Взятие крови у крс на лейкоз и бруцеллез

Условия взятия крови и ее сохранность до начала лабораторных исследований имеют важное значение при получении достоверных результатов. Во многом эти результаты зависят от техники взятия крови и используемых при этой инструментов.

При венепункции прокол окружающих вену тканей и стенки вен делают в один прием.

На результаты лабораторных исследований могут влиять факторы, связанные с индивидуальными особенностями и физиологическим состоянием организма животного, такие как: возраст; эмоциональное состояние и психический стресс; климатические и метеорологические условия и др.

Брать кровь надо по возможности утром, до кормления животных.

Рекомендуется произвести дегельминтизацию животных за 2 недели до взятия крови.

В целях отсутствия получения ложно-положительных результатов исследований рекомендуют брать кровь не позднее, чем за три недели до отела и не ранее чем через 3 недели после отела.

На точность и правильность результатов также оказывает влияние техника взятия крови, используемые при этом инструменты (иглы, шприцы и др.), пробирки, в которые берется, а в последующем хранится и транспортируется кровь, а также условия хранения и подготовки пробы к анализу.

Традиционные и широко используемые в настоящее время способы взятия крови с помощью иглы и/или шприца оказываются основными источниками лабораторных ошибок, приводящих к низкому качеству результатов анализов. Кроме того, эти методы не могут быть стандартизованы и не обеспечивают безопасность персонала, берущего кровь.

При взятии проб венозной крови методом самотека с использованием иглы и обычных пробирок высока вероятность попадания крови животного на руки ветеринарного специалиста. В этом случае руки ветеринарного работника могут стать источником передачи и распространения возбудителей гемоконтактных инфекций другому животному путем контаминации кровью инъекционной ранки. Ветеринарный работник сам может заразиться от источника инфекции.

Использование медицинского шприца с иглой для взятия крови следует также избегать из-за его недостаточной безопасности для ветеринарного персонала и невозможности исключения гемолиза крови при переносе пробы под давлением в пробирку.

Взятие крови с использованием вакуум-содержащих систем:

Для взятия проб венозной крови наиболее предпочтительно использовать вакуум-содержащие системы. Этот способ имеет ряд преимуществ, основным из которых является то, что кровь попадает непосредственно в закрытую пробирку, предотвращающую любой контакт ветперсонала с кровью животного.

Речь идёт не только об упрощении процедуры взятия крови, что само по себе немаловажно, но и о значительном снижении процента преаналитических ошибок, увеличении безопасности процедуры, снижении риска заражения скота, сохранения уровня надоев после процедуры и отсутствия осложнений у животных после взятия крови.

Вакуум-содержащая система представляет собой закрытую двухкомпонентную систему — вакуумный шприц-контейнер и специальную иглу. Выделение сыворотки или соединение крови с антикоагулянтом происходит в том же объёме шприца, в который берётся кровь, то есть после взятия крови сам шприц является транспортной пробиркой с антикоагулянтом или сывороткой.

Под действием вакуума кровь втягивается через иглу вакуумной системы напрямую из вены в пробирку и сразу же смешивается с химическим реактивом. Тщательно дозированный объем вакуума обеспечивает точное соотношение кровь/реагент в пробирке.

На основе возможностей вакуум-содержащихх систем был разработан новый метод взятия крови у крупного рогатого скота из хвостовой вены:

Кровь берут из v .с occygea (хвостовая вена).
Для взятия крови животное не фиксируют.
Хвост животного берут рукой в области средней трети и медленно поднимают вверх.
Место взятия крови, область 2-5 хвостовых позвонков, дезинфицируют спиртом или 5% раствором йода.
Кровь берут в средней трети тела 2-5 хвостовых позвонков, находящейся на линии, идущей вдоль хвоста и делящей его на 2 симметричные части.
Иглу вводят под углом 90° до упора на глубину 5-10 мм.

Преимущества взятия крови безопасными системами из хвостовой вены:

1. Сокращение времени взятия крови ветврачом; (до 200 животных за 2 часа)

2. Отсутствие фиксации животного;

3. Исключение контакта ветврача с кровью на всех этапах взятия и транспортировки крови;

4. Предупреждение распространения инфекций через кровь и загрязнения (контаминации) объектов окружающей среды; (особенно актуально при лейкозе КРС)

5. Минимизация осложнений и стресса у животных;

6. Отсутствие сокращения надоев в результате стресса и осложнений

7. Возможность получения стерильной крови.

Взятие крови с использованием кровобрательных игл и пробирок:

Иглы для взятия крови должны быть с коротким срезом и достаточно большим диаметром, чтобы не травмировать противоположную стенку вены и не вызвать повреждения эритроцитов. Иглы перед взятием крови обязательно стерилизуют кипячением. Шерсть на месте взятия крови тщательно выстригают, а кожу дезинфицируют дезинфицирующим раствором.

У крупного рогатого окота кровь берут из яремной вены в верхней трети шеи.

Брать кровь для получения сыворотки надо по возможности утром, до кормления животных. Для серологического исследования берут по 7-10 мл крови от крупного рогатого скота.

При взятии крови из яремной вены иглу вкалывают на границе перехода верхней трети шеи в среднюю. Чтобы вызвать достаточное наполнение вены и уменьшать ее подвижность, вену сдавливает в середине шеи резиновым жгутом или пальцем. При проколе вены необходимо держать иглу в руке так, чтобы направление ее совпало с линией хода вены и чтобы срез иглы был направлен вверх, к голове. Иглу вкалывают под острым углом – в 20–30°. При попадании в вену из иглы вытекает кровь.

Кровь должна стекать по стенке пробирки по избежании разрушения эритроцитов и при необходимости немедленно смешиваться с достаточным количеством антикоагулянта.

Перед извлечением иглы из вены резиновый жгут снимают, пережимают вену пальцем выше места вкола, иглу извлекают, а место вкола некоторое время сдавливают тампоном для предотвращения образования гематомы. В заключении область венепункции дезинфицируют дезинфицирующим раствором.

Недостатки устоявшегося метода взятия крови из яремной вены кровопускательной иглой:

Разбрызгивание крови; (попадание крови на руки, кормушки и др. объекты окружающей среды).
Высокий риск распространения инфекций, опасных не только для животных, но и для человека; (туберкулез, бруцеллез, лейкоз КРС).
Необходимость фиксации животного.
Стресс у животного, ведущий к потерям молока (более 5%).
Осложнения после взятия крови; (гематомы, абсцессы).
Взятая кровь – нестерильна (т.е. контаминирована).

Хранение проб крови и сыворотки крови:

Цельную кровь, плазму и сыворотку для непродолжительного хранения помещают в холодильник (+2…+4°С), длительное хранение сыворотки требует температуры – 20°С.

Сыворотку крови получают методом отстоя. Для свертывания крови и отстаивания сыворотки пробирки с кровью выдерживают 30-60 мин при 20-30°С или 37-38°С, сгусток крови от стенок отделяют стальной спицей, а затем пробирки выдерживают при 4-10°С 20-24 ч.

Отстоявшуюся сыворотку сливают в сухие стерильные пробирки, закрывают пробками и направляют в лабораторию в течение первых суток и в исключительных случаях не позднее третьего дня после взятия крови.

Нарушение условий хранения проб может стать причиной погрешностей анализа. В результате длительного стояния сыворотки, над эритроцитами могут наступить сдвиги в концентрации ряда компонентов: повышается концентрация калия, активности кислой фосфатазы, аминотрансфераз, лактатдегидрогеназы, гидроксибутиратдегидрогеназы, понижается содержание глюкозы вследствие гликолитических процессов.

При температуре около 20°С в цельной крови возрастает содержание аммиака, многие ферменты даже при температуре холодильника быстро теряют свою активность (креатинкиназа, кислая фосфатаза), в лактатдегидрогеназа, напротив, быстрее теряет активность при низких температурах.

Возникший при взятии или хранении гемолиз эритроцитов приводит к повышению концентрации калия, активности кислой фосфатазы, аминотрансфераз, лактатдегидрогеназы, гидроксибутиратдегидрогеназы.

Неумелое встряхивание проб при перемешивании их содержимого или при транспортировке также может вызвать гемолиз эритроцитов.

Сыворотка крови должна быть доставлена в лабораторию в течение первых суток и в исключительных случаях не позднее третьего дня после взятия крови.

При пересылке сыворотки на большое расстояние, особенно летом, её необходимо консервировать 5%-ным раствором карболовой кислоты на физиологическом растворе из расчета на каждые 9 мл сыворотки 1 мл раствора карболовой кислоты или 1-2 капли раствора на 1 мл сыворотки.

Раствор карболовой кислоты необходимо подливать по каплям при постоянном встряхивании пробирки с сывороткой.

Сыворотку или кровь можно консервировать также борной кислотой (в порошке) из расчета 0,05-0,07 г (на кончике скальпеля) на одну пробирку с кровью (сывороткой).

На каждой пробе сыворотки или крови указывают ее номер или кличку животного или фамилию владельца животного.

Пробирки с кровью и сыворотками плотно закрывают стерильными пробками и устанавливают для пересылки в строго вертикальном положении.

Зимой сыворотки упаковывают и пересылают так, чтобы они не замерзли.

Пробы направляют с сопроводительной в двух экземплярах

Взятие крови для гематологических исследований

Кровь для гематологических исследований берут из ярёмной или каудальной (хвостовой) вены в специальные системы забора крови с антикоагулянтом или в пробирки с антикоагулянтами. В качестве антикоагулянтов используют трилон Б (ЭДТА-динатриевая соль этилендиаминтетрауксусной кислоты) из расчета 0,1 мл 10 %-ного раствора на 1 мл крови, гепарин (5ед. на 1 мл крови) или 6%-ный раствор лимоннокислого натрия (0,1 мл на 1 мл).

Для предотвращения свертывания крови содержимое пробирки сразу же тщательно перемешивают. Стабилизированную кровь до исследования хранят в холодильнике при температуре 2-4 0 С и исследуют не позднее, чем через 36 часов с момента взятия.

источник

Взятие крови у крупного рогатого скота считается довольно трудной и травмирующей процедурой. В связи, с разными видами заболеваний данную процедуру делают довольно часто. На сегодняшний день осуществляют взятие крови у коров из хвостовой вены, яремной и молочной. Для упрощения работы были разработаны вакуумные шприцы, благодаря которым процедура взятия крови из хвостовой вены становится совершенно безопасной.

Как правило, у коров забор крови делают из яремной вены, находящейся в верхней трети шеи. Объем полученного материала для исследования не должен быть меньше 5 мл с антикоагулянтом 0,5 М ЭДТА.

Используемые иглы перед началом процедуры стоит предварительно простерилизовать, используя для этих целей кипячение. Важно учитывать, что забор у каждой коровы нужно осуществлять новой иглой.

Место взятия обязательно дезинфицируют. Для дезинфекции используют спирт или 5% раствор йода. Во время взятия пробы животное должно быть надежно зафиксировано – привязывают голову.

После того как материал для исследования был взят, стоит плотно закрыть пробирку и перевернуть ее несколько раз, чтобы произошло смешивание с антикоагулянтом. При этом не допускается встряхивание. Каждую пробирку нумеруют согласно описи.

Самым эффективным способом является взятие крови из подхвостовой вены. В данном случае корову необязательно фиксировать. Пробирки рекомендуется в дальнейшем хранить при температурном режиме от +4°С до +8°С. Для этих целей отлично подойдет холодильник. Не стоит использовать морозильную камеру. В случае если во взятом образце появились сгустки, к дальнейшему исследованию он непригоден.

На сегодняшний день существует несколько методов взятия крови у крупного рогатого скота. Ее берут из таких вен:

Перед тем как осуществить процедуру, рекомендуется предварительно зафиксировать животное, что исключит травмирование. В таком состоянии корова также не сможет опрокинуть пробирку. Перед процедурой потребуется продезинфицировать место забора крови с использованием раствора фенола, спирта или йода.

Взятие образца из яремной вены является одним из самых популярных способов. Как правило, процедуру проводят рано утром либо до того, как корова получит корм. Для проведения процедуры голову животного привязывают и фиксируют в неподвижном состоянии. Иглу необходимо вводить под острым углом, при этом кончик обязательно направлен к голове.

Из молочной вены допускается делать забор крови для исследования только у взрослой особи. Молочные вены расположены на боковой части вымени и тянутся вниз по брюшной части. Через них происходит снабжение молочных желез кровью и питательными веществами. Стоит отметить, что чем лучше развиты молочные вены, тем больше молока можно получить от коровы.

Безопаснее всего брать образцы для исследований из хвостовой вены. Место укола, так же как и в остальных случаях, необходимо продезинфицировать. Если выбрать место для укола на уровне от 2 до 5 позвонка, то процедура пройдет более гладко.

Как показывает практика, забор крови из хвостовой вены для проведения исследований является самым безопасным вариантом. Для этих целей можно использовать обычную иглу либо воспользоваться специальной вакуумной системой. Такие системы уже включают специальные пробирки, в которых содержится антикоагулянт и требуемое давление, что позволяет крови из хвостовой вены вытекать в емкость плавно.

Перед тем как сделать забор образца из хвостовой вены, необходимо с помощью спирта либо йодного раствора продезинфицировать место укола. После этого хвост у коровы приподнимают и удерживают его за среднюю треть. В данном случае иглу необходимо вводить плавно в хвостовую вену, угол наклона должен составлять 90 градусов. Иглу, как правило, вводят до упора.

Такой способ забора имеет большое количество преимуществ:

взятый образец полностью стерилен;
в пробирке практически не образуются сгустки, в результате чего все образцы пригодны для исследования;
для проведения данной процедуры не требуется много времени. Опытный ветеринар на протяжении 60 минут может звать образцы у 200 животных;
при использовании такого метода не возникает побочных эффектов, при этом шанс травмирования крупного рогатого скота сводится к минимуму;
контакт с кровью минимальный;
животное не испытывает стресс, привычный уровень удоя сохраняется.

Такой метод наиболее часто используют на крупных фермерских хозяйствах, где необходимо взять большое количество проб за короткий промежуток времени.

В случае если необходимо осуществить забор крови из яремной вены, рекомендуется вставлять иглу на границе, где происходит переход верхней трети шеи в среднюю. Первым делом необходимо вызвать достаточный уровень наполнения вены и минимизировать ее подвижность. Для этих целей рекомендуется сдавить вену при помощи резинового жгута либо пальцев.

Во время прокола потребуется держать в руке шприц с иглой таким образом, чтобы направление иглы совпадало с линией хода прокалываемой вены. Необходимо следить за тем, чтобы срез иглы был направлен вверх, в сторону головы. Иглу стоит вставлять под углом от 20 до 30 градусов. Если игла попала в вену, то из нее начнет вытекать кровь.

Перед тем как извлечь иглу из яремной вены коровы, стоит предварительно снять резиновый жгут, а вену пережать пальцами. Пережимать необходимо чуть выше того места, где находится игла. Иглу постепенно извлекают, а место укола рекомендуется некоторое время сдавливать ватным тампоном, что позволит предотвратить образование гематом на теле животного. В завершении процедуры место венепункции дезинфицируют спиртом либо настойкой йода и обрабатывают раствором «Коллодия».

В данном случае необходимо учитывать, что забор крови из молочной железы можно делать только у взрослых особей. Необходимую вену можно обнаружить сбоку на вымени.

Перед тем как осуществить забор пробы, рекомендуется предварительно зафиксировать животное. Как правило, для проведения процедуры потребуется присутствие нескольких человек. Первым делом необходимо сбрить либо состричь волосяной покров с того места, где планируется делать прокол иглой. После этого подготовленный участок дезинфицируют с использованием спирта либо йодного раствора.

В хорошей видимости должен находиться своеобразный бугорок небольшого размера, куда и рекомендуется вводить иглу. Так как можно довольно легко нанести вред корове, то иглу вводят максимально осторожно. Ее необходимо ввести под углом, параллельно ходу вены, пока игла точно не попадет в нее и не появиться венозная кровь темного цвета.

Такой способ имеет некоторые преимущества:

приемлемая стоимость материалов, необходимых для проведения исследований;
для сбора образцов не требуется много времени;
разбрызгивание крови минимальное.

Несмотря на это, имеются и существенные недостатки:

риск нанести корове травму довольно высокий;
придется контактировать с кровью животного;
во время забора крови животное испытывает сильный стресс, так как иглу вводят в самое нежное место на теле;
проводить данную процедуру довольно сложно.

Благодаря новым технологиям данный метод устарел, им практически не пользуются при проведении исследований.

Использование вакуумных систем имеет существенное преимущество, так как кровь после забора попадает сразу же в специальную пробирку, в результате чего не происходит контакта ветеринарного персонала с взятым образцом.

Такие системы состоят из вакуумного шприца, который служит контейнером, и специальной иглы. Соединение с антикоагулянтом осуществляется внутри вакуумного контейнера.

Если рассматривать преимущества вакуумного забора крови, то можно выделить следующее:

на протяжении 2-х часов есть возможность сделать забор образцов для исследования у 200 животных;
не требуется перед началом процедуры фиксировать животное в неподвижном состоянии;
на всех этапах забора не происходит непосредственного контакта ветеринарного врача с кровью;
так как кровь не контактирует с предметами из окружающей среды, то риск распространения инфекции сводится к нулю;
животное практически не испытывает стресс во время проведения процедуры.

В результате того, что крупный рогатый скот не испытывает стрессов, у коров надой не уменьшается.

Взятие крови у коров из хвостовой вены является самым популярным и безболезненным для животного методом. Как показывает практика, данный способ забора не требует много времени, в результате чего за короткий промежуток можно взять большое количество проб у крупного рогатого скота.

источник

Учхоз «Леоновское» благополучен по инфекционным заболеваниям это объясняется большой работой ветеринарной службой хозяйства по точному проведению плановых противоэпизоотических мероприятий, предупреждению заноса инфекции с машинами, людьми и т. д.

Большая работа проводится в хозяйстве. Вход на каждую ферму оборудован дезбарьерами и дезковриками.

Ежегодно главный ветврач хозяйства составляет план противоэпизоотических мероприятий, который заверяется главным ветеринарным врачом района.

Работая в учхозе, я принимал активное участие в проведении профилактических и противоэпизоотических мероприятий.

Вид исследования, обработки или прививки

Исследование крови на лейкоз, бруцеллез, лептоспироз

Вакцинация против сальмонеллеза

Исследование на туберкулез

Вакцинация против сибирской язвы и эмкара

При исследовании крови на бруцеллез, лептоспироз результат исследования отрицательный. При исследовании крови на лейкоз результат исследования отрицательный. При исследовании на туберкулез результат исследования отрицательный.

Аллергическая диагностика туберкулеза крупного рогатого скота

За время прохождения производственной практики мною было принято участие в проведении следующих плановых диагностических и противоэпизоотических профилактических мероприятиях:

взятие крови у крупного рогатого скота для исследования на бруцеллёз и лейкоз;

проведение туберкулинизации коров и нетелей;

вакцинации молодняка возрастом до 2-х месяцев против сальмонеллеза;

вакцинация против сибирской язвы и эмфизематозного карбункула;

В соответствии с проведёнными мероприятиями заполняется журнал для записи противоэпизоотических мероприятий и составляются акты.

Взятие крови проводят одновременно с туберкулинизацией. Для этого коров скотники проводят через узкий станок, в котором их поочерёдно фиксируют. Взятие крови производят из ярёмной вены в пробирку в количестве около 20 мл. Помощник ветврача производит учёт животных и нумерацию соответствующих проб крови. На полученные пробы крови составляется сопроводительный документ в лабораторию с указанием вида и метода исследования. Сыворотку крови КРС исследуют на бруцеллез в реакции агглютинации и на лейкоз гематологическим исследованием, а также в РИД. Полученные результаты исследований из лаборатории заносятся в журнал противоэпизоотических мероприятий.

Диагностическое исследование на туберкулез проводят с помощью аллергической туберкулиновой пробы следующим образом: выбривается небольшой участок шерсти в области лопатки с помощью электробритвы, после чего безигольным инъектором производят внутри-кожное введение туберкулина в объеме 0,2 мл однократно. Для инъекции был применён туберкулин очищенный (ППД) для млекопитающих. Учёт реакции был произведён через 3 суток (72 часа). Реакция считается положительной, если в месте инъекции образуется болезненная покрасневшая припухлость без чётких границ, с повышением местной температуры. Положительно реагирующих животных выявлено не было.

По плану противоэпизоотических мероприятий проводят вакцинацию коров и телят. Перед вакцинацией проводят клинический осмотр всего поголовья и вакцинируют только клинически здоровых животных.

Вакцинацию против сальмонеллеза телят проводят клинически здоровым телятам возрастом до 2-х месяцев, подкожно в области средней трети шеи концентрированной формолквасцовой вакциной против сальмонеллеза (паратифа) телят. Телят полученных от вакцинированных коров прививают на 17-й день жизни двукратно в дозе 1 мл с интервалом 3-4 дня между инъекциями, повторное введение проводят в количестве 1,5 мл. Иммунитет формируется на 10 — 12 день после повторного введения вакцины и сохраняется в течение 6 месяцев. По результатам проведенного мероприятия составлен акт.

Вакцинацию против эшерихиоза проводят запускным коровам за 1,5-2 месяца до родов. Вакцину вводят двукратно внутримышечно в количестве 10 мл и повторно через 10-12 дней в количестве 15 мл. Иммунитет формируется через 7-10 дней после введения второй дозы вакцины и сохраняется у взрослых животных до 6 месяцев, у молодняка до 4 месяцев.

Для профилактики и лечения эшерихиоза у телят используют антиадгезивную антитоксическую сыворотку против эшерихиоза с/х животных, выпускаемую Армавирской биофабрикой. Сыворотку вводят внутримышечно с профилактической целью телятам до 5-и дней в дозе 10-15 мл, старше 5-и дней — 15-20 мл, а с лечебной целью телятам вводят по 35 — 45 мл и 50 — 60 мл соответственно их возрасту.

Также в соответствие с планом противоэпизоотических мероприятий в хозяйстве ежегодно проводят: вакцинацию основного стада против некробактериоза 2 раза в год (каждые 6 месяцев, летом и зимой); против ящура — каждые 6 месяцев (весной и осенью); против сибирской язвы — 1 раз в год (в декабре); туберкулинизацию — дважды в год; исследование крови на бруцеллёз — 1 раз в год (в феврале); исследование крови на лейкоз гематологическим методом — 2 раза в год, методом РИД — 3 раза в год; вакцинацию молодняка до 2-х месяцев двукратно ежемесячно против колибактериоза и сальмонеллеза; вакцинацию против колибактериоза и сальмонеллеза запускных коров (за 2 месяца до отела) двукратно ежемесячно.

Помимо специфических мер профилактики инфекционных болезней в хозяйстве разработаны мероприятий по общей профилактике. В условиях хозяйства проводится своевременная уборка и обеззараживание навоза; текущая дезинфекция, дезинсекция и дератизация; уничтожение трупов вынужденно убитых животных; обеспечение ветеринарных специалистов и рабочего персонала спецодеждой и обувью, а так же проведение среди них ежегодного медосмотра (флюорография); карантирование вновь поступивших животных; соблюдение режимов кормления и эксплуатации животных соответственно способу их содержания.

Убой больных животных проводится на специально оборудованной вскрывочной площадке. Для утилизации трупов используют биотермическую яму Беккера. Она представляет собой сооружение глубиной не менее 10 м и шириной 3 м. Стены ямы облицованы водонепроницаемым материалом и сверху её закрывают двумя плотно пригнанными крышками с замком. Яма оборудована вытяжной трубой и навесом. Яму загружают трупами до уровня ниже поверхности земли на 1,5 м. Для полного разложения трупа и уничтожения микроорганизмов яму оставляют закрытой на 4 — 5 месяцев. Под действием высокой температуры (65 — 70°С), возникающей в результате бурной жизнедеятельности термофильных бактерий в течение 40 дней трупы обезвреживаются даже от спорообразующих патогенных микробов, при их прорастании в вегетативную форму.

Профилактическая дезинфекция помещений хозяйства проводится с использованием следующих дез. средств: 1%-го раствора Виркона-С, с расходом 0,3 л/м 2 ; 3%-го раствора каустической соды из установки ДУК. В ноябре была проведена текущая профилактическая дезинфекция всех животноводческих помещений. Дезинфекция проводилась 10% раствором хлорной извести (содержание хлора в сухой хлорной извести не менее 25%)с помощью установки АМ-80 в присутствии животных. По результатам проведенной дезинфекции составлен акт. Для борьбы с грызунами проводят плановые профилактические мероприятия (еженедельно) по дератизации с использованием таких родентицидов, как ланират, шторм, неостомоза. На период прохождения практики насекомых — переносчиков возбудителей заразных болезней и грызунов не обнаружено.

За время прохождения практики в хозяйства была проведена профилактическая мера борьбы с грызунами, т.к. многие грызуны являются переносчиками возбудителей инфекционных и гельминтозных болезней животных. Нередко они источники инфекции бруцеллеза, туляремии,

листериоза, рожи свиней и др., из гельминтозных заболеваний — трихинеллез. Профилактика включает в себя комплекс мер, в том числе выполнение ветеринарно-санитарных требований эксплуатации животноводческих помещений и производственной территории, направленных на лишение грызунов корма, воды, мест размножения, контроль состояния ограждающих конструкций здания, своевременную уборку помещений и т.д. В случаи появления грызунов истребительные меры применят систематически с охватом всех животноводческих объектов. Выявляют участки гнездования, перемещения и кормления. Определяют уровень заселенности объекта грызунами путем раскладки на ночь в нескольких местах взвешанного корма-приманки. Утром остатки корма взвешивают. Такую раскладку делают 3 дня. По данным среднесуточной поедаемости корма и количества жилых нор делают расчет заселенности грызунами и рассчитывают потребность в дератизационных средствах. Для истребления грызунов применяют химические вещества, бактерийные препараты и механические средства Из химических веществ используют яды-антикоагулянты: зоокумарин, дифенацин, фентолацин, пенолацин; остродействующие яды: фосфид цинка монофторин и др. К механическим средствам уничтожения грызунов относятся ловушки, капканы и др.

При проведении дезинфекции, дезинсекции, дератизации строго соблюдать меры по технике безопасности. К работе с ядами допускается строго обученный персонал.

Въезд на территорию хозяйства «Леоновское» оборудован ветеринарно-санитарным пропускником; подъездные пути с твердым покрытием. В учхозе есть аптека, карантинное помещение, изолятор, биотермическая яма, перегрузочная площадка, ветеринарно-санитарный пропускник, дезинфекционные барьеры соответствующие ветеринарно-санитарным нормам.

Профилактика и противоэпизоотические мероприятия.

Профилактика и противоэпизоотические мероприятия охватывают все поголовье сельскохозяйственных животных и животных, находящихся в личном пользовании.

План противоэпизоотических мероприятий утвержден Департаментом Ветеринарии РФ. В мероприятиях отражены единые методы плановой борьбы с болезнями животных, разработанные с учетом науки и техники при составлении плана главными задачами являются:

-1.Предупреждение возникновения инфекционных и паразитарных болезней

-2.0беспечение стойкого благополучия поголовья.

-3.Охран а населения от болезней общих для человека и животных.

Благодаря усилиям ветеринарных работников в хозяйстве ветеринарных мероприятия выполняются в срок

Мероприятия обеспечивают планомерное сокращение заболевание, ликвидацию многих опасных болезней крупного рогатого скота.

Эпизоотическая обстановка хозяйства отражена в 3-х журналах :

1 .Журнал регистрации больных животных (сельскохозяйственный отчет форма №

Журнал для регистрации противоэпизоотических мероприятий (сельхозучет форма № 2 вет.)

Журнал для записи падежа животных.

На все противоэпизоотические мероприятия составляются 2 экз. актов. Ежемесячно ветеринарный врач составляет отчет о заболеваемости и падеже крупного рогатого скота при незаразных заболеваниях, пишет акт на списание медикаментов и биопрепаратов.

На каждое павшее, прирезанное или направленное на убой животное составляется акт на выбытие сельхоз. учет (форма 100)

При отправке животных на мясокомбинат (колбасный цех) выписывается товарно-транспортная накладная (специализированная форма №1 сх).

источник

Коварство такого заболевания как лейкоз заключается в его скрытости. Иногда больное животное годами является вирусоносителем, но при этом не проявляет никаких симптомов. Инфекция передается взрослым особям и молодняку КРС, у которых также медленно поражает организм. Регулярное обследование крупного рогатого скота помогает рачительным животноводам вовремя определить опасный недуг. Единственным эффективным для этого путем является взятие анализа крови.

Онкогенный лейкозный вирус РНК вызывает хроническое инфекционное заболевание у КРС под названием лейкоз. Он поражает кроветворные органы и возбуждает начало опухолевого процесса. Если разрезать тушу убитой коровы, можно заметить, что все органы внутри покрыты опухолями.

Течение заболевания проходит три этапа, каждый из которых имеет определённые временные промежутки:

инфекционная стадия является начальной, без проявления внешних симптомов, продуктивность и здоровье животного кажутся в норме, но в это время зараженные головы уже вирусоносители и передают белокровие сородичам. До первых признаков может пройти несколько лет;
патологическая стадия начинается с проявления внешних признаков: угнетенного состояния, выпучивания глаз, увеличения лимфатических узлов и ряда других. В данный период болезнь можно спутать с другими (туберкулез, мастит и прочие);
опухолевая стадия отмечается абортами стельных животных, невозможностью забеременеть, проблемами с пищеварением (понос, запор), потерей веса и снижением продуктивности. После обнаружения явных симптомов и до момента гибели взрослой особи КРС может пройти всего несколько часов, максимум дней. Телятам часто удается растянуть этот интервал до двух месяцев.

Поскольку лейкемия протекает незаметно, очень важно своевременно диагностировать ее для недопущения распространения. Для этого необходимо использовать достоверные способы обследования на вирусоносительство лейкоза у коров. На сегодняшний день выбор специалистов ложится на серологический метод:

реакция иммунодиффузии в геле агара (РИД);
иммуноферментный анализ (ИФА).

Антитела с реакцией осаждения взаимодействуют с растворимыми антигенами вируса лейкоза крупного рогатого скота (ВЛКРС). Их находят в срок от четырнадцати до шестидесяти дней после момента инфицирования. Также после этого они могут обнаруживаться на протяжении всего существования коровы.

Ученые уверяют, что ИФА более точный метод, чем РИД. Более верно он работает на первых порах. Но предпочтительнее использовать результаты от двух тестов, чтобы не оставлять сомнения.

Исследование крови на лейкоз у коров по методу РИД начинается с взятия сыворотки крови больного животного:

на пластинку наносят капельку сыворотки и каплю реактива. Помутнение жидкости укажет на вирусоносительство лейкоза у коров до выявления клинических показателей;
проба покажет, был ли у организма указанной особи контакт с вирусом лейкоза;
в таком состоянии животное может оставаться до конца жизни, но не болеть и не давать клиники белокровия;
при положительных результатах РИД убирают сомнительных коров в стадах, где их процент не превышает десять процентов. Когда «инфицированных» свыше половины, ликвидируются только клинические зараженные головы.

Иммуноферментный анализ допускает исследование не только крови, но и молока. Большая чувствительность ИФА дает шанс более оперативно и широко изучать сыворотки крови. Метод показывает поголовье, в которых степень заразности не больше процента.

Оба указанных метод не могут различить материнские антитела у молодняка от активных. Поэтому телята проверяются, начиная с шестимесячного возраста, когда перестают обнаруживать материнские антитела, не являющиеся показательными при диагностике.

Чтобы не допустить неправильный результат, нужно соблюдать условия проведения исследования крови на лейкоз у коров:

у беременных буренок кровь берется за месяц до родов или после;
выявление других возможных инфекционных заболеваний;
обнаружение паразитов, избавление от них. После этого ИФА разрешается через месяц, а РИД через два месяца по завершению обработки;
любые вакцины применяют после взятия анализов на пробы. Либо по прошествии двух месяцев;
гематологическое обследование учитывает подсчет лимфоцитов в крови. Его можно инициировать телятам с полутора лет, если до этого методом РИД и ИФА были найдены антитела ВЛКСР.

Последний гематологический способ также позволяет развеять сомнения при тесте РИД.

Если по РИД результат отрицательный, а по итогам гематологической процедуры положительный, то последнюю повторяют через шестьдесят дней.

При равно положительном выводе корову отправляют на убой. А если и после повторного обследования РИД остается отрицательным в отличие от гематологического метода, животное признается здоровым.

Для проведения исследований в хозяйствах без карантина существуют благоприятные периоды. Владельцы крупного рогатого скота должны их учитывать, чтобы не допускать заболевания лейкемией:

№	Полезная информация
1	перед стойловым периодом в середине или поздней осенью коров обрабатывают от паразитов, через пятьдесят дней можно организовать серологические и гематологические процедуры
2	перед выгоном стада после завершения зимнего сезона повторяют осенние манипуляции

источник

Рекомендации

по правилам взятия проб крови от крупного рогатого скота

При венепункции прокол окружающих вену тканей и стенки вен делают в один прием.

Брать кровь надо по возможности утром, до кормления животных.

Рекомендуется произвести дегельминтизацию животных за 2 недели до взятия крови.

Взятие крови с использованием вакуум-содержащих систем:

1. Кровь берут из v .с occygea (хвостовая вена).

2. Для взятия крови животное не фиксируют.

3. Хвост животного берут рукой в области средней трети и медленно поднимают вверх.

4. Место взятия крови, область 2-5 хвостовых позвонков, дезинфицируют спиртом или 5% раствором йода.

5. Кровь берут в средней трети тела 2-5 хвостовых позвонков, находящейся на линии, идущей вдоль хвоста и делящей его на 2 симметричные части.

6. Иглу вводят под углом 90° до упора на глубину 5-10 мм.

Преимущества взятия крови безопасными системами из хвостовой вены:

1. Сокращение времени взятия крови ветврачом; (до 200 животных за 2 часа)

2. Отсутствие фиксации животного;

3. Исключение контакта ветврача с кровью на всех этапах взятия и транспортировки крови;

5. Минимизация осложнений и стресса у животных;

6. Отсутствие сокращения надоев в результате стресса и осложнений

7. Возможность получения стерильной крови.

Взятие крови с использованием кровобрательных игл и пробирок:

У крупного рогатого окота кровь берут из яремной вены в верхней трети шеи.

Недостатки устоявшегося метода взятия крови из яремной вены кровопускательной иглой:

1. Разбрызгивание крови; (попадание крови на руки, кормушки и др. объекты окружающей среды).

2. Высокий риск распространения инфекций, опасных не только для животных, но и для человека; (туберкулез, бруцеллез, лейкоз КРС).

3. Необходимость фиксации животного.

4. Стресс у животного, ведущий к потерям молока (более 5%).

5. Осложнения после взятия крови; (гематомы, абсцессы).

6. Взятая кровь – нестерильна (т.е. контаминирована).

Хранение проб крови и сыворотки крови:

Мутные, проросшие, гемолизированные сыворотки исследованию не подлежат.

Зимой сыворотки упаковывают и пересылают так, чтобы они не замерзли.

Пробы направляют с сопроводительной в двух экземплярах (см. приложение 1).

Взятие крови для гематологических исследований

СЛУЖБА ВЕТЕРИНАРИИ ИРКУТСКОЙ ОБЛАСТИ

ОБЛАСТНОЕ ГОСУДАРСТВЕННОЕ БЮДЖЕТНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ

_____________ СТАНЦИЯ ПО БОРЬБЕ С БОЛЕЗНЯМИ ЖИВОТНЫХ

Индекс, Иркутская область, _______ район Телефон: (8-395- ) _______

Город (поселок, село) _____, улица _____, дом ___ Е- mail —-. vet @ govirk . ru

должность, Ф.И.О. наименование подразделения

В ___________________________________ ветеринарную диагностическую лабораторию

Направляется____________ проб крови (сыворотки крови) от ________________________

(наименование хозяйства, населенного пункта, района)

Для ___________________ исследования на _______________________________________

(вид исследования) (наименование заболевания) _____________________________________________________________________________Благополучное по _____________________________________________________________

(благополучное, неблагополучное, наименование заболевания)

Исследование проводится первично, повторно (подчеркнуть)

Дата и результат предыдущего исследования __________.___________________ 20 ____г.

Дата взятия крови _____________________________________________________________

Опись прилагается в двух экземплярах.

Ведомость (опись) животных, от которых взята кровь для исследования

Наименование предприятия, хозяйства, , Ф.И.О. владельца животного

источник

Выполнила: студентка 341 группы

Руководитель: Канарская. Г. П.

Получение крови у животных Взятие крови у крупного рогатого скота Взятие крови у лошадей и мелкого рогатого скота Взятие крови у свиней Взятие крови у собак. Взятие крови у кролика Взятие крови у морских свинок Взятие крови крыс и мышей Взятие крови у птицы

10. Взятие крови в крестьянском фермерском хозяйстве Шарипова. М. Г.

ПОЛУЧЕНИЕ КРОВИ У ЖИВОТНЫХ

Для взятия крови у животных производят обработку операционного поля (выстригание или выбривание волосяного покрова, протирание кожи спиртом и эфиром), а затем надрезают (прокалывают) кровеносный сосуд или вводят в него иглу, предварительно подвергнутую стерилизации (рис.1). Принудительной фиксации животных при взятии крови следует, по возможности, избегать. Для получения крови у мелких животных и птиц иногда прибегают к пункции желудочков сердца.

Рис. 1. Иглы для взятия крови. А-Г – из уха и пальца; Д-Ж – из вены.

1 — съемное лезвие иглы Франка, 2 – головка, 3 –подвижная гайка, 4 –курок

Взятие крови у крупного рогатого скота

Кроме того, необходимо готовить посуду, добавлять антикоагулянт для анализов на общую гематологию, выделять сыворотку и удалять сгусток для анализов, требующих получения сыворотки.

Недостатки устоявшегося метода взятия крови из яремной вены кровопускательной иглой:

Разбрызгивание крови; (попадание крови на руки, кормушки и др. объекты окружающей среды). Высокий риск распространения инфекций, опасных не только для животных, но и для человека; (туберкулез, бруцеллез, лейкоз КРС). Необходимость фиксации животного. Стресс у животного, ведущий к потерям молока (более 5%). Осложнения после взятия крови; (гематомы, абсцессы). Взятая кровь – нестерильна (т. е. контаминирована).

Применение S – Monovette коренным образом меняет методику взятия крови.

Основные особенности закрытой системы S-Monovette

Ударопрочный пластик — не бьётся, отлично переносит транспортировку;

Широкий диапазон заранее добавленных реагентов;

Цветовое кодирование; Удобство маркировки и транспортировки;

Устойчивость к низким температурам;

Диаметр (0.9 мм); отсутствие осложнений после взятия крови

Защитный клапан; предотвращение вытекания крови при пункции вены.

Гладкие края иглы; минимизация повреждений клеток крови (гемолиз).

Оптимальный угол заточки иглы; отсутствие «забивания» и тромбирования иглы

На основе возможностей S — Monovette был разработан новый метод взятия крови у крупного рогатого скота

Преимущества взятия крови безопасными системами из хвостовой вены:

Массовое взятие крови у поголовья крупного рогатого скота (КРС) – это трудоёмкая и травмирующая животное процедура.
В связи с этим разработка новых, надёжных, нетравмирующих животных и наименее трудоёмких методов взятия крови у крупного рогатого скота, является актуальной задачей.

Использование вакуумных шприцев — контейнеров, как показала практика применения в нескольких областях РФ, может коренным образом изменить технологию взятия крови у поголовья КРС.

Устоявшаяся методика взятия крови у КРС

Кровь берут из v. jugularis (яремная вена); Место, где предполагается произвести прокол, дезинфицируют спиртом или 5% раствором йода; Для взятия крови животное фиксируют – привязывают голову животного; Большим пальцем нажимают на вену в нижней трети шеи. Задержка оттока крови вызывает набухание вены в виде толстого шнура; Кровопускательную иглу вводят под острым углом по направлению к голове, продвигая в полость сосуда приблизительно на 1 см.; Кровь в пробирку набирают по стенке.

Кровь берут из v. с occygea (хвостовая вена). Для взятия крови животное не фиксируют. Хвост животного берут рукой в области средней трети и медленно поднимают вверх. Место взятия крови, область 2-5 хвостовых позвонков, дезинфицируют спиртом или 5% раствором йода. Кровь берут в средней трети хвостовых позвонков, находящейся на линии, идущей вдоль хвоста и делящей его на 2 симметричные части. Иглу вводят под углом 90° до упора на глубину 5-10 мм.

Сокращение времени взятия крови ветврачом; (до 200 животных за 2 часа) Отсутствие фиксации животного; Исключение контакта ветврача с кровью на всех этапах взятия и транспортировки крови; Предупреждение распространения инфекций через кровь и загрязнения (контаминации) объектов окружающей среды; (особенно актуально при лейкозе КРС) Минимизация осложнений и стресса у животных; Отсутствие сокращения надоев в результате стресса и осложнений Возможность получения стерильной крови.

Эти преимущества делают применение S — Monovette в ветеринарии перспективной технологией, позволяющей быстро, качественно и безопасно решать проблему массового взятия крови у поголовья. Сохранение надоев и отсутствие осложнений – являются показательным экономическим аргументом необходимости повсеместного внедрения современной методики.

3. Взятие крови у лошади и мелкого рогатого скота.

Небольшие количества крови для анализа у лошадей получают из ушной вены путем ее надреза или прокола инъекционной иглой. Выступившую кровь насасывают в пипетку или собирают по каплям на часовое стекло, предварительно промытое антикоагулянтом. У овец можно производить, кроме того, пункцию кожной вены, расположенной под внутренним углом глаза.

Для получения больших количеств крови производят пункцию яремной вены на границе верхней и средней трети шеи. После фиксации животного большим пальцем левой руки сдавливают вену ниже места пункции (у крупного и мелкого рогатого скота накладывают резиновый жгут), а затем прокалывают кровопускательной или инфузионной иглой кожу и стенку вены. Иглу вводят против тока крови под углом 45°. Кровь собирают в стерильный сосуд. Для получения крови из глубоко расположенных сосудов (воротной, печеночной, задней полой, общей брыжеечной, рубцовой и др. вен) производят их катетеризацию с помощью нейлоновых или тефлоновых катетеров.

Рис. 2. Взятие крови у лошади крови из яремной вены.

Для взятия крови у крупных животных используют приборы-автоматы. Они имеют разную конструкцию, но в состав их обязательно входят корпус, иглодержатель, держатели для пробирок, ударный механизм с пружиной.

У свиней малые количества крови получают путем надреза скальпелем большой ушной вены. Центральный конец сосуда у корня уха зажимают при этом пальцами. Для получения больших количеств крови отсекают ножницами или скальпелем отрезок хвоста длиной 1–1,5 см. По окончании кровопускания рану дезинфицируют, а кончик хвоста сдавливают резиновым кольцом или перетягивают бинтом на 1-2 суток.

У поросят рекомендуют получать кровь путем прокола иглой или микропипеткой орбитального венозного синуса. Животное при этом фиксируют лежа, в спинном положении. За один раз берут от 5 до 30 мл крови.

Небольшие количества крови у собак (кошек) получают путем надреза края уха или прокола мягкой части ступни. Для получения больших порций крови производят пункцию передненаружной плюсневой вены, расположенной на наружной поверхности голени.

Животное кладут на бок или фиксируют в станке; конечности сдавливают руками или жгутом ниже коленного сустава. Иглой прокалывают сначала кожу, затем стенку вены. Кровь насасывают в шприц.

6. Взятие крови у кроликов.

Малые количества крови у кроликов получают путем надреза или прокола вены, расположенной снаружи по тонкому краю уха. Животное при этом завертывают в полотенце или сажают в ящик с отверстием для головы; ухо предварительно погружают в теплую воду или протирают

Местом кровопускания может служить и грудная вена – v. thoracica externa, расположенная на грудной клетке сбоку. После обработки операционного поля (от локтевого бугра до третьего ребра) вену зажимают пальцем около локтя. Иглу вводят против тока крови.

Иногда прибегают к пункции сердца. Иглу вкалывают в третий межреберный промежуток слева, на расстоянии 3-4 см от наружного края грудины. У кролика можно брать одновременно до 15-20 мл крови.

Взятие крови у морских свинок.

Небольшие количества крови у морских свинок получают путем надреза края уха или прокола иглой Франка ступни животного.

Для получения больших количеств крови делают пункцию яремной вены (после разреза кожи и препаровки сосуда) или пункцию сердца. Иглу вкалывают у левого края грудины, в точке, где хорошо ощущается сердечный толчок. Направление укола – внутрь к средней линии, глубина прокола 1,5-2 см. Одновременно можно взять до 5 – 10 мл крови.

Взятие крови у крыс и мышей.

Для получения крови у крыс и мышей надсекают ухо или срезают кончик хвоста. У крупных крыс можно получать кровь пункцией хвостовой вены.

Хвост опускают в теплую воду, затем обсушивают марлей и сдавливают у корня пальцами; в сосуд вводят тонкую иглу. Кровь насасывают в шприц.

Небольшие порции крови у кур и индеек получают путем надреза или скарификации гребня (сережек). У гусей и уток делают прокол мякоти ступни. В большом количестве кровь у птиц получают из подкожной подкрыльцовой вены, расположенной на внутренней поверхности крыла. Перья выщипывают, вену сдавливают пальцем в области локтевого сустава, прокол делают под углом на уровне локтевого сгиба .

Можно предварительно обнажить сосуд коротким разрезом кожи. Ввиду высокой свертываемости крови у птиц место прокола протирают противосвертывающей жидкостью. Выступившие капли крови переносят пипеткой в бюкс или собирают в центрифужную пробирку с антикоагулянтом. После взятия крови место пункции на несколько минут зажимают тампоном.

У гусей, уток и индеек кровь можно получать из внутренней плюсневой вены, расположенной под кожей на медиальной, поверхности плюсны, ближе к ее плантарному краю. У кур, гусей, индеек можно брать одновременно до 10-15 мл, у голубей – 1-1,5 мл крови.

При необходимости получить у кур артериальную кровь прибегают к пункции сонной артерии (после ее обнажения у наркотизированной птицы) или к пункции левого желудочка сердца. Прокол делают слева в V-бразной вырезке грудной кости с направлением иглы к плечевому суставу противоположной стороны (у кур) или под углом 45° к стенке грудной клетки, вперед (у цыплят).

Взятие крови в крестьянском фермерском хозяйстве Шарипова. М. Г.

Ферма ______________ располагается в Ленинградской области, Волосовского района, в поселке Беседа. Ферма занимается выращивание сельскохозяйственных животных (птицеводством и овцеводством).

В хозяйстве раз в месяц проводиться плановая проверка всего поголовья на скрытые болезни. Для этого мероприятия был приглашен ветеринарный врач Петухов. А. А и студенты 341 группы, Беседского сельскохозяйственного техникума. Насчитывается 31 поголовье овец, для взятия крови.

Перед началом работы Петухов. А. А подготовил все нужные инструменты для взятия крови:

— Маркер (для подписания на пробирке номера и клички животного).

Техника фиксации животного:

Фиксация животных проводилась двумя студентами. Оседлав животное сверху, студент, который фиксировал головную часть, прижимает голову к ноге. А второй придерживал животное сзади и заодно прикреплял номер животного на шерсть, который был написан на куске ткани.

Кровь берем из яремной вены; Место, где предполагается произвести прокол, дезинфицируем спиртом; Большим пальцем нажимаем на вену в нижней трети шеи. Задержка оттока крови вызывает набухание вены в виде шнура; Прокалываем инфузионной иглой кожу и стенку вены. Иглу вводим против тока крови под углом 45°. Кровь вытекает из иглы, это означает, что мы попали в русло вены. Затем подставляем пробирку и набираем кровь до половины. После извлечения иглы, к месту прокола прикладываем вату с дезинфицирующим спиртом. После всей процедуры подписываем пробирку с кровью, где указываем номер животного. В дальнейшем выкидываем использованную одноразовую иглу и вату.

источник

Разведение крупного рогатого скота (КРС) – выгодный и прибыльный вид деятельности, благодаря которому можно получить свежее молоко и мясо. К сожалению, содержание коров и быков может принести немало проблем. У этих животных могут развиться различные инфекционные заболевания, одно из которых – бруцеллез КРС. Ему подвержены не только коровы и быки, но и другие представители фауны, в том числе и человек.

Первое упоминание заболевания появилось около 2 тысяч лет назад, сделано оно было знаменитым древнегреческим целителем Гиппократом. В 19 веке бруцеллез был научно описан английским врачом, а вскоре ученые нашли микроорганизм, который вызывал недуг. В то время заболевание называлось средиземноморской или мальтийской лихорадкой. На протяжении долгого времени постоянные аборты у скота считались отдельным заболеванием, но в итоге была найдена связь недуга и биологических признаков возбудителей.

Бруцеллез у крупного рогатого скота – серьезное бактериальное заболевание, которое вызывается микроорганизмами рода Бруцелла (Brucella). Характеризуется патологиями в половой структуре у КРС, а также поражениями нервной системы, сердца, сосудов, костей и суставов. Проникая в организм коровы, инфекция перемещается в молочные железы, селезенку, печень и матку, в итоге стимулируя аборт. Выделяют несколько форм недуга, описанных в таблице ниже.

Форма	Длительность
Острая	Сопровождается симптомами на протяжении 1-2 месяцев
Подострая	Недуг развивается в течение 3 месяцев
Хроническая	Крупный рогатый скот страдает от недуга больше 3 месяцев

Бактерия Бруцелла, вызывающая бруцеллез

Бактерия очень устойчива к внешней среде. Она отлично выживает в условиях отрицательной температуры. До пяти месяцев Бруцелла живет в водных условиях, в земле – три месяца и больше. В молоке она присутствует до 46 дней, в брынзе – до двух месяцев. Остальные молочные продукты содержат бактерию на протяжении всего срока их пищевой ценности. Бактерия погибает, если прокипятить молоко и произвести его пастеризацию. Препараты же дезинфекции способны избавиться от Бруцеллы за несколько минут.

Заражение может осуществляться разными способами, но чаще всего инфекция проникает в организм животных фекально-оральным методом. Распространяется инфекция очень быстро, передаваясь от зараженных коров к здоровым особям. Также бактерии могут попасть бытовым способом, когда на пораженную слизистую животного попадает возбудитель недуга.

Самые частые случаи заражения – через корм, воду, предметы ухода, подстилку и другие вещи, с которыми чаще всего контактирует скот.

Микробы так же могут попасть в организм через трещины на коже, органы пищеварения и дыхательные пути.

Чаще всего бруцеллез развивается у скота, который проживает на частных фермерских и приусадебных предприятиях. Происходит это преимущественно в пастбищный период, во время контакта с другими животными. Многие фермеры не понимают, насколько опасна болезнь (не только для животных, но и для человека). Вспышки заболевания могут наблюдаться после завоза новых особей на ферму, а также при несоблюдении правил карантина и отсутствии правильных лабораторных мероприятий и вакцинации.

Главный признак бруцеллеза у КРС – это выкидыш или появление на свет нежизнеспособной особи. Развитие тех или иных симптомов зависит от индивидуальных особенностей каждого отдельно взятого животного. Если есть подозрение на заболевание, следует обратить внимание и на другие симптомы болезни.

Пошаговая инструкция по осмотру и выявлению бруцеллеза у КРС.

Шаг 1. Проверьте, появились ли на задних конечностях коровы/быка/теленка абсцессы (нарывы, гнойники, которые появляются из-за воспалительного процесса) или гугромы (кисты, образующиеся в тканях). Часто у животного развивается бурсит – воспаление суставов на передних конечностях;

Шаг 2. Понаблюдайте за тем, как питается животное. Если скот болен, то аппетит у него упадет, он станет малоподвижным и слабо активным. Корова/бык/теленок становятся угнетенными, их походка может быть неуверенной. Вес начнет снижаться. Иногда может наблюдаться повышенная температура тела;

Шаг 3. Проверьте, нет ли у животного слизистых выделений из половых органов. Они бурого или коричневого цвета, совсем не имеют запаха;

Шаг 4. Участвуйте в родах скота. У коров, которые пережили выкидыш, может наблюдаться задержка последа (плаценты). Иногда развивается эндометрит, вызванный воспалительными процессами, он сопровождается обильным выделением гноя;

Шаг 5. Внимательно следите за количеством молока. Удой коровы снижается, если она больна бруцеллезом. Ее вымя может отекать, воспаляются молочные железы.

Симптомы бруцеллеза у КРС: поражение конечностей

У быков также можно диагностировать болезнь. У них наблюдаются признаки воспаления препуции (крайней плоти), а также орхит (воспаление тканей яичек). Помните о том, что некоторые симптомы могут оказаться двоякими: например, выкидыши могут происходить из-за туберкулезного заболевания. Если даже корова получила заражение через открытую ранку, в ее области не наблюдается никаких признаков недуга.Симптоматика бруцеллеза слабовыраженная, и реальный диагноз может определить только специалист.

Установить диагноз самостоятельно очень сложно. Если вы не являетесь опытным фермером и не можете самостоятельно диагностировать заболевание, обратитесь к специалисту (ветеринару). Он осмотрит животное, получит от вас всю необходимую информацию. Если у врача появится подозрение на заражение, он назначает исследование в лаборатории. В зависимости от формы диагностики используется абортированный плод, а также проводится анализ молока или крови коровы. Лабораторные методы диагностики бруцеллеза:

Реакция аллергии. Самке вводится абортин, ответ будет получен примерно через сутки (но не позднее 72 часов). По величине опухоли можно судить о наличии заболевания. Следует насторожиться, если образование достигло величины фасоли. Есть отрицательная сторона у этого метода: перенесшие бруцеллез, но полностью здоровые животные также дают положительную реакцию;
Реакция агглютинации Райта. Иногда невозможно найти причину заражения в крови животного. Чаще всего в диагностике болезни используется анализ на реакцию агглютинации, специалисты оценивают ее и исследуют. Это самый надежный метод определения возбудителя. Для его применения необходимо приготовить антиген, затем оценить и исследовать реакцию. У заболевших животных она положительная.

Диагностика бруцеллеза: реакция агглютинации Райта

Шаг 1. Привяжите корову, зафиксируйте ее голову за рога или недоузок;

Шаг 2. У самого начала шеи наложите жгут из резины или плотный ремешок, затяните его. Если вы все сделали правильно, яремная вена должна налиться кровью. Попробуйте ее прощупать;

Шаг 3. Возьмите острую иглу (предварительно прокипяченную), вколите ее в яремную венку, двигаясь снизу вверх (глубина – около 4 сантиметров). Каждой корове – своя, индивидуальная иголка;

Шаг 4. Кровь должна вытечь из иглы, поэтому предварительно подставьте чистую пробирку. Если жидкость не идет, поверните иглу вокруг оси и подвигайте ее то вперед, то назад;

Шаг 5. Когда пробирка наполнится на 2/3 от объема, ослабьте ремешок, зажмите венку пальцами и резко выньте иглу;

Шаг 6. Закройте пробирку специальной пробкой, кожу в месте укола смажьте настойкой йода.

Правильная фиксация коровы для взятия анализа

Необходимо четко следовать инструкции и учитывать все меры безопасности при заборе крови. Чтобы не заразиться бруцеллезом, рекомендуется проводить забор крови и прочих жидкостей в специально оборудованных лабораториях.

Болезнь может иметь острое, хроническое или бессимптомное течение. Больше всего предрасположены к болезни взрослые особи. Когда возбудитель проникает в организм, он начинает размножаться у ворот инфекции, после чего воспаление доставляется в кровеносные и лимфатические пути и проникает в весь организм. Инфекция заполняет тело животного, местом дислокации выбирая определенные органы и системы.

Основные органы поражения – печень, молочные железы, селезенка и матка.

Локализируясь в плаценте, инфекция вызывает нарушения в развитии эмбриона, оно останавливается, происходит аборт. Это может случиться на четвертом или пятом месяце беременности. Телята, которые родились своевременно, могут оказаться нежизнеспособными. Обычно такие особи умирают в первые несколько дней жизни. Инкубационный период заболевания – от 2 до 4 недель.

Если в стаде нет беременных особей, определить недуг поможет только лабораторное исследование.

То, как проходит бруцеллез в стае, зависит от количества беременных самок. В некоторых стадах выкидыш происходит у половины самок и более. Как правило, аборт случается один раз, гораздо реже – два раза. Если инфекция была занесена в здоровое стадо, выкидыш может произойти у 60% самок. От бруцеллеза взрослые особи не умирают. При вскрытии могут быть найдены поражения в половой структуре, некрозы в суставах, воспаления в печени, почках и селезенке.

Метод лечения выбирается исходя из тяжести бруцеллеза. На первой стадии эффективны антибиотики, которые избавляют организм от возбудителя недуга: рифампицин, левомицетин, стрептомицин, тетрациклин. Время лечения и необходимую дозу назначает ветеринар. При хроническом течении болезни антибиотики бесполезны – в этом случае назначается вакцинация, снимающая симптомы и останавливающая дальнейшее развитие бактерий.

В некоторых случаях при лечении болезни используют комплексную терапию. К антибиотикам добавляются иммуностимулирующие медикаменты либо противовоспалительные средства. Если у животного появляются боли, ему назначают болеутоляющие препараты. Назначенные врачом уколы можно производить самостоятельно.

Инструкция по правильному введению лекарства.

Шаг	Действие
1.	Ограничьте движения коровы, поместив ее в узкий загон. Голова коровы должна придерживаться специальным фиксатором.
2.	Выберите область для укола. Обычно ей является шея, часто – место между основанием хвоста и костью бедра. Конкретные указания можно получить у специалиста.
3.	Введите медикамент в соответствии с указаниями. Продолжайте до тех пор, пока не будет введено нужное количество лекарства.
4.	Выньте иглу из места инъекции, отпустите корову.

Методы лечения бруцеллеза КРС: укол корове

В группу риска заражения бруцеллезом попадают люди, которые работают с животными. Чтобы не допустить развитие у крупного рогатого скота заражения, необходимо придерживаться четких правил ухода, содержания и разведения КРС:

Памятка по профилактике бруцеллеза КРС

Содержание крупного рогатого скота в плохих, некомфортных условиях значительно снижает их иммунитет, увеличивая риск заражения инфекциями, в частности, ею может оказаться бруцеллез КРС.

Соблюдайте все профилактические меры по предотвращению заболевания, ухаживайте за скотом, тщательно обрабатывайте молочную и мясную пищу, при появлении первых признаков болезни животного обратитесь к ветеринару. Эти несложные правила помогут вам сохранить здоровье и благополучие всего поголовья крупного рогатого скота и будущего молодняка.

Человек может заразиться бруцеллезом при потреблении молока, которое было получено от зараженных животных (в том числе продуктов молочного происхождения). Если плохо обрабатывать мясо, также есть шанс получить заболевание. Часто заражение происходит на производстве, связанном с обработкой шерсти и кожи. Заболеть можно любым путем, даже во время контакта с больной коровой. Бывали случаи, когда человек заражался бруцеллезом во время уборки навоза. Скрытый период протекания болезни может продолжаться от недели до нескольких месяцев.

Внимательно следите за своим здоровьем, если ваша работа заключается в уходе за крупным рогатым скотом.

Симптомы бруцеллеза у человека разнообразны:

общее недомогание;
нервозность, стрессы;
боль в голове, неприятные ощущения в мышцах и суставах;
медлительность, слабая подвижность;
сниженный аппетит;
повышение температуры (до 37 градусов и больше);
озноб.

Симптомы могут не проявлять себя вообще, и не обязательно, что они будут присутствовать одновременно. Во время болезни поражаются сосуды, нервные клетки и костно-суставный аппарат. Нередко появление расстройств в психике. Заболевание длится примерно 3 месяца, но может затянуться и на 2-3 года. Остаточные явления, которыми сопровождается заболевание, могут стать причиной развития инвалидности. У беременных женщин может случиться выкидыш.

Чтобы избежать появления болезни, не используйте в пищу сырое молоко, невыдержанные сыры и брынзу, а также не ешьте мясо, которое не прошло необходимую обработку.

Употребление молока от больного животного

Многие врачи не сразу могут определить наличие этого заболевания у человека. Из отрывка телепередачи «Жить здорово» с Еленой Малышевой вы узнаете, как диагностировать бруцеллез у человека, какие органы поражает недуг и что с этим делать.

источник