояния.

При неосложненном течении тифа и паратифов пациенты должны получать диету № 2, а перевод на обычное питание производится за 5 – 7 дней до выписки из стационара. В случае развития дисфункции кишечника на протяжении нескольких дней рекомендуется стол № 4.

У пациентов, перенесших тиф или паратифы, период реконвалесценции (выздоровления) характеризуется возникновением резко повышенного аппетита.

В связи с этим необходимо разъяснить опасность переедания в их положении, поскольку это может спровоцировать развитие дисфункции кишечника и даже рецидива заболевания.

Уход при дизентерии и других острых диарейных кишечных инфекциях

В отделении, где лежат больные с дизентерией и другими кишечными инфекциями со схожей симптоматикой, повышенное внимание уделяют санитарно-гигиеническим вопросам и текущей дезинфекции. Особенно тщательная дезинфекционная обработка должна проводиться в туалетах. В теплое время года большое значение имеет борьба с насекомыми, в частности с мухами. Всем без исключения пациентам, поступающим в специализированные отделения стационара, предназначенные для лечения кишечных инфекций, проходящим лечение в домашних условиях, а также родным и близким больных, проживающих с ними на одной жилплощади и осуществляющих уход, разъясняют правила соблюдения личной гигиены. Подразумевается, в частности, мытье рук с мылом после посещения туалета, перед приемом пищи и курением – это связано с фекально-оральным механизмом передачи данной категории заболеваний.

В летнее время значительно учащаются случаи «диареи путешественников». Как правило, во время нахождения в дороге зачастую сложно полностью соблюдать правила личной гигиены, правильно хранить продукты, что и приводит к развитию кишечных инфекций.

В том случае, если лечебные мероприятия проводятся в домашних условиях, следует научить пациентов и их окружающих простейшим и доступным методам проведения текущей дезинфекции. В обязанности медсестры входит регулярный контроль стула пациентов с дизентерией и подобными заболеваниями с последующей регистрацией данных в истории болезни.

При тяжелом течении заболевания за больными требуется особый уход. Ни в коем случае не следует допускать ситуации, при которой пациент находится в белье, загрязненном фекалиями. Кожные покровы в области промежности должны постоянно находиться в хорошем гигиеническом состоянии и после каждого акта дефекации нужно обмывать область вокруг анального отверстия теплой водой с мылом. У кишечных больных с тяжелым течением заболевания существенно увеличивается чувствительность к холоду, их регулярно знобит вследствие токсического расстройства терморегуляции и нарушения водно-солевого баланса. Поэтому следует согревать пациентов с помощью грелок.

Уход при холере

При холере происходит постоянное значительное обезвоживание организма больного, от выраженности которого зависит тяжесть заболевания. В связи с этим одной из важнейших задач медсестры и врача является постоянный скрупулезный учет объема жидкостей, которые пациент теряет с испражнениями и рвотой и которые вводятся парентерально с терапевтическими целями. Не менее важная задача – строгое соблюдение мер по предотвращению распространения этой опасной инфекции, включающих особые правила сбора и дезинфекционной обработки заразного материала, нательного и постельного белья, а также одежды больного и предметов обстановки. В острой фазе заболевания, если у пациента присутствуют такие симптомы, как диарея и рвота, прием пищи исключен. Для частичного предотвращения обезвоживания и потери солей натрия допустимо пить только воду и солевые растворы.

По мере ликвидации кишечной дисфункции больному назначается cтол № 4 сроком на 2 – 3 дня, затем стол № 13 и за несколько дней до выписки из стационара – стол № 15.

Уход при инфекциях дыхательных путей

При гриппе и других заболеваниях, поражающих респираторную систему человека, нередко развиваются пневмонии, которые в случае тяжелого течения могут приобретать геморрагический характер, что обусловливает некоторые особенности ухода. Пациенту, страдающему пневмонией, следует помочь принять в постели максимально комфортное и удобное для дыхания и деятельности сердечнососудистой системы положение. Необходимо приподнять головную часть кровати и разместить под головой и верхней частью туловища больного 2 – 3 подушки. Очень важно при респираторных заболеваниях следить за чистотой и хорошей проходимостью дыхательных путей пациента: носовые ходы, глотку и ротовую полость следует регулярно подвергать осмотру и удалять из них слизь и насохшие корки. Если губы и видимые слизистые оболочки сухие, целесообразно смазывать их свежим сливочным маслом или глицерином.

Нуждающемуся в искусственной подаче кислорода пациенту, как правило, дают его не ранее, чем через 10 – 15 мин после смазывания слизистой. При регулярной и долговременной кислородотерапии посредством носовых катетеров следует контролировать состояние слизистых оболочек носовых ходов пациента – они не должны травмироваться и подвергаться образованию пролежней. Если слизистые оболочки все же повреждены, можно заменить носовые катетеры маской для подачи кислорода.

К сожалению, в ряде случаев у таких больных развиваются весьма тяжелые осложнения в виде энцефалитов и менингоэнцефалитов. Причем на фоне заболевания гриппом данные осложнения со стороны нервной системы нередко имеют геморрагический характер. В таких ситуациях пациенты теряют сознание и зачастую впадают в коматозное состояние. Потере сознания могут предшествовать симптомы острого психоза, сопровождающегося галлюцинациями. У постели больных в бессознательном состоянии непременно устанавливается круглосуточный индивидуальный пост, поскольку необходим постоянный контроль функций всех органов и систем. При этом в первую очередь обращают внимание на деятельность сердца и легких, принимая все возможные меры для улучшения деятельности этих жизненно важных органов. Сотрудники лечебного отделения обязаны работать в стерильных масках, закрывающих нижнюю часть лица, меняя их через каждые 3 – 4 ч работы.

Уход при скарлатине

Специфика ухода обусловлена тем, что у пациентов с тяжелой токсической или септической формой скарлатины довольно часто возникает рвота. Этот симптом особенно характерен для начального периода заболевания. В связи с этим у постели больного с тяжелой формой скарлатины должна всегда стоять емкость, специально предназначенная для сбора рвотных масс. Осуществляя уход за подобными больными, внимательно следите за гигиеническим состоянием ротовой полости и глотки, обрабатывая их по мере необходимости. Для очистки полости рта целесообразно использовать 0,5%-ный раствор перманганата калия или 0,02%-ный раствор фурацилина. Шею больного следует закрыть ватно-марлевой повязкой: равномерное тепло, создаваемое ею, благоприятствует ликвидации воспалительных изменений в лимфатических узлах, затронутых патологическим процессом. Если у больного скарлатиной отмечается характерная геморрагическая сыпь, надо принять все меры для предотвращения травмирования кожных покровов. У особо тяжелых и ослабленных пациентов следует регулярно проверять места обычной локализации пролежней и опрелостей, принимая меры по профилактике их возникновения.

Если у больного диагностирована тяжелая токсическая форма скарлатины, то, ухаживая за ним, особенно тщательно следите за деятельностью его сердечнососудистой системы, поскольку велик риск развития острой сердечнососудистой недостаточности, требующей принятия неотложных мер. Осуществляя уход за больными скарлатиной, сотрудники профильного отделения стационара обязаны иметь халаты, которые никогда нельзя выносить за пределы отделения.

Уход при дифтерии

Больному следует обеспечить полный покой, оградив его от любых раздражителей, которые могут вызвать его возбуждение или беспокойство. Ухаживая за «тяжелыми» пациентами с токсической и геморрагической формами дифтерии зева, особое внимание обратите на гигиеническое состояние ротовой полости, глотки и носовых ходов, регулярно удаляйте из них некротические массы, слизь и корки посредством полосканий и обработки ватными тампонами с дезинфицирующими растворами. Важно помнить, что не следует пытаться смыть дифтерийные пленки и ни в коем случае нельзя убирать их механическим способом, поскольку это оказывает неблагоприятное местное воздействие и усугубляет общую интоксикацию. Пациентам с симптомами крупа нужно придать полусидячее положение. При стенозе II – III степеней начинают подачу кислорода посредством маски или носовых катетеров. После осуществления интубации трахеи или трахеотомии возле больного обязана постоянно находиться высококвалифицированная медицинская сестра. Если дыхательная трубка закупоривается слизью или дифтерийными пленками, у пациента начинает определяться характерный клокочущий дыхательный шум. В данной ситуации следует срочно извлечь трахеостомическую трубку для последующей очистки или убрать ее совсем.

Все больные фибринозной ангиной обязательно проходят бактериологическое обследование на дифтерию: у них берут мазки из зева и производят посев на питательную среду с целью выявления возбудителя заболевания.

При дифтерии, поражающей глаза, уши, гениталии и раны, назначается местное лечение с применением капель, примочек и мазей, в состав которых входят антибиотики. Осуществляя уход за пациентом, больным дифтерией, медицинский персонал обязан надевать вторые медицинские халаты и носить марлевые повязки.

Уход при менингококковой инфекции

Исключительно тяжелым течением отличается менингококцемия, представляющая собой менингококковый сепсис с формированием очагов кровоизлияния и некроза в коже. Из-за тяжелой интоксикации организма нарушается питание кожных покровов и слизистых оболочек. У «тяжелых» больных, находящихся без сознания, стремительно образуются пролежни. Все проявления менингококковой инфекции требуют исключительно тщательной и регулярной обработки кожи пациента, а также слизистых оболочек носовых ходов, полости рта, глотки и конъюнктивы глаз.

Следует регулярно осуществлять профилактику пролежней и некрозов: не позволяйте пациенту подолгу лежать в одном положении, смазывайте места, где наиболее часто образуются пролежни, камфарным спиртом.

При заболевании менингитом и менингоэнцефалитом у пострадавших нередко развивается рвота центрального происхождения. При этом, если больной находится без сознания, создается серьезная угроза попадания рвотных масс в верхние дыхательные пути с развитием асфиксии. Учитывая риск возникновения такого серьезного осложнения, важным представляется не только очистить ротовую полость и провести гигиеническую обработку при рвоте, но и принять все необходимые меры для предотвращения попадания рвотных масс в дыхательные пути. Если все же сложилась такая неприятная ситуация, то следует незамедлительно ввести катетер в трахею для отсасывания попавших в нее рвотных масс.

У «тяжелых» менингококковых больных в большинстве случаев отмечаются интенсивная головная боль, высокая чувствительность к световым и звуковым раздражителям, повышена чувствительность кожи. Учитывая эти специфические особенности, в палатах отделения, где находятся подобные пациенты, следует особенно строго следить за соблюдением правил лечебно-охранительного режима.

Нередко у больных тяжелой формой менингита, длительное время находящихся в бессознательном состоянии, развивается задержка мочеиспускания вследствие пареза мочевого пузыря. При подобных обстоятельствах нужно периодически обеспечивать отток мочи посредством введения мочевого катетера. Медицинский персонал, осуществляющий уход за пациентами с менингококковой инфекцией, обязан использовать марлевые повязки.

Уход при трансмиссивных инфекциях

Трансмиссивные инфекции передаются человеку насекомыми, например малярийными комарами, вшами и т. д. Наиболее распространенными патологиями являются сыпной тиф и малярия.

Сыпной тиф. При поступлении в инфекционное отделение стационара пациента с подозрением на сыпной тиф безотлагательно проводится его проверка на педикулез. При обнаружении паразитов (вшей и гнид) волосы больного остригаются и уничтожаются посредством сжигания. Голова пациента обрабатывается инсектицидным раствором, а спустя 2 – 3 дня по показаниям обработка повторяется. Одежда и белье поступившего пациента подвергаются обязательной обработке в специальных дезинфекционных камерах.

Если сыпной тиф протекает тяжело, то зачастую возможно развитие менингоэнцефалита, характеризующегося такими симптомами, как интенсивная головная боль, возбуждение и явления психоза. В связи с этим необходимо установить постоянное наблюдение за пациентом с сыпным тифом, контролировать его поведение и общее состояние.

Сыпной тиф сопровождается сосудистыми поражениями и нарушениями местного кровообращения, поэтому пролежни образуются в кратчайшие сроки. Следует постоянно контролировать состояние кожных покровов «тяжелых» больных и принимать меры, направленные на профилактику возникновения пролежней. У больных сыпным тифом в подавляющем большинстве случаев наблюдается склонность к развитию запоров. Если стул отсутствует двое суток и более и при этом отмечается вздутие кишечника, надо поставить очистительную клизму.

Тяжелое течение сыпного тифа нередко сопровождается острой задержкой мочи, обусловленной парезом мочевого пузыря. В данной ситуации во избежание его переполнения необходимо провести катетеризацию. За исключением перечисленных особенностей уход за пациентом осуществляется так же, как и при других инфекционных заболеваниях с тяжелым течением.

Малярия. Это заболевание характеризуется приступообразным течением, начало каждого приступа сопровождается внезапно начинающимся и ярко выраженным ознобом. При нем целесообразно укрыть больного одеялами и обложить теп лыми (но не горячими!) грелками. Когда озноб стихает, пациент чувствует очень сильный жар, общая температура тела при этом может превышать 40 °C. В этот момент нужно убрать одеяла и грелки и накрыть больного обычной простыней. Температура воздуха в палате должна поддерживаться в пределах 20 – 22 °C.

Больному, испытывающему чувство жара, свойственно сбрасывать простыню и одежду, по этому во избежание переохлаждения следите за тем, чтобы в палате не было сквозняка. Охладить тело пациента можно с помощью емкости со льдом, подвешенной над его лобно-теменной областью, или холодной влажной марли, наложенной на лоб. Данные процедуры провести несложно, а эффект они дают весьма ощутимый: помимо снижения жара, уменьшается и интенсивность головной боли, также характерной для приступов малярии.

Завершается приступ, как правило, резким (до критического) снижением общей температуры тела, сопровождающимся значительным потоотделением. В этот момент надо наблюдать за тем, чтобы пациент не лежал в мокром белье. Очень важно следить за возможным появлением симптомов коллапса и при необходимости принять неотложные меры. Особое внимание при этом следует уделять лицам пожилого и старческого возрастов, а также пациентам, у которых в анамнезе имеются заболевания сердечнососудистой системы. Если в стационаре находятся пациенты с малярией, чрезвычайно важным представляется постоянная борьба с комарами на всей территории лечебного учреждения. Для этих целей используются специальные аэрозольные инсектициды, а окна палат должны быть закрыты противомоскитными сетками.

Все длительно лихорадящие без объективной причины больные подлежат обязательному обследованию на малярию. Для выявления малярийного плазмодия под микроскопом рассматривают препарат крови «толстая капля», а также мазки крови.

Уход при зоонозных заболеваниях

Зоонозы – это инфекционные заболевания, передающиеся человеку от животных. К ним относятся чума, туляремия, сибирская язва.

Чума. У пациентов, больных чумой, вследствие поражения центральной нервной системы патологией токсического свойства нередко отмечаются бред, носящий галлюцинаторный характер, а также выраженное психическое возбуждение. В связи с этим они нуждаются в постоянном наблюдении. При осуществлении ухода за «тяжелыми» пациентами внимательно следите за состоянием функций сердечнососудистой системы, поскольку ее поражение является частой причиной летального исхода при данном заболевании. Если развивается легочная форма чумы, то у больного нарастает одышка, отмечаются цианоз и прочие симптомы дыхательной недостаточности. Для поддержания нормального уровня оксигенации крови, больному следует регулярно подавать кислород посредством носовых катетеров или маски.

Осуществление ухода за «тяжелыми» больными чумой в бессознательном состоянии предполагает контроль чистоты ротовой полости, глотки и носовых ходов. Следует предпринимать необходимые меры, направленные на предотвращение возникновения пролежней, которые чрезвычайно быстро развиваются в связи с выраженным поражением сосудов кожи. Все медицинские работники, контактирующие по роду деятельности с больными чумой, должны быть в обязательном порядке вакцинированы против данного вида инфекции.

Для работы в специализированном чумном стационаре используется защитная противочумная одежда – так называемый костюм 1-го типа, включающий:

5) ватно-марлевую маску на лицо;

Костюм данного типа надевается медицинскими работниками при осуществлении ухода за пациентом, у которого диагностированы легочная и септическая формы чумы.

В процессе ухода за больным с бубонной формой чумы допустимо снимать защитные очки и маску-респиратор, надевать противочумной костюм 2-го типа. Особенно пристальное внимание в стационаре, где размещаются больные чумой, уделяется проведению текущей дезинфекционной обработки, уничтожению насекомых (дезинсекции) и грызунов (дератизации).

Сибирская язва. При кожной форме сибирской язвы чрезвычайно важно не травмировать те участки кожных покровов, на которых происходит развитие острых воспалительных изменений (сибиреязвенный карбункул), поскольку это может стать причиной возникновения тяжелого септического состояния, способного привести к смерти больного. Самого пациента нужно предупредить о том, чтобы он не трогал образовавшиеся на коже пузырьки и не пытался удалить корочки с карбункулов. Одежда больного, особенно на шее, не должна касаться карбункулов, натирать их – во избежание срывания. Медсестра, в чьи обязанности входит забор материала для лабораторных исследований и наложение лечебных повязок, должна соблюдать максимальную осторожность и аккуратность, чтобы не травмировать область грануляционного вала на границе очага некроза тканей.

Уход за тяжелыми больными с различными формами сибирской язвы не имеет принципиальных отличий от ухода при иных заболеваниях инфекционного генеза, характеризующихся преимущественным поражением легких и кишечника. При заборе материала для бактериологического исследования и при обычных манипуляциях, осуществляемых при уходе за больным, медицинский работник должен надевать стерильные резиновые перчатки.

Туляремия. У пациентов с тяжелым течением туляремии в начальном периоде заболевания нередко отмечаются рвота, вызванная общей интоксикацией, и кровотечение. В случае рвоты для пред отвращения аспирации рвотными массами поверните голову больного набок и немного наклоните ее вниз.

С целью купирования носового кровотечения положите больного в горизонтальное положение на спине, уберите подушку и поместите в носовые ходы ватные или марлевые тампоны. Если кровотечение не останавливается, срочно вызывайте специалиста-оториноларинголога для осуществления задней тампонады полости носа.

При бубонной форме заболевания для скорейшего рассасывания бубона на его область целесообразно поместить согревающий компресс или сухое тепло. При ангинозно-бубонной форме туляремии нужно периодически выполнять полоскание полости рта и глотки слабым раствором дезинфицирующего средства, например 0,05%-ным раствором перманганата калия или 0,02%-ным раствором фурацилина. В случае развития глазобубонной формы заболевания пораженный глаз в утреннее время после сна следует промывать теплым 1 – 2%-ным раствором пищевой соды или обычной кипяченой водой, а затем в течение дня 2 – 3 раза закапывать 20 – 25%-ные растворы сульфацила натрия (альбуцида).

При осложнении заболевания пневмонией больному необходимо периодически давать кислород с помощью маски или носовых катетеров. В палатах следует регулярно проводить текущую дезинфекционную обработку, закрывать окна и двери противомоскитными сетками, использовать репелленты против крылатых насекомых, поскольку они являются переносчиками возбудителя заболевания.

источник

РЦРЗ (Республиканский центр развития здравоохранения МЗ РК)
Версия: Клинические протоколы МЗ РК — 2017

Брюшной тиф –острое инфекционное заболевание человека, вызванное Salmonellatyphi, характеризующееся длительной лихорадкой, интоксикацией, розеолезной сыпью, поражением лимфоидного аппарата кишечника и образованием язв в тонкой кишке.
Паратифы – инфекции тифо-паратифозной группы, протекающие с температурной реакцией, интоксикационным синдромом, кожными высыпаниями, диспепсическими расстройствами различной степени выраженности.

ВВОДНАЯ ЧАСТЬ

Дата разработки: 2017 год.

Сокращения, используемые в протоколе:

Пользователи протокола: врачи общей практики, детские инфекционисты, педиатры, фельдшера, врачи скорой медицинской помощи, хирурги.

Категория пациентов: дети.

Шкала уровня доказательности:

— Ведущие специалисты в сфере ВРТ из Казахстана, СНГ, США, Европы, Великобритании, Израиля и Японии
— Симпозиумы, дискуссии, мастер-классы по актуальным проблемам

Брюшной тиф
По типу:
· типичные;
· атипичные: стертая и субклиническая формы; протекающие с преимущественным поражением отдельных органов –пневмотиф, нефротиф, колотиф, менинготиф, холанготиф.

По форме тяжести:
· легкая;
· среднетяжелая;
· тяжелая.

По характеру течения:
· гладкое;
· негладкое (обострения, рецидивы, формирование хронического носительства, осложнения: специфические -кишечное кровотечение, перфорация кишечника и неспецифические–пневмония, ИТШ, паротит, холецистит, тромбофлебит и др.).

Паратифы:
· по этиологии – А,В,С;

по типу:
· типичные;
· атипичные.

типичные формы:
· гастроинтестинальная;
· тифоподобная;
· септическая.

по тяжести:
· легкая;
· среднетяжелая;
· тяжелая.

МЕТОДЫ, ПОДХОДЫ И ПРОЦЕДУРЫ ДИАГНОСТИКИ И ЛЕЧЕНИЯ [1,2,3,6]

Жалобы:
· повышение температуры тела;
· вялость, адинамия, анорексия;
· упорная головная боль, бессонница;
· бред, галлюцинации, потеря сознания;
· запоры;
· вздутие живота;
· судороги;
· рвота.

Анамнез:
У детей раннего возраста и новорожденных:
· острое начало заболевания;
· более короткий лихорадочный период;
· возможны катаральные явления;
· возможны менингеальный и энцефалитический
· синдромы при нормальном составе ликвора;
· реже наблюдается экзантема;
· не наблюдается относительная брадикардия, дикротия пульса;
· чем моложе ребенок, тем чаще регистрируется диарейный синдром;
· ангина Дюге не встречается;
· реже регистрируется лейкопения;
· редко наблюдаются кишечные кровотечения и перфорации;
· часто развиваются неспецифические осложнения;
· более тяжелое течение;
· возможен летальный исход.

NB! У детей старшего возраста:
· заболевание начинается с упорной головной боли, бессонницы, нарастающего повышения температуры тела, усиливающейся интоксикации;
· после возникает угнетение психической деятельности, а при тяжелых формах –тифозный статус. Последний проявляется оглушенностью больных, бредом, галлюцинациями, потерей сознания;
· периоды заболевания: нарастания клинических симптомов (5–7 дней), разгара (7–14 дней), угасания (14–21 день) и реконвалесценции (после 21 дня болезни);
· средняя продолжительность лихорадочного периода при брюшном тифе в современных условиях составляет 13–15 дней. В остром периоде у большинства заболевших температура тела повышается до 39–40 0 C;При тяжелых формах брюшного тифа лихорадка имеет постоянный характер. Следует отметить, что чем меньше суточные температурные размахи, тем тяжелее протекает заболевание. При легких и среднетяжелых формах наблюдается ремиттирующая или интермиттирующая лихорадка. В современных условиях преобладает лихорадка неправильного, или ремиттирующего, типа, что затрудняет клиническую диагностику инфекции. Изменения со стороны органов пищеварения

Физикальное обследование [1,2,3,6]:
· стойкая лихорадка до 39–40 о С;
· сухие, потрескавшиеся (фулигинозные) губы, могут определяться герпетические высыпания на губах;
· фулигинозный язык – увеличенный, обложенный густым, коричневым (или грязно серым) налетом;
· ангина Дюге;
· метеоризм;
· гепатоспленомегалия;
· запоры (редко диарея в виде «горохового пюре»);
· увеличение мезентериальных лимфатических узлов (симптом Падалки – урчание и укорочение перкуторного звука в правой подвздошной области живота);
· относительная брадикардия, дикротия пульса, снижение АД, приглушенность или глухость сердечных тонов;
· на 8 — 11 день появление на коже живота и боковых отделах грудной клетки скудной розеолезной сыпи (2-3 мм в диаметре) с тенденцией к «подсыпанию»; исключительно редко – на лице;
· желтушное окрашивание кожи ладоней и подошв (симптом Филипповича);
· при тяжелых формах «тифозный статус», который проявляется оглушенностью, бредом, галлюцинациями, потерей сознания.

Атипичные формы брюшного тифа:
стертая форма брюшного тифа: выраженные симптомы интоксикации отсутствуют, температура тела повышается до субфебрильных цифр, может наблюдаться кратковременное разжижение стула. Диагностика возможна только на основании бактериологического и серологического исследований, а также при развитии специфических осложнений.

субклиническая форма брюшного тифа манифестных проявлений не имеет и обычно выявляется в очагах после проведения дополнительных обследований.
· пневмотиф;
· нефротиф;
· менинготиф;
· энцефалотиф;
· колотиф;
· тифозный гастроэнтерит;
· холанготиф.
NB!При перечисленных разновидностях заболевания в клинической картине на первый план выступают поражения отдельных органов.

Бактерионосители брюшного тифа подразделяются на категории:
1) транзиторные бактерионосители – лица, не болевшие брюшным тифом и паратифами, но выделяющие возбудителей брюшного тифа или паратифов;
2) острые бактерионосители – лица, переболевшие брюшным тифом и паратифами, у которых отмечается бактерионосительство в течение первых трех месяцев после выписки из больницы;
3) хронические бактерионосители – лица, переболевшие брюшным тифом и паратифами, у которых отмечается бактерионосительство в течение трех и более месяцев после выписки из больницы.

Паратиф А – инкубационный период составляет в среднем 6-10 суток. Характерно острое начало заболевания с быстрым повышением температуры тела и наличием в начальном периоде катаральных явлений – насморка, кашля. Лицо больных гиперемировано, сосуды склер инъецированы. Температурная реакция не столь постоянна, как при брюшном тифе, часто принимает неправильный характер, а длительность её меньше. Экзантема появляется рано (4-7-й день болезни). Она более обильная и располагается не только на коже живота и груди, но и на конечностях. Характерны полиморфизм высыпаний и «подсыпания» в динамике заболевания. Чаще заболевание протекает в среднетяжёлой форме, интоксикация выражена умеренно, а её продолжительность меньше, чем при брюшном тифе. Так же, как и брюшной тиф, заболевание может принять рецидивирующее течение.

Паратиф В – инкубационный период составляет 5-10 дней. Заболевание начинается остро, характерно развитие гастроэнтерита с абдоминальными болями и повышением температуры тела. Температурная реакция носит неправильный характер и относительно укорочена по времени. Так же, как при паратифе А, сыпь может носить разнообразный характер, быть обильной и располагаться не только на туловище, но и на конечностях. Чаще заболевание протекает в среднетяжёлой форме, однако известны случаи тяжёлого течения паратифа В с развитием менингита, менингоэнцефалита и септикопиемии.

Паратиф C – в отличие от паратифа A или B протекает в следующих формах:
· в гастроэнтеритической форме, которая возникает при пищевом пути инфицирования, характеризуется коротким инкубационным периодом, который при массивной инвазии может продолжаться всего в течение нескольких часов. Для начала заболевания характерны многократная рвота, боли в животе и диарейный синдром. Испражнения жидкие, обильные, имеют резкий запах, нередко может отмечаться наличие мутной слизи, зелени, напоминающих болотную тину;
· в тифоподобной форме, не отличающейся клиническими проявлениями от таковых при брюшном тифе;
· в септической форме, которая характеризуется ремитирующей лихорадкой (суточные колебания температуры тела в пределах 1,5-2 С, но при этом температура не снижается до нормальных значений), тяжелым общим состоянием, а также высыпаниями на кожных покровах и наличием гнойных очагов во внутренних органах с частым развитием паренхиматозного гепатита, гнойного менингита, остеомиелита и др.

Лабораторные исследования[1-6]:
В начальном периоде заболевания (до 5-7 дня болезни):
· гемограмма – лейкопения (первые 2-3 дня возможен лейкоцитоз), анэозинофилия, относительный лимфоцитоз, нейтропения с палочкоядерным сдвигом, незначительное ускорение СОЭ;
· выделение гемокультуры Salmonellatyphi – возможен положительный результат на протяжении всего лихорадочного периода при посеве крови в количестве 5-10 мл в стерильный флакон (на 50-100 мл с 10-20% желчным бульоном или средой Раппопорта);
· реакция Видаля с О- и Н – антигенами – антитела к О- антигенам появляются на 4-5 сутки, их уровень снижается в период реконвалесценции. Положительным считается титр 1:200 и его нарастание в динамике;
· метод РНГА – обнаружение специфических антител к О-антигену Salmonellatyphi, «диагностический» титр 1:200 и выше; имеет диагностическое значение 2, 3, 4-х и более кратная динамика титра в парных сыворотках: первая сыворотка при поступлении (на 4 -5 день заболевания), вторая — через 10-14 дней и позднее после взятия первой пробы крови). Нарастание титров специфических антител в серологических реакциях свидетельствует об остро протекающем инфекционном процессе;
· ИФА– обнаружение вкрови специфическихIgM – указывает на текущий инфекционный процесс иIgG свидетельствует о вакцинальной природе антител или перенесенном раннее брюшном тифе;
· ПЦР кала и крови– обнаружение ДНК Salmonellatyphi.
В периоде разгара болезни (начиная со 2-й недели болезни)
· дополнительно – выделение копро-, уро- и биликультуры Salmonellatyphi;
· метод РНГА – обнаружение специфических антител к О-антигену Salmonellatyphi, «диагностический» титр 1:200 и выше; через 10-14 дней и позднее после взятия первой пробы крови;
· реакция Видаляс Н – антигенами. Антитела к Н — антигенам появляются на 8-10 сутки и сохраняются 2-3 месяца после выздоровления. Положительным считается титр 1:200 и при его нарастании в динамике.
По показаниям:
· посев скарификата розеол, мокроты, СМЖ с выделением возбудителя.
Критерии диагностической значимости:
· положительная реакция РНГА с Н-антигеном свидетельствует о перенесенном раннее заболевании; с Vi-антигеном о хроническом брюшнотифозном носительстве;

Инструментальные исследования:
Рентгенологические методы исследования грудной клетки (возможен пневмотиф) по показаниям;
· ЭКГ – для исключения миокардита при тяжелых формах брюшного тифа.

Показания для консультации специалистов:
· консультация хирурга при подозрении или развитии кишечного кровотечения, или перфорации кишечника;
· консультация других узких специалистов – по показаниям.

Диагностический алгоритм [10]:

источник

4.2. БИОЛОГИЧЕСКИЕ И МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ФАКТОРЫ

Бактериологическая диагностика брюшного тифа и паратифов А, В и С

Дата введения: с момента утверждения

1. РАЗРАБОТАНЫ: ФГУН Санкт-Петербургский НИИЭМ им. Пастера Роспотребнадзора (Л.А.Кафтырева, З.Н.Матвеева, Г.Ф.Трифонова); ГОУВПО «Санкт-Петербургская государственная медицинская академия им. И.И.Мечникова» Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию (А.Г.Бойцов).

2. РЕКОМЕНДОВАНЫ К УТВЕРЖДЕНИЮ Лабораторным Советом Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (протокол от 24.12.07 N 11фц/5327).

3. УТВЕРЖДЕНЫ Руководителем Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации Г.Г.Онищенко 29 декабря 2007 г. 0100/13745-07-34

4. ВВЕДЕНЫ В ДЕЙСТВИЕ с момента утверждения.

1.1. В методических рекомендациях изложены основные принципы и особенности бактериологической диагностики брюшного тифа и паратифов А, В и С; содержатся современные сведения о биологических свойствах возбудителей, резистентности к антибактериальным препаратам, о питательных средах для их выделения и особенностях дифференциации возбудителей брюшного тифа и паратифов от других серологических вариантов сальмонелл.

1.2. Методические рекомендации предназначены для специалистов микробиологических лабораторий, проводящих соответствующие исследования.

АБП — антибактериальный препарат

ВСА — висмут-сульфит агар

ЛПУ — лечебно-профилактическое учреждение

МПК — минимальная подавляющая концентрация

П — промежуточный

У — устойчивый

Ч — чувствительный

РИФ — реакция иммунофлюоресценции

ЦНС — центральная нервная система

В таблицах:

«+» — положительная реакция в первые сутки;

«-» — отрицательная реакция на 4-20 сутки;

«(+)» — замедленная положительная реакция на 2-20 сутки;

d — различные ферментативные реакции.

Возможна дифференциация на ферментативные варианты.

3.1. Брюшной тиф и паратифы А, В и С являются антропонозными кишечными инфекциями, вызываемыми микроорганизмами Salmonella Typhi, Salmonella Paratyphi A, Salmonella Paratyphi В и Salmonella Paratyphi С. В настоящее время чаще регистрируется брюшной тиф, реже — паратиф В, редко — паратиф А и крайне редко — паратиф С.

3.2. Заболевания характеризуются язвенным поражением лимфатической системы тонкой кишки, бактериемией, лихорадкой, циклическим клиническим течением с выраженной интоксикацией, розеолезной сыпью на кожных покровах туловища, гепато- и спленомегалией. Более характерен запор, нежели диарея. Изъязвление пейеровых бляшек подвздошной кишки примерно в 1% случаев приводит к кишечному кровотечению и прободению кишечника с самыми неблагоприятными последствиями для больного.

3.3. Диагноз брюшного тифа и паратифов А, В и С ставится на основании клинических признаков болезни с учетом эпидемиологического анамнеза и данных комплексного лабораторного обследования, которое включает классические бактериологический и серологический методы. Бактериологическая диагностика имеет приоритетное значение, т.к. в этом случае удается получить наиболее полную информацию о биологических свойствах возбудителя, включая его чувствительность к антибактериальным препаратам.

3.4. Применение антимикробных препаратов для этиотропной терапии брюшного тифа и паратифов позволило, с одной стороны, снизить летальность с 10-20% до уровня менее 1%, а с другой стороны — осложнило лабораторную диагностику, т.к. нередко забор материала для лабораторного исследования осуществляется уже после начала антибиотикотерапии. Этот факт заставляет более тщательно подходить к вопросу выбора материала для исследования, взятия исследуемого материала, техники исследования.

3.5. Современной особенностью эпидемиологии брюшного тифа является резкое увеличение частоты завоза (заноса) инфекции с эндемичных по этому заболеванию территорий, стран ближнего и дальнего зарубежья, а также заражение жителей России при выезде в эти страны и в процессе миграции внутри страны. Другой особенностью является наличие обширного контингента высокого эпидемиологического риска в виде лиц без определенного места жительства, среди которых регистрируется высокая заболеваемость брюшным тифом.

3.6. Данные методические рекомендации составлены с целью унификации методов бактериологической диагностики брюшного тифа и паратифов А, В и С, а также правильной интерпретации результатов лабораторного исследования с учетом современных особенностей клиники, лечения и эпидемиологической обстановки на конкретных территориях.

Показанием к проведению бактериологического исследования биологического материала на наличие возбудителей брюшного тифа и паратифов А, В и С является необходимость обследования:

4.1) больных с подозрением на тифопаратифозное заболевание, а также с лихорадкой неясной этиологии, продолжающейся 5 и более дней;

4.2) лиц, общавшихся с больными брюшным тифом и паратифами А, В, С;

4.3) работников отдельных профессий, производств и организаций при поступлении на работу и по эпидемиологическим показаниям;

4.4) лиц перед поступлением в стационары и специализированные санатории по клиническим и эпидемиологическим показаниям;

4.5) лиц при оформлении на стационарное лечение в больницы (отделения) психоневрологического (психосоматического) профиля, дома престарелых, интернаты для лиц с хроническими психическими заболеваниями и поражениями ЦНС, в другие типы закрытых учреждений с круглосуточным пребыванием;

4.6) больных брюшным тифом и паратифами после исчезновения клинических симптомов перенесенного заболевания перед выпиской из стационара;

4.7) лиц, переболевших брюшным тифом и паратифами, во время диспансерного наблюдения;

4.8) хронических бактерионосителей, выявленных среди работников отдельных профессий, производств и организаций, при повторном поступлении на работу на указанные предприятия и объекты;

4.9) секционного материала при подозрении на заболевание брюшным тифом и паратифами.

5.1. Стандартное испытательное и вспомогательное оборудование, средства измерения для микробиологических лабораторий.

5.2. Питательные среды, диагностические сыворотки и химические реагенты для культивирования, выделения, идентификации и определения чувствительности к антибактериальным препаратам возбудителей брюшного тифа и паратифов А, В и С.

5.3. Для лабораторной диагностики тифо-паратифозных заболеваний и выявления бактерионосителей должны использоваться питательные среды и реагенты, разрешенные к применению на территории Российской Федерации в установленном порядке.

6.1. Принцип бактериологического метода основан на обнаружении живых микроорганизмов в различных биологических субстратах (кровь, моча, кал, желчь, костный мозг, розеолы) в зависимости от стадии заболевания. Для этого производят посев определенного количества биологического материала на специальные питательные среды с последующей инкубацией в термостате и идентификацией выросших колоний микроорганизмов, характерных для S. Typhi, S. Paratyphi A, S. Paratyphi В и S. Paratyphi С, по культурально-ферментативным свойствам и антигенной характеристике.

6.2. Только бактериологическое исследование может обеспечить точную постановку этиологического диагноза и контроль освобождения организма от возбудителя. В отношении дифференциальной диагностики брюшного тифа и паратифов единственным методом является лабораторное исследование биологического материала с выделением возбудителя и идентификация его до уровня серологического варианта, т.к. клиническое течение инфекционного процесса не всегда позволяет различить эти нозологические формы.

7.1. Выделение возбудителей брюшного тифа и паратифов А, В и С проводят по одной и той же схеме бактериологического исследования биоматериалов.

7.2. Порядок сбора материала для лабораторных исследований на тифо-паратифозные заболевания определен СП 3.1.1.2137-06.

7.3. Техника сбора и транспортирования биоматериалов в микробиологические лаборатории описана в МУ 4.2.2039-05.

7.4. Материалом для бактериологического исследования с целью диагностики брюшного тифа и паратифов являются:

кровь;

испражнения;

моча;

желчь (дуоденальное содержимое).

Возбудители могут быть также выделены из:

розеол;

костного мозга;

грудного молока.

Материалом для бактериологического исследования с целью выявления бактерионосителей, согласно СП 3.1.1.2137-06, являются:

испражнения;

моча;

желчь (дуоденальное содержимое).

7.5. Исследование секционного материала проводится с целью уточнения диагноза.

7.6. Сбор биологического материала для лабораторных исследований осуществляется до начала этиотропного лечения: медицинским работником, заподозрившим тифо-паратифозную инфекцию; при групповой и вспышечной заболеваемости — специалистами учреждений Роспотребнадзора и персоналом лечебно-профилактических учреждений. От госпитализируемых больных материал для бактериологического исследования забирается в приемном отделении стационара.

7.7. От лиц, общавшихся с больными или носителями (контактными), сбор материала проводится медицинскими работниками ЛПУ и других организаций и учреждений по месту выявления больных.

7.8. Биоматериал для лабораторного исследования сопровождают специальным направлением. Доставка материала самими обследуемыми не допускается. При невозможности своевременной доставки материала используют консерванты и транспортные среды (табл.1).

Показанием к исследованию крови является подозрение на тифо-паратифозные заболевания или лихорадочное состояние невыясненного происхождения (лихорадка неясного генеза), наблюдающееся в течение 5 и более дней (СП 3.1.1.2137-06).

Соотношение кровь — питательная среда должно быть 1:10-1:60. Количество независимо отбираемых проб крови и время их взятия определяется лечащим врачом согласно МУ 4.2.2039-05 при лихорадке неясного генеза или согласно МУ 04-723/3 МЗ СССР (1984) при подозрении на тифо-паратифозные заболевания. У больных, получающих антибактериальные препараты, пробы необходимо собирать непосредственно перед введением (приемом) следующей дозы препарата.

При наличии лихорадки оптимальным является взятие крови на фоне повышения температуры тела (но не на пике температуры!). Посев на питательные среды проводят непосредственно у постели больного.

При подозрении на тифо-паратифозные заболевания для посева крови можно использовать среду Рапопорт, 20%-й желчный бульон, мясопептонный бульон с добавлением 1%-й глюкозы (во флаконах по 100 мл). Ранее использовали посев крови в стерильную дистиллированную (водопроводную) воду. Однако предпочтительнее использовать специальные среды для посева крови.

Количество засеваемой крови в разгар лихорадки может составлять 10 мл, в более поздние сроки — до 20 мл (у детей — до 5 мл).

При лихорадке неясного генеза продолжительностью более 5 дней, как правило, должны исследоваться несколько проб крови. Взятие крови из вены проводят согласно МУ 4.2.2039-05. Это необходимо для дифференциации истинной бактериемии от случайной контаминации крови при венопункции (вероятность загрязнения пробы вследствие случайного прокола сальной или потовой железы составляет 3%). Для посева крови в этом случае используют две среды: 1) среду для аэробов и факультативных анаэробов и 2) среду для облигатных анаэробов (например, «двойная» среда + тиогликолевая среда согласно приказу МЗ СССР от 12.04.85 N 535) или универсальную среду для аэробов и анаэробов.

Предпочтительно использовать промышленно произведенные среды, разрешенные к применению в России.

Посевы инкубируют при 37 °С в течение 10 суток с ежедневным просмотром. При этом флаконы с «двойной» средой наклоняют, омывая плотную часть среды.

При отсутствии признаков роста на 10-й день выдается отрицательный ответ.

При наличии признаков роста (помутнение, покраснение среды Рапопорт, появление видимых колоний на плотной части «двойной» среды) проводят высев параллельно на полиуглеводную среду и плотную среду в чашках Петри (кровяной агар в случае лихорадки неясного генеза и среда Эндо при подозрении на тифо-паратифозные заболевания).

Прямой высев на полиуглеводные среды проводят для сокращения сроков исследования, исходя из предположения, что при посеве крови с высокой вероятностью будет наблюдаться рост монокультуры возбудителя. Для контроля этого предположения и выделения чистой культуры путем откола отдельных колоний необходим параллельный высев на среду Эндо или кровяной агар.

Если на этих средах наблюдается рост монокультуры, то можно учитывать биохимические свойства по полиуглеводной среде. Для контроля чистоты культуры необходимо провести микроскопию мазка с полиуглеводной среды, окрашенного по Граму. На этом этапе возможна также постановка реакции агглютинации на стекле с соответствующими агглютинирующими О- и Н-сальмонеллезными сыворотками и выдача предварительного ответа.

Схема бактериологического исследования крови пациентов с подозрением на брюшной тиф и паратифы представлена на рис.1.

Рис.1. Схема бактериологического исследования крови пациентов с подозрением на брюшной тиф и паратифы

Схема бактериологического исследования крови пациентов при лихорадке неясного генеза представлена на рис.2.

Рис.2. Схема бактериологического исследования крови пациентов с лихорадкой неясного генеза

Ход дальнейшей идентификации культуры по культурально-морфологическим, ферментативным свойствам и серологической характеристике изложен далее в соответствующих разделах.

Транспортные среды и консерванты, наиболее часто используемые для транспортирования испражнений

всех кишечных патогенов, включая кампилобактерии

всех энтеробактерий, кроме иерсиний; предпочтительна для шигелл

всех энтеробактерий, включая кампилобактерии

Пробы испражнений, собранные непосредственно из прямой кишки с помощью ректального тампона, используют преимущественно для объективизации диагноза (МУ 4.2.2039-05). Взятие материала осуществляется средним медицинским персоналом. Как правило, специальный зонд для взятия мазка входит в состав транспортной системы. Важно отметить, что попадание транспортных сред на слизистую прямой кишки недопустимо! Поэтому ректальный тампон должен погружаться в транспортную среду только после взятия материала. Больного просят лечь на бок с притянутыми к животу бедрами и ладонями развести ягодицы. Зонд-тампон вводят в задний проход на глубину 4-5 см и, аккуратно вращая его вокруг оси, собирают материал с крипт ануса. Осторожно извлекают зонд-тампон и погружают его в транспортную среду. Транспортирование тампона без среды не допускается.

В лаборатории посев проб испражнений проводят непосредственно на плотные дифференциально-диагностические питательные среды и параллельно на среду обогащения.

Схема бактериологического исследования испражнений представлена на рис.3.

Рис.3. Схема бактериологического исследования испражнений

Из нативных испражнений готовят суспензию в 0,9%-м растворе хлорида натрия в соотношении 1:5-1:10, оставляют на 30 мин для оседания крупных частиц. После этого одну каплю надосадочной жидкости засевают на чашки с плотными питательными средами и 1 мл суспензии — в среду обогащения (соотношение материал-среда должно быть 1:5).

Испражнения, доставленные в лабораторию в консерванте (транспортной среде), перед посевом должны быть тщательно гомогенизированы в среде, после чего проводят прямой посев материала на плотные среды и среду обогащения в тех же соотношениях, что и нативные испражнения.

Пробы испражнений, собранные с помощью ректального тампона, исследуются аналогично испражнениям, доставленным в консерванте. Следует помнить, что ректальный тампон содержит меньшее количество микроорганизмов по сравнению с нативными испражнениями, поэтому посевная доза должна быть увеличена.

Максимальное выявление S. Typhi, S. Paratyphi A, S. Paratyphi В и S. Paratyphi С в испражнениях достигается при использовании сред обогащения, хотя у больных в остром периоде заболевания возбудитель достаточно часто выделяют и при прямом посеве. Посев на среды обогащения параллельно с прямым высевом обязателен!

Все посевы инкубируют при 37 °С на дифференциально-диагностических средах 18-24 ч, на висмут-сульфит агаре — 24-48 ч. Через 24 ч проводят высев со сред обогащения на плотные среды (висмут-сульфит агар или среду Эндо). Колонии, характерные для данных возбудителей, выросшие на плотных средах, отсевают на полиуглеводную среду.

Необходимо отметить, что техника распределения материала по поверхности чашки с плотными средами должна обеспечить рост изолированных колоний типичного вида, по которому можно визуально оценить культуральные свойства микроорганизма.

Для выделения S. Typhi предпочтительнее использовать висмут-сульфит агар (ВСА). Типичные колонии S. Typhi имеют черный цвет и окружены черным или коричневым ободком с металлическим блеском. Однако при обильном росте S. Typhi часто не дает характерного почернения ВСА, поэтому чашки должны быть засеяны так, чтобы обеспечить рост отдельных колоний.

Пробы фекалий можно засевать на стандартные селективные среды для энтеробактерий, разрешенные к применению на территории Российской Федерации. Тем не менее, для выделения S. Турhi предпочтительнее всего использовать висмут-сульфит агар. Ход дальнейшей идентификации культур по ферментативным свойствам и серологической характеристике изложен далее в соответствующих разделах.

Посев мочи производят для диагностики с первых дней заболевания и вплоть до выписки больного, а также с целью выявления бактерионосительства. Так как при тифе и паратифах выделение возбудителя с мочой происходит периодически и кратковременно, исследования мочи необходимо проводить повторно с промежутками 5-7 дней.

Следует строго придерживаться общих правил сбора мочи, изложенных в МУ 4.2.2039-05. Вне зависимости от способа получения мочи, она должна быть доставлена в лабораторию в течение 2 ч. В крайнем случае допускается хранение мочи в течение ночи в холодильнике.

Следует помнить, что в зависимости от химического состава мочи бактерии в ней могут при хранении как отмирать, так и размножаться.

Увеличение срока сохранения материала может крайне затруднить интерпретацию результата.

Производят прямой посев мочи (или осадка после центрифугирования) без предварительного обогащения согласно приказу МЗ СССР N 535 на плотные дифференциально-диагностические среды, рекомендуемые для сальмонелл, в том числе возбудителей брюшного тифа и паратифов. Параллельно нативная моча засевается в среды обогащения двойной концентрации в соотношении 1:1 или осадок мочи — в среды обычной концентрации. Посевы помещают в термостат при 37 °С на 18-24 ч, а затем со среды обогащения производят высев на плотные дифференциально-диагностические среды. Колонии, выросшие на плотных средах, идентифицируют по культурально-ферментативным и серологическим свойствам.

Желчь собирают в три стерильные пробирки или стерильные одноразовые контейнеры раздельно по порциям А, В, С согласно МУ 4.2.2039-05 и доставляют в лабораторию.

Проводят исследование каждой порции (А, В, С) отдельно или готовят смесь из трех порций. Пробы засевают:

на плотные дифференциально-диагностические среды (ВСА, Эндо, ЭМС или др.) в количестве 0,5 мл;

в пробирку (флакон) с питательным бульоном в соотношении 1:10. Нет необходимости засевать желчь на среды обогащения, т.к. желчь сама является хорошей питательной средой для возбудителей брюшного тифа и паратифов.

Засеянные среды вместе с остатками желчи инкубируют при 37 °С.

Через 18-24 ч просматривают посевы на плотных питательных средах (результаты роста на ВСА учитывают через 24 и 48 ч) и делают пересев подозрительных колоний на полиуглеводную среду.

Из питательного бульона производят высевы на плотные дифференциально-диагностические среды.

Из оставшейся желчи в случае отрицательного результата прямого посева делают повторные высевы на плотные дифференциально-диагностические среды через 18-24 ч и на 3, 5, 7 и 10 сутки.

Проводят идентификацию выросших микроорганизмов по культурально-морфологическим, ферментативным и серологическим свойствам.

Бактериологическое исследование («соскоб» с розеол) проводят при наличии хорошо выраженных розеол. Материал собирают асептически. Для этого участок кожи над розеолами обрабатывают 70%-м этиловым спиртом, затем протирают ватным тампоном, смоченным стерильным 0,9%-м раствором хлористого натрия и осушают стерильным тампоном.

Материал для исследования (тканевую жидкость) получают путем скарификации кожи над розеолой с помощью скальпеля. На поврежденную кожу наносят 1-2 капли желчного бульона или изотонического раствора хлорида натрия, смешивают с выступившей тканевой жидкостью и собирают пастеровской пипеткой или аналогичным одноразовым стерильным устройством в пробирку с одной из жидких сред обогащения (желчный бульон, среда Рапопорт и др.). В лаборатории посев выдерживают при 37 °С 18-24 ч с последующим высевом на плотные дифференциально-диагностические среды (Эндо, ЭМС, ВСА).

Дальнейшее исследование проводят, как при бактериологическом исследовании другого биологического материала.

Хорошо известно, что при лабораторном подтверждении диагноза «брюшной тиф» наиболее результативным является бактериологическое исследование костного мозга (высеваемость возбудителя составляет 90-95%). Даже у пациентов с легкими и стертыми формами брюшного тифа, трудными для клинического распознавания, а также на фоне приема антимикробных препаратов, высеваемость миелокультур значительно выше, чем гемокультур.

Однако на практике бактериологическое исследование костного мозга проводится очень редко, только по особым клиническим показаниям, при отсутствии других лабораторных данных, подтверждающих диагноз брюшной тиф или паратиф, т.к. эта инвазивная процедура достаточно травматична. Забор материала для исследования проводят только в условиях стационара при наличии соответствующего специалиста.

Материал для бактериологического исследования (аспират) в количестве 0,50-0,75 мл получают асептически, путем проведения пункции грудины (рукоятки или тела) и засевают в пробирку с одной из сред обогащения (желчный бульон, среда Рапопорт и др.).

Если аспират невозможно засеять в среду обогащения сразу после пункции, его собирают в стерильную пробирку и немедленно направляют в лабораторию, где производится посев в среду обогащения. В лаборатории посевы инкубируют при 37 °С 18-24 ч с последующим высевом на плотные дифференциально-диагностические среды.

Дальнейшее исследование проводят, как при бактериологическом исследовании другого биологического материала.

Перечень питательных сред для выделения и идентификации возбудителей кишечных инфекций, в частности энтеробактерий, обширен и неуклонно расширяется. Выбор конкретных сред во многом обусловлен местными экономическими условиями и традициями. Тем не менее, при этом следует руководствоваться несколькими основными принципами.

14.1. В описании питательной среды должно быть указано, что она может быть использована не просто для выявления сальмонелл, а именно Salmonella Typhi и S. Paratyphi А, В и С.

14.2. Следует отдавать предпочтение сухим питательным средам известных производителей по сравнению со средами, непосредственно изготовляемыми в лаборатории.

14.3. Каждая партия питательной среды в лаборатории должна контролироваться с помощью тест-штаммов (внутренний контроль качества).

14.4. Для лабораторной диагностики тифо-паратифозных заболеваний и выявления бактерионосителей должны использоваться питательные среды и реагенты, разрешенные к применению на территории Российской Федерации в установленном порядке.

В настоящее время для изучения ферментативной активности микроорганизмов семейства Enterobacteriaceae, включая возбудителей брюшного тифа и паратифов, разработаны, выпускаются и зарегистрированы различные диагностические тест-системы отечественного и зарубежного производства (от наиболее простых классических сред Гисса в пробирках и планшетах до автоматических анализаторов). Если тест-системы позволяют идентифицировать микроорганизм до уровня рода и выявлять особенности ферментативной активности штаммов, то они могут быть использованы для идентификации возбудителей брюшного тифа и паратифов. Методика работы с тест-системами подробно изложена в инструкциях по применению и их следует строго соблюдать.

Подвижные грамотрицательные палочки не образуют спор и капсул, факультативные анаэробы хорошо растут на обычных питательных средах.

На простом питательном агаре — слегка выпуклые с ровным краем и гладкой поверхностью, влажные с блеском колонии более 1 мм.

На дифференциально-диагностических средах (содержащих лактозу как дифференцирующее вещество) — прозрачные, бесцветные или голубоватые, а иногда розоватые или цвета среды колонии (среды Эндо, Плоскирева, ЭМС и другие аналогичные среды).

На SS-arape — колонии цвета среды с черным центром.

На висмут-сульфитной среде — изолированные колонии S. Typhi, S. Paratyphi В — черные с характерным металлическим блеском, среда под колонией прокрашена в черный цвет. Колонии S. Paratyphi A — зеленоватые, светлые в цвет среды, нежные.

Штаммы S. Paratyphi В (возбудитель паратифа В) на мясопептонном агаре могут образовывать по периферии колоний приподнятый слизистый вал. Слизистый вал развивается на 2-5 сутки при хранении посевов при комнатной температуре. Этот признак не является постоянным и диагностическим.

Изучение ферментативных свойств проводится в отношении набора углеводов, многоатомных спиртов, аминокислот и других органических соединений, применяемых при идентификации и изучении сальмонелл и других энтеробактерий. Как правило, в практических лабораториях используют небольшое количество тестов, позволяющих идентифицировать основные роды, входящие в семейство кишечных бактерий. Характеристика ферментативных свойств сальмонелл, включая возбудителей брюшного тифа и паратифов А, В и С, представлена в табл.2.

Ферментативные свойства возбудителей брюшного тифа и паратифов А, В, С

Ферментативные варианты S. Typhi

Штаммы S. Paratyphi A:

ферментируют глюкозу с образованием кислоты и газа, как и большинство представителей рода Salmonella;

не продуцируют сероводород. На полиуглеводных средах отсутствует потемнение и почернение среды. Это свойство отражается на цвете колоний, вырастающих на висмут-сульфит агаре;

не растут на среде Симмонса, т.к. являются ауксотрофами и не способны утилизировать цитрат как единственный источник углерода;

дают отрицательную реакцию на среде с лизином (-) и положительную реакцию с орнитином и аргинином (+);

не ферментируют ксилозу (-);

ферментируют арабинозу (+)

Штаммы S. Paratyphi В

Ферментативная активность возбудителя паратифа В характерна для большинства представителей рода Salmonella, вида enterica, подвида 1 (enterica), вызывающих сальмонеллезную инфекцию у людей. Однако этот серовар включает два биологических варианта с одинаковой антигенной структурой, но различающихся по способности ферментировать d-тартрат. До 2001 г. в схеме Кауфмана-Уайта они относились к разным сероварам и имели различные названия: серовар S. Paratyphi В, штаммы которого d-тартрат отрицательные и серовар S. Java, штаммы которого ферментируют d-тартрат. Определение способности ферментировать d-тартрат имеет важное эпидемиологическое значение, так как S. Java (d-тартрат положительные штаммы) обычно выделяют от животных или из продуктов животного происхождения, подозреваемых в качестве источника или фактора передачи инфекции.

S. Paratyphi В (d-тартрат отрицательные), как правило, вызывают заболевания у людей и очень редко выделяются от животных. В 2001 г. серовар Java официально исключен из схемы Кауфмана-Уайта, и d-тартрат-положительные штаммы в современной схеме рассматриваются как биовар серовара S. Paratyphi В (табл.4).

Различные обозначения ферментативных вариантов S. Paratyphi В

Антигенная структура антигены

Серологический вариант по схеме Кауфмана-Уайта

Таким образом, в настоящее время серологический вариант S. Paratyphi В с антигенной структурой 1 , 4, [5], 12: b: 1,2 включает два биовара, различающихся по ферментации d-тартрата:

S. Paratyphi В d-тартрат и S. Paratyphi В d-тартрат .

Эти изменения в схеме Кауфмана-Уайта затрагивают только обозначения (названия) сальмонелл с одинаковой антигенной структурой и не касаются эпидемиологических особенностей заболеваний, вызываемых этими биологическими вариантами.

В повседневной практической работе можно сохранить старые названия этого серовара, однако знать об изменениях в схеме необходимо для того, чтобы правильно трактовать материалы зарубежной литературы. Прописи сред с d-тартратом представлены в МУ 04-723/3 МЗ СССР, 1984.

В случае выделения S. Paratyphi В от людей, объектов окружающей среды, животных или из продуктов животного происхождения, подозреваемых в качестве источника или фактора передачи инфекции, необходимо определять биовар по отношению к d-тартрату. Выполнение этой процедуры позволит избежать диагностических ошибок. Этот тест служит эпидемиологическим маркером штамма.

Штаммы S. Paratyphi С

Ферментативная характеристика штаммов S. Paratyphi С не имеет выраженных отличительных особенностей. Ферментативные реакции такие же, как и у других широко распространенных сероваров сальмонелл. На питательных средах штаммы S. Paratyphi С растут в виде характерных для сальмонелл колоний.

В то же время, следует помнить, что штаммы трех сероваров серологической группы С — S. Paratyphi С, S. Typhisuis и S. Choleraesuis — имеют практически одинаковую антигенную структуру и могут быть надежно дифференцированы по культуральным и ферментативным признакам, подтверждающим достоверность серологической идентификации возбудителя. На ВСА штаммы S. Typhisuis и S. Choleraesuis дают атипичные колонии: они образуют светло-зеленые колонии, видимые лишь к 48 ч инкубации (S. Choleraesuis — мелкие, S. Typhisuis — мельчайшие). Штаммы S. Typhisuis на среде Эндо растут в виде мелких колоний. Среда Плоскирева практически непригодна для выделения этого серовара, так как отмечается ингибирующий рост эффект: колонии мельчайшие, едва заметные невооруженным глазом, рост проявляется к 48 ч инкубации. В пределах серовара S. Choleraesuis известен вариант «kunzendorf», штаммы которого отличаются стойким отсутствием фазы 1 антигена Н («с») и ферментативными особенностями. Культуральные и ферментативные свойства этих сероваров необходимо знать и учитывать при идентификации, т.к. S. Typhisuis и S. Choleraesuis являются хозяин-адаптированными сальмонеллами для свиней. Характеристика ферментативных свойств этих сероваров представлена в табл.5.

Ферментативные свойства штаммов S. Paratyphi С, S. Typhisuis, S. Choleraesuis, S. Choleraesuis var. kunzendorf

Choleraesuis var. kunzendorf

Антигенная структура возбудителей брюшного тифа и паратифов А, В и С сложная, как у других представителей рода сальмонелл. В практической работе микробиологов при идентификации серологического варианта сальмонелл во внимание принимаются три основных антигенных комплекса: О-, Н-, Vi-. Именно этот принцип положен в основу антигенной классификации сальмонелл в схеме Кауфмана-Уайта.

Возбудители брюшного тифа и паратифов относятся к разным серологическим группам сальмонелл. Возбудитель брюшного тифа (Salmonella Typhi) принадлежит к серологической группе D, возбудитель паратифа A (Salmonella Paratyphi A) — к серологической группе А, возбудитель паратифа В (Salmonella Paratyphi В) — к серологической группе В, возбудитель паратифа С (Salmonella Paratyphi С) — к серологической группе С. Полная антигенная структура этих микроорганизмов представлена в табл.6.

Антигенная структура возбудителей брюшного тифа и паратифов А, В, С согласно схеме Кауфмана-Уайта (2001)

Примечание к таблице.

Схема Кауфмана-Уайта является таблицей антигенных формул известных сероваров сальмонелл и создана для целей практической идентификации штаммов. Детали, не нужные для определения серовара, в схеме не приводятся, однако некоторые из них будут обсуждены в данном примечании.

1. Антигены, входящие в состав О-антигенных комплексов, обусловленные фаговой конверсией, в схеме подчеркнуты (например, О-антиген 1 ). Эти антигены присутствуют только в том случае, если штаммы лизогенизированы соответствующим конвертирующим фагом.

2. [ ] = Факторы О-антигенного комплекса, указанные в квадратных скобках, могут присутствовать или отсутствовать у штаммов вне зависимости от фаговой конверсии (например, О-фактор [5] серогруппы В О : 4).

3. [ ] = Факторы Н-антигенов, заключенные в квадратные скобки, указывают, что они редко обнаруживаются и, как правило, были идентифицированы у «диких» штаммов. Например, подавляющее большинство штаммов S. Paratyphi А — монофазные. Они содержат Н-антиген 1-й фазы — «а». В редких случаях могут быть выделены дифазные штаммы S. Paratyphi А с антигеном 2-й фазы Н: 1,5. Поэтому в схеме в формуле этого серовара Н-антиген 2-й фазы указан в квадратных скобках [1,5].

4. Наиболее важными в идентификации возбудителя брюшного тифа и паратифа С являются идентификация Vi-антигена. Однако содержание этого антигена в культурах S. Typhi и S. Paratyphi С может варьировать. Соответственно количеству его в культурах, в частности S. Typhi, последние можно подразделить на три группы:

V-форма — содержит Vi-антиген в большом количестве и является О-инагглютинабельной;

W-форма — не имеет Vi-антигена и является О-агглютинабельной;

VW-форма — промежуточная, она содержит Vi-антиген и, тем не менее, является О-агглютинабельной.

Большинство штаммов S. Typhi содержит Vi-антиген, особенно развит он в свежевыделенных штаммах и культурах, выращиваемых при 37 °С.

Следует запомнить, что присутствие или отсутствие дополнительных О- или Н-факторов (подчеркнутых или в квадратных скобках) не влияет на определение серологического варианта штамма. В то же время, эти факторы интересны как эпидемиологические маркеры штаммов, принадлежащих к одному серовару.

5. Очень редко штаммы сальмонелл, включая возбудителей брюшного тифа и паратифов А, В и С, могут обладать так называемой «R-фазой» Н-антигена.

В практических лабораториях такие штаммы не смогут быть идентифицированы до уровня серовара при традиционном серотипировании.

Дальнейшее детальное изучение таких штаммов (идентичных по ферментативным свойствам S. Typhi, S. Paratyphi А, В, С) должно проводиться в национальных (региональных) сальмонеллезных центрах. Как правило, подтвердить серовар у таких штаммов можно с помощью дополнительных методов (молекулярно-генетических).

В настоящее время отмечен неуклонный рост резистентности штаммов энтеробактерий к широкому спектру антимикробных препаратов. Уже во второй половине прошлого столетия были зарегистрированы вспышки брюшного тифа, вызванные возбудителем, резистентным к левомицетину (в Мексике). В развивающихся странах Южной Азии (Индия, Бангладеш, Вьетнам, Пакистан и Таджикистан) и Южной Африки, эндемичных по брюшному тифу, появились штаммы S. Typhi, резистентные к нескольким антимикробным препаратам, традиционно применявшимся в качестве терапии первой линии — ампициллину, хлорамфениколу (левомицетину) и ко-тримаксозолу, и их число стало стремительно увеличиваться. В последние годы в странах Азии полирезистентные штаммы составляют до 80% всех выделенных возбудителей, поэтому указанные препараты утратили свое значение при терапии брюшного тифа.

Современными препаратами выбора при лечении брюшного тифа и паратифов являются фторхинолоны. В ряде случаев, особенно при лечении детей, возможно применение цефалоспоринов третьего поколения. Однако штаммы, резистентные к налидиксовой кислоте и обладающие пониженной чувствительностью к ципрофлоксацину, также становятся эндемичными для стран Азии.

Согласно действующим методическим указаниям по определению чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам МУК 4.12.1890-04* следует проводить определение чувствительности выделенного микроорганизма к АБП, если уровень его устойчивости не может быть предсказан на основании данных идентификации или вероятной таксономической принадлежности микроорганизма. Важной задачей является выявление приобретенной резистентности к АБП у природно-чувствительных к ним микроорганизмов. S. Typhi, как и сальмонеллы других сероваров, обладает природной чувствительностью к широкому спектру АБП. Но т.к. в последние годы отмечается распространение штаммов S. Typhi, резистентных к большинству традиционных антибактериальных препаратов, применявшихся ранее для лечения брюшного тифа, у всех выделенных культур S. Typhi необходимо в обязательном порядке определять чувствительность к АБП.
_______________

* Вероятно ошибка оригинала. Следует читать МУК 4.2.1890-04, здесь и далее по тексту. — Примечание изготовителя базы данных.

Рекомендуемый перечень АБП, подлежащих исследованию при изучении чувствительности штаммов возбудителей брюшного тифа и паратифов (МУК 4.12.1890-04):

ампициллин;

цефалоспорин третьего поколения (цефотаксим и/или цефтазидим);

налидиксовая кислота*;

триметоприм-сульфаметоксазол (ко-тримоксазол);

хлорамфеникол**;

тетрациклин**.
________________
* В случае устойчивости к налидиксовой кислоте необходимо определить чувствительность к ципрофлоксацину, т.к. у штамма высока вероятность пониженной чувствительности к этому препарату. Действующие в нашей стране МУК 4.12.1890-04 рекомендуют включить в набор для тестирования Enterobacteriaceae из группы хинолонов только препараты, относящиеся к фторированным хинолонам (норфлоксацин, ципрофлоксацин или офлоксацин). В то же время, убедительно доказано, что устойчивость к этой группе антимикробных препаратов развивается ступенчато и затрагивает в первую очередь налидиксовую кислоту. Как правило, штаммы, резистентные к налидиксовой кислоте, характеризуются сниженной чувствительностью к фторхинолонам, хотя при тестировании их в лаборатории они рассматриваются как чувствительные к фторированным хинолонам согласно действующим критериям оценки (МПК 1 мг/л). В связи с этим целесообразно включить налидиксовую кислоту в перечень препаратов, обязательных для тестирования возбудителей брюшного тифа и паратифов А, В и С. Так как диско-диффузионный метод не позволяет уловить низкие уровни устойчивости к ципрофлоксацину, у штаммов, резистентных к налидиксовой кислоте, необходимо определять МПК ципрофлоксацина или других фторхинолонов методом серийных разведений.

** В перечень препаратов для определения чувствительности включены хлорамфеникол и тетрациклин; эти препараты не применяются в настоящее время для лечения, но результаты определения чувствительности к ним могут иметь определенное значение для эпидемиологического мониторинга. При проведении эпидемиологического надзора за антимикробной резистентностью, а также с целью проведения дополнительного типирования штаммов (внутри серовара) перечень исследуемых АБП может быть расширен.

Определение чувствительности штаммов S. Турhi, S. Paratyphi А, В и С к АБП следует проводить в строгом соответствии с МУК 4.12.1890-04 диско-диффузионным методом или методом серийных разведений с обязательным контролем качества проводимого исследования (с использованием контрольных референтных штаммов). Интерпретация результатов изучения штаммов представлена в табл.7.

Критерии интерпретации результатов определения чувствительности штаммов Enterobacteriaceae (в том числе S. Typhi, S. Paratyphi А, В и С) и пограничные значения диаметров зон подавления роста (мм) и МПК (мг/л) (МУК 4.12.1890-04)

Диаметр зон подавления роста и значения МПК

источник